吳少明,蔡小明,周 鵬,蔡慧欽,梁 敏,陳言凱,李燕平,馮麗鳳,林浩學(xué),黃 媛
(福建省產(chǎn)品質(zhì)量檢驗(yàn)研究院,國(guó)家加工食品質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)中心,福建 福州 350002)
丁香酚類化合物,主要包括丁香酚與異丁香酚、甲基丁香酚與甲基異丁香酚、乙酸丁香酚酯與乙?;惗∠惴? 組同分異構(gòu)體,自20世紀(jì)70年代初被發(fā)現(xiàn)具有強(qiáng)烈的麻醉作用而被廣泛用于動(dòng)物運(yùn)輸過程[1]。近年來,人們發(fā)現(xiàn)鮮活水產(chǎn)品在運(yùn)輸、批發(fā)等環(huán)節(jié)添加丁香酚類物質(zhì)能夠有效地改變其生理狀態(tài),進(jìn)入類休眠狀態(tài),大大降低生理代謝強(qiáng)度,有效提高在運(yùn)輸途中的成活率,從而增加經(jīng)濟(jì)效益[2-3]。然而,研究表明丁香酚類物質(zhì)具有肝臟毒性[4-5];美國(guó)國(guó)家毒理學(xué)計(jì)劃認(rèn)為丁香酚是可疑致癌物[6];世界癌癥研究機(jī)構(gòu)也將丁香酚列為第3類致癌物[7];李付貴等[8]證明了丁香酚是一種強(qiáng)胚胎毒性化合物;孔曉軍等[9]對(duì)丁香酚進(jìn)行毒理學(xué)實(shí)驗(yàn)表明丁香酚會(huì)導(dǎo)致人體代謝性酸中毒,還可以導(dǎo)致嬰幼兒患低血糖和肝功能衰竭。不同國(guó)家對(duì)丁香酚類物質(zhì)的限量標(biāo)準(zhǔn)并不一致,新西蘭曾規(guī)定食品中丁香酚的最高殘留限量為0.1 mg/kg[10],而后在2016年撤銷[11],日本規(guī)定丁香酚最高殘留限量為0.05 mg/kg[12],美國(guó)和加拿大則禁止丁香酚作為食品添加劑或者麻醉劑使用[13-14],其他5 種丁香酚類物質(zhì)的限量值還未有相應(yīng)的規(guī)定。我國(guó)對(duì)丁香酚類的使用及限量值尚無明確規(guī)定。
目前,丁香酚的檢測(cè)方法主要有紫外分光光度法、薄層色譜法、毛細(xì)管電泳法、氣相色譜法、液相色譜法、氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法、液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法等。向英等[15]采用分光光度法測(cè)定丁香油中丁香酚的含量,不僅溶劑消耗大且靈敏度較低;Pathak等[16]采用薄層色譜法建立了丁香中丁香酚的含量測(cè)定,但該法易受干擾導(dǎo)致定性定量不準(zhǔn)確,且溶劑揮發(fā)對(duì)人體危害也較大;黃先敏等[17]建立了山茱萸中丁香酚的毛細(xì)管電泳法測(cè)定,該法靈敏度高,但重現(xiàn)性較差,無法準(zhǔn)確定量;色譜法[18-21]具有高分離性、高選擇性以及高靈敏度成為水產(chǎn)品中丁香酚類物質(zhì)測(cè)定的主流檢測(cè)方法,但前處理仍相對(duì)復(fù)雜,步驟多,耗時(shí)長(zhǎng),效率低,且容易存在干擾,已無法滿足大批量樣品快速檢測(cè)的要求。近年來,色譜-質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)具有前處理簡(jiǎn)單、靈敏度高、穩(wěn)定性好、定性定量更準(zhǔn)確等特點(diǎn)而被廣泛用于痕量分析[22-23],已有研究者[24-28]將氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法成功應(yīng)用與水產(chǎn)品中6 種丁香酚類物質(zhì)的測(cè)定,以及倪崢飛[29]和趙東豪[30]等采用超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(ultra-high performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry,UPLC-MS/MS)法建立了丁香酚類物質(zhì)的測(cè)定方法,但目前報(bào)道的采用液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法針對(duì)的是丁香酚單一化合物或者幾種化合物,同時(shí)測(cè)定6 種(3 組同分異構(gòu)體)丁香酚類物質(zhì)(丁香酚與異丁香酚、甲基丁香酚與甲基異丁香酚、乙酸丁香酚酯與乙?;惗∠惴樱┑姆椒r見報(bào)道。