楊鯨蓉 柳亞明 張錦燦 曾志勇
[摘要]目的 探索丙戊酸(VPA)對食管癌細(xì)胞增殖凋亡的影響以及Bcl-2蛋白、Caspase蛋白表達(dá)及信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路的分子機(jī)制。方法 將食管癌ECa-109細(xì)胞株培養(yǎng)于PRMI1640培養(yǎng)液,按照溶劑對照和溶度梯度分組:空白對照及VPA 0.25 mmol/L、0.5 mmol/L、1.0 mmol/L、2.0 mmol/L、4.0 mmol/L。根據(jù)不同的藥物濃度處理細(xì)胞24、48、72 h后,觀察食管癌ECa-109細(xì)胞的變化,運(yùn)用不同的檢測方法檢測食管癌ECa-109細(xì)胞的細(xì)胞活力、細(xì)胞凋亡及周期的變化;Western Blot檢測CyclinD1、p21、Survivin、Bcl-2和Caspase蛋白及PI3K/Akt和MAPK信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路的變化。結(jié)果 VPA可有效影響ECa-109細(xì)胞的活力、增殖和分化,能夠通過誘導(dǎo)細(xì)胞周期阻滯使細(xì)胞產(chǎn)生凋亡。Western Blot實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,VPA可以影響ECa-109細(xì)胞中Bcl-2、Survivin以及Caspase蛋白的表達(dá);VPA可明顯降低ECa-109細(xì)胞中CyclinD1蛋白表達(dá)水平,同時增加p21蛋白的表達(dá),使其能夠影響信號通路PI3K/Akt和MAPK途徑中AKT、MAPK等關(guān)鍵蛋白的磷酸化。結(jié)論 VPA能夠影響食管癌細(xì)胞的增殖凋亡,并具有濃度依賴性;能夠通過影響多種蛋白激酶途徑中的信號通路、生存蛋白的表達(dá)以及PI3K/Akt和MAPK信號通路的表達(dá)而影響食管癌細(xì)胞的生長。
[關(guān)鍵詞]組蛋白去乙?;?組蛋白去乙?;敢种苿?食管癌;ECa-109細(xì)胞;丙戊酸;Bcl-2;Caspase3;Akt
[中圖分類號] R966? ? ? ? ? [文獻(xiàn)標(biāo)識碼] A? ? ? ? ? [文章編號] 1674-4721(2020)5(c)-0004-06
Effect of Valproic Acid on proliferation and apoptosis of esophageal cancer cells and study on its antitumor activity mechanism
YANG Jing-rong1? ?LIU Ya-ming1? ?ZHANG Jin-can2? ?ZENG Zhi-yong1
1. Department of Cardiothoracic Surgery, the 900th Hospital of the Joint Support Force (the Former Fuzhou General Hospital of Nanjing Military Region), Fujian Province, Fuzhou? ?350025, China; 2. Fuzong Clinical College of Fujian Medical University, Fujian Province, Fuzhou? ?350025, China
[Abstract] Objective To explore the effect of Valproic Acid (VPA) on proliferation and apoptosis of esophageal cancer cells, and expression of Bcl-2, Caspase protein, as well as molecular mechanisms of signal transduction pathways. Methods ECa-109 cell line of esophageal cancer was cultured with PRMI1640 medium, and grouped according to solvent control and solubility gradient: blank control and VPA 0.25 mmol/L, 0.5 mmol/L, 1.0 mmol/L, 2.0 mmol/L, 4.0 mmol/L. After treating cells for 24, 48 and 72 hours according to different drug concentrations, the changes of esophageal cancer ECa-109 cells were observed, and different detection methods were used to detect the changes of cell viability, apoptosis and cycle of esophageal cancer ECa-109 cells. Western Blot was used to detect CyclinD1, p21, Survivin, Bcl-2, Caspase protein and PI3K/Akt and MAPK signal transduction pathway changes. Results VPA showed different extent changes on vitality, proliferation, differentiation of ECa-109 cells, could induce cell apoptosis by inducing cell cycle arrest. Western Blot experiment results showed that VPA could affect the expression of Bcl-2, Survivin and Caspase proteins in ECa-109 cells. VPA could significantly reduce the expression level of CyclinD1 protein in ECa-109 cells and increase the expression of p21 protein, which influenced the phosphorylation of key proteins such as AKT and MAPK in the signaling pathway PI3K/Akt and MAPK pathway. Conclusion VPA has an effect on the proliferation and apoptosis of esophageal cancer cells and it is concentration-dependent, which can affect the growth of esophageal cancer cells through the signaling pathways of multiple protein kinase pathways, the expression of survival proteins, the expression of PI3K/Akt and MAPK signaling pathways.
1.2.5 Western Blot檢測? VPA可促進(jìn)食管癌細(xì)胞凋亡來抑制食管癌細(xì)胞的生長。為了進(jìn)一步探究VPA誘導(dǎo)的食管癌細(xì)胞凋亡的潛在的分子機(jī)制,選用Western Blot檢測CyclinD1、p21、Survivin、Bcl-2家族和Caspase蛋白、C-PARP及PI3K/Akt和MAPK信號因子;在濃度為0.5 mmol/L VPA處理0、24、48 h后,經(jīng)過RIPA裂解、蛋白的提取、蛋白溶度的測定、蛋白電泳、轉(zhuǎn)膜、封閉后進(jìn)行抗體孵育及顯影。加入配置好的一抗室溫下孵育2 h,TBST洗滌干凈后,再加入辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗,室溫下孵育1 h,然后將多余的抗體棄去,加入顯影液使其覆蓋膜表面,最后進(jìn)行顯影。
1.3統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
采用SPSS 15.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理,實(shí)時定量RT-PCR實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,每次做3個重復(fù)孔,計(jì)量資料用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(x±s)表示,比較采用t檢驗(yàn),以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2結(jié)果
2.1 MTT檢測不同VPA濃度處理對細(xì)胞生長的抑制作用
VPA能夠抑制ECa-109細(xì)胞活力,且抑制作用具有濃度依賴性,隨著濃度的增高,抑制效果明顯增強(qiáng),而且其IC50值為0.5 mmol/L,此濃度將作為后續(xù)試驗(yàn)VPA的濃度;進