因此,本研究采用UPLC-MS/MS建立同時(shí)測(cè)定水產(chǎn)品中6 種丁香酚類物質(zhì)的方法,并對(duì)市場(chǎng)上實(shí)際水產(chǎn)樣品中丁香酚類物質(zhì)殘留進(jìn)行污染調(diào)查,以期為水產(chǎn)品中多種丁香酚類物質(zhì)殘留檢測(cè)提供技術(shù)支持,也為水產(chǎn)品中丁香酚類物質(zhì)的進(jìn)一步研究提供數(shù)據(jù)支持。
丁香酚(CAS號(hào)97-53-0,純度98.95%)、異丁香酚(CAS號(hào)97-54-1,純度98.06%)、甲基丁香酚(CAS號(hào)93-15-2,純度98.06%)、乙酸丁香酚酯(CAS號(hào)93-28-7,純度99.4%)、甲基異丁香酚(CAS號(hào)93-16-3,純度99.1%)、乙酰基異丁香酚(CAS號(hào)93-29-8,純度98.2%) 美國(guó)Stanford公司;甲酸、乙腈、甲醇(均為色譜純) 德國(guó)Merck公司。
L C-3 0 A D U P L C儀、H L B固相萃取柱(3 mL/60 mg)、Shim-pack GIST C18色譜柱(2.1 mm×50 mm,2 μm) 日本Shimadzu公司;5500三重四極桿-串聯(lián)質(zhì)譜儀(配有電噴霧離子源) 美國(guó)AB SCIEX公司;Aanti J-E高速冷凍離心機(jī) 美國(guó)Beckman Coulter公司;Milli-Q超純水純化系統(tǒng) 美國(guó)Millipore公司;DS-8510 DTH超聲波振蕩器 上海分析超聲儀器有限公司;MS 3 basic旋渦混均器 德國(guó)IKA公司;C18固相萃取柱(3 mL/60 mg)、PEP固相萃取柱(3 mL/60 mg) 美國(guó)Agela公司;BEH C18色譜柱(2.1 mm×50 mm,1.7 μm)、UPLC HSS T3色譜柱(2.1 mm×50 mm,1.8 μm)、BEH C8色譜柱(2.1 mm×50 mm,1.7 μm) 美國(guó)Waters公司。
1.3.1 質(zhì)譜條件
電噴霧離子源:正負(fù)離子切換模式;多反應(yīng)監(jiān)測(cè);離子化電壓:正離子掃描模式為5 500 V,負(fù)離子模式為-4 500 V;霧化氣60 psi;輔助氣55 psi;氣簾氣壓力30 psi;霧化溫度550 ℃;定性離子對(duì)、定量離子對(duì)及其他質(zhì)譜參數(shù)見表1。
表1 質(zhì)譜參數(shù)Table 1 Mass spectrometric parameters
1.3.2 色譜條件
色譜柱:Shim-pack GIST C18色譜柱(2.1 mm×50 mm,2 μm);柱溫40 ℃;進(jìn)樣量2.0 μL;流速0.3 mL/min;流動(dòng)相:水(A)和甲醇(B),梯度洗脫程序:0~1.00 min,90% A、10% B;1.0~2.0 min,90%~45% A、10%~55% B;2.0~2.00 min,45% A、55% B;5.0~9.0 min,45%~5% A、55%~95% B;9.0~11.0 min,5% A、95% B;11.00~11.01 min,5%~90% A、95%~10% B;11.01~13.0 min,90% A、10% B。
1.3.3 標(biāo)準(zhǔn)溶液及標(biāo)準(zhǔn)曲線的配制
分別準(zhǔn)確稱取適量6 種丁香酚類物質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)品于10 mL容量瓶中,用乙腈溶解后定容至刻度,充分混勻得到標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液約1.0 mg/mL,于-18 ℃冰箱中避光保存。分別移取適量標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液以乙腈稀釋成質(zhì)量濃度均為100 ng/mL的混合標(biāo)準(zhǔn)中間液,再分別移取適量混標(biāo)中間液以體積分?jǐn)?shù)10%乙腈溶液稀釋成1.00、2.00、5.00、20.0、50.0、100、500 ng/mL的混合標(biāo)準(zhǔn)系列溶液,現(xiàn)配現(xiàn)用。
1.3.4 樣品前處理
先將魚、蝦、蟹等水產(chǎn)品洗凈,取可食肌肉部分樣品于組織勻漿機(jī)攪碎混勻,放入-18 ℃冰箱保存,備用。稱取勻漿后的待測(cè)樣品2.0 g于50 mL聚丙烯塑料離心管中,加入2 g無水硫酸鈉,渦旋混勻后加入5 mL乙腈,振蕩提取10 min后,于4 500 r/min離心5 min,轉(zhuǎn)移上清液至10 mL試管中,殘?jiān)偌尤? mL乙腈重復(fù)提取一次,合并2 次提取液,過HLB小柱凈化(使用前用3.0 mL乙腈活化),收集流出液于10 mL刻度試管中,再加入2 mL乙腈洗脫,并收集流出液,加入100 μL二甲亞砜后于50 ℃水浴下氮吹至近干,加入10%乙腈溶液溶解定容至1.0 mL,渦旋混勻后過0.22 μm PTFE濾膜,UPLC-MS/MS分析測(cè)試。
采用Excel 2007軟件進(jìn)行平均值、回收率及相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差計(jì)算,采用Origin 8.0軟件作圖。
2.1.1 質(zhì)譜條件的優(yōu)化
圖1 丁香酚類物質(zhì)產(chǎn)物離子掃描質(zhì)譜圖Fig. 1 Product ion scanning mass spectra of eugenols
分別取適量?jī)?chǔ)備液以50%乙腈稀釋成質(zhì)量濃度約為200 ng/mL的單標(biāo)使用液,采用針泵連續(xù)進(jìn)樣模式進(jìn)樣分析(針泵速率為10 μL/min)。根據(jù)目標(biāo)物的性質(zhì),丁香酚與異丁香酚含有酚羥基,較易失去一個(gè)質(zhì)子得到母離子m/z163 [M-H]-,其余4 種化合物采用正離子模式,分別得到一個(gè)質(zhì)子形成母離子[M-H]+,分別繼續(xù)進(jìn)行產(chǎn)物離子掃描,并采用信號(hào)疊加模式,分別得到6 種化合物的主要碎片離子(圖1),并優(yōu)化各化合物相關(guān)檢測(cè)參數(shù),選擇最優(yōu)定量定性離子對(duì)(表1)。從圖1可以看出,除丁香酚(m/z121.0)和異丁香酚(m/z119.0)的1 個(gè)碎片離子不同外,其余2 對(duì)同分異構(gòu)體的母離子和碎片離子均相同,一部分可能的質(zhì)譜解析見文獻(xiàn)[31],因此無法單靠質(zhì)譜提取分離目標(biāo)物進(jìn)行定性,需要通過色譜條件將3 對(duì)同分異構(gòu)體完全分離,才能準(zhǔn)確進(jìn)行定性定量分析。
2.1.2 液相色譜條件的優(yōu)化
2.1.2.1 色譜柱的選擇
圖2 丁香酚類物質(zhì)的多反應(yīng)監(jiān)測(cè)模式色譜圖Fig. 2 Multiple response monitor chromatograms of 6 eugenols
文獻(xiàn)[27,32]報(bào)道測(cè)定多種丁香酚類物質(zhì)采用C18色譜柱,本研究選擇較常見的BEH C18、BEH C8、HSS T3、Shim-pack GIST C18色譜柱,以甲醇-水作為流動(dòng)相進(jìn)行梯度洗脫優(yōu)化實(shí)驗(yàn)。結(jié)果表明Shim-pack GIST C18色譜柱效果最好,在7.5 min之前能將3 對(duì)丁香酚同分異構(gòu)體達(dá)到基線分離,且峰形較好(圖2),因此選擇Shim-pack GIST C18色譜柱作為分析柱。
2.1.2.2 流動(dòng)相的選擇
先對(duì)甲醇-水和乙腈-水作為流動(dòng)相的效果進(jìn)行比較,結(jié)果表明,采用甲醇-水作為流動(dòng)相時(shí),6 種化合物的峰形及響應(yīng)均優(yōu)于乙腈-水作為流動(dòng)相。此外,流動(dòng)相的pH值以及離子強(qiáng)度的大小可能對(duì)目標(biāo)物響應(yīng)有影響,于是對(duì)比了在水相中添加不同濃度的甲酸以及乙酸銨對(duì)結(jié)果的影響。結(jié)果顯示,隨著乙酸銨濃度的增大,6 種丁香酚類物質(zhì)響應(yīng)均逐漸降低,說明流動(dòng)相中加入乙酸銨會(huì)降低6 種丁香酚類物質(zhì)的響應(yīng);而只要流動(dòng)相中加入甲酸,丁香酚和異丁香酚則完全被抑制,且其余4 種化合物響應(yīng)沒有明顯變化,因此最終選擇甲醇-水作為流動(dòng)相,而文獻(xiàn)[26,31]則認(rèn)為采用甲醇-乙腈-0.01%甲酸作為流動(dòng)相效果更佳。
2.2.1 提取溶劑的選擇
圖3 提取溶劑的選擇Fig. 3 Selection of extraction solvents
丁香酚類物質(zhì)屬于極性或者弱極性化合物,微溶于水,文獻(xiàn)中報(bào)道的提取溶劑有甲醇[32]、乙腈[24]、正己烷[27]、丙酮[18]等。本實(shí)驗(yàn)選取空白明蝦樣品進(jìn)行加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn),對(duì)比甲醇、乙腈、乙酸乙酯、正己烷、丙酮作為6 種丁香酚類物質(zhì)提取溶劑的效果,后續(xù)實(shí)驗(yàn)按1.3.4節(jié)步驟進(jìn)行,平行實(shí)驗(yàn)3 次。如圖3所示,采用甲醇、乙腈提取時(shí),6 種丁香酚類物質(zhì)回收率均較好,分別為82.5%~95.1%、84.7%~94.7%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差分別為2.1%~5.2%、2.8%~4.1%;而其余3 種提取溶劑所得的回收率結(jié)果不理想;但甲醇作為提取溶劑時(shí),溶液顏色較深;此外,在最后濃縮過程中乙腈的濃縮速度也較甲醇快,因此綜合考慮選擇乙腈作為提取溶劑。
2.2.2 提取溶劑體積的優(yōu)化
圖4 提取溶劑體積對(duì)丁香酚類物質(zhì)回收率的影響Fig. 4 Effect of extraction solution volume on recovery of eugenols
為進(jìn)一步確定提取溶劑的體積,選擇陰性明蝦樣品進(jìn)行加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)(加標(biāo)水平為1.0 mg/kg),以20 mL乙腈分4 次進(jìn)行提取,每次以5 mL乙腈提取,分別收集每次的提取溶液按1.3.4節(jié)方法進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn),平行實(shí)驗(yàn)3 次。如圖4所示,一次5 mL乙腈提取時(shí),6 種丁香酚類物質(zhì)回收率僅為52.1%~72.1%;2 次5 mL乙腈提取時(shí),6 種丁香酚類物質(zhì)回收率在84.1%~94.5%之間,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差在2.1%~4.5%之間;而超過2 次時(shí),結(jié)果與2 次5 mL乙腈提取時(shí)并無明顯變化,綜合考慮后續(xù)濃縮效率以及節(jié)約溶劑方面,最終選擇采用2 次5 mL乙腈提取。
2.2.3 凈化條件的優(yōu)化
2.2.3.1 固相萃取柱的選擇
由于水產(chǎn)品基質(zhì)較為復(fù)雜,含有大量脂溶性雜質(zhì),若直接進(jìn)樣會(huì)產(chǎn)生基質(zhì)效應(yīng)以及對(duì)儀器造成一定程度的污染,因此需對(duì)提取后的溶液進(jìn)行凈化處理。根據(jù)6 種丁香酚類物質(zhì)的性質(zhì),比較HLB小柱(可吸附極性和非極性雜質(zhì))、C18小柱(可吸附脂類等非極性雜質(zhì))、PEP小柱(可吸附極性和非極性雜質(zhì))的凈化效果,以陰性明蝦進(jìn)行加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)(加標(biāo)水平為20 μg/kg),上樣后再以5 mL乙腈洗脫固相萃取柱,其余步驟按1.3.4節(jié)進(jìn)行,平行實(shí)驗(yàn)3 次。結(jié)果表明,采用HLB柱凈化時(shí),6 種丁香酚類物質(zhì)平均回收率均較好,在88.5%~95.1%之間,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差在2.2%~5.1%之間,且基線噪音低;而采用C18柱凈化時(shí),乙酸丁香酚酯平均回收率較低(67.5%);采用PEP固相萃取柱凈化時(shí),異丁香酚平均回收率較低(50.2%),因此,選擇HLB柱作為凈化小柱。
2.2.3.2 洗脫劑體積的優(yōu)化
圖5 洗脫劑體積對(duì)丁香酚類物質(zhì)回收率的影響Fig. 5 Effect of elution solvent volume on recovery of eugenols
由于采用乙腈作為提取溶劑,若經(jīng)固相萃取柱凈化后,溶液體積過大會(huì)影響濃縮效率,有必要進(jìn)一步對(duì)洗脫劑體積進(jìn)行優(yōu)化。以空白明蝦為基質(zhì),進(jìn)行加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)(加標(biāo)水平為500 μg/kg),上樣后以5 mL乙腈分5 次洗脫固相萃取柱,每次1 mL,并分別收集每次的洗脫溶液按1.3.4節(jié)進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn),平行實(shí)驗(yàn)3 次。如圖5所示,當(dāng)洗脫溶劑達(dá)到2 mL時(shí),6 種丁香酚類物質(zhì)基本洗脫下來,平均回收率在84.5%~97.2%之間;而當(dāng)洗脫溶劑繼續(xù)增加時(shí),6 種丁香酚類物質(zhì)回收率與2 mL洗脫時(shí)并無明顯差異,因此,選擇洗脫體積為2 mL。
2.2.4 濃縮條件的優(yōu)化
2.2.4.1 濃縮溫度
丁香酚類物質(zhì)沸點(diǎn)均高于180 ℃,但文獻(xiàn)[27]認(rèn)為在氮吹濃縮時(shí),水浴溫度高于45 ℃時(shí),丁香酚類物質(zhì)易揮發(fā)或者分解導(dǎo)致回收率降低。因此本實(shí)驗(yàn)考察在乙腈溶劑中加入6 種丁香酚類物質(zhì)(質(zhì)量濃度均為20 ng/mL),分別在溫度30、40、50、60 ℃進(jìn)行濃縮至近干(剩余約0.2 mL),加入10%乙腈溶液定容至1.0 mL,并渦旋混勻,過濾膜后上機(jī)測(cè)試。結(jié)果表明,濃縮溫度為30~60 ℃,6 種丁香酚類物質(zhì)回收率均在97.5%以上,并不存在回收率降低現(xiàn)象。
2.2.4.2 濃縮至干的影響
在濃縮過程中濃縮至干時(shí),一些化合物有可能會(huì)隨溶劑揮發(fā)被帶走一部分,或者被氧化成其他化合物。因此,在乙腈溶劑中加入6 種丁香酚類物質(zhì),考察濃縮至干與濃縮至近干(剩余約0.2 mL)對(duì)6 種化合物回收率的影響。結(jié)果顯示當(dāng)濃縮至近干時(shí),6 種丁香酚類物質(zhì)的回收率均在97.2%以上;而濃縮至干時(shí),6 種丁香酚類物質(zhì)回收率均有所下降,在69.8%~87.1%之間(表2)。因此,應(yīng)注意在濃縮過程中不能濃縮至干,但在實(shí)際操作過程較難控制,于是采用在濃縮前加入100 μL高沸點(diǎn)的二甲亞砜,從而有效避免濃縮至干對(duì)結(jié)果的影響。
表2 濃縮程度對(duì)丁香酚類物質(zhì)回收率的影響Table 2 Effect of concentration level on recovery of eugenols
2.3.1 線性范圍與定量限
以6 種丁香酚類物質(zhì)的峰面積作為Y軸,質(zhì)量濃度(ng/mL)作為X軸計(jì)算線性回歸方程。由表3可以看出,在1.0~500 ng/mL范圍內(nèi),6 種丁香酚類物質(zhì)線性關(guān)系較好,相關(guān)系數(shù)(R)在0.99以上,檢出限為0.1~0.3 μg/kg之間,定量限在0.3~1.0 μg/kg之間,滿足分析需求。
表3 丁香酚類物質(zhì)的線性關(guān)系和定量限Table 3 Calibration curves and limits of quanti fication (LOQs) of eugenols
2.3.2 準(zhǔn)確度與精密度
表4 丁香酚類物質(zhì)的準(zhǔn)確度、精密度和回收率Table 4 Accuracies, precisions, and recoveries of eugenols
分別以陰性明蝦、鱸魚、蟹為基質(zhì),進(jìn)行添加水平為2.00、5.00、10.0 μg/kg的加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn),每種加標(biāo)水平平行實(shí)驗(yàn)6 次。如表4所示,6 種丁香酚類物質(zhì)在3 種基質(zhì)中平均回收率在83.9%~105.4%之間,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差在1.8%~6.9%之間,表明該方法檢測(cè)水產(chǎn)品中丁香酚類物質(zhì)殘留量準(zhǔn)確可靠,精密度好,符合痕量分析要求。2.3.3 基質(zhì)效應(yīng)
分別以陰性明蝦、鱸魚、蟹為基質(zhì),得到3 種基質(zhì)的空白基質(zhì)溶液,分別加入混標(biāo)中間液配制成質(zhì)量濃度均為4.00、10.0、20.0 ng/mL的基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)溶液,并與同質(zhì)量濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液(10%乙腈配制)一起上機(jī)測(cè)試,標(biāo)準(zhǔn)溶液所得的各物質(zhì)峰面積為A1,基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)溶液所得各物質(zhì)的峰面積為A2,基質(zhì)效應(yīng)/%=A2/A1×100,結(jié)果見表4,3 種基質(zhì)對(duì)丁香酚和異丁香酚均表現(xiàn)出基質(zhì)增強(qiáng)(基質(zhì)效應(yīng)>100%),而對(duì)其余4 種化合物則表現(xiàn)出一定程度的基質(zhì)抑制(基質(zhì)效應(yīng)<100%),6 種化合物的基質(zhì)效應(yīng)在89.8%~111.6%之間,符合分析要求。
利用本方法調(diào)查了市場(chǎng)上明蝦、鱸魚、蟹、羅非魚、黃瓜魚、麗魚等共計(jì)68 份樣品中丁香酚類物質(zhì)的含量,結(jié)果發(fā)現(xiàn)15 份樣品檢出丁香酚,含量在1.2~4 574 μg/kg之間,檢出率為22.1%,其余5 種化合物均未檢出;按日本相關(guān)標(biāo)準(zhǔn)的限量值50 μg/kg計(jì),有9 批次不合格,不合格率為13.2%;若按美國(guó)和加拿大相關(guān)標(biāo)準(zhǔn)計(jì),則不合格率達(dá)到22.1%,可見我國(guó)水產(chǎn)品中丁香酚類物質(zhì)殘留問題的嚴(yán)重性。
本實(shí)驗(yàn)采用UPLC-MS/MS法,結(jié)合固相萃取技術(shù),建立水產(chǎn)品中6 種丁香酚類物質(zhì)的同時(shí)快速測(cè)定方法,外標(biāo)法定量,并對(duì)相關(guān)條件進(jìn)行優(yōu)化。該方法簡(jiǎn)便、檢出限低、重復(fù)性好、準(zhǔn)確度高,且將所建立的方法應(yīng)用于實(shí)際樣品的測(cè)定,發(fā)現(xiàn)丁香酚檢出率較高,國(guó)家相關(guān)部門應(yīng)對(duì)水產(chǎn)品中丁香酚類物質(zhì)殘留進(jìn)行風(fēng)險(xiǎn)監(jiān)測(cè),對(duì)水產(chǎn)品中丁香酚類物質(zhì)殘留進(jìn)行污染調(diào)查研究,并進(jìn)一步對(duì)丁香酚的代謝周期以及毒理學(xué)進(jìn)行研究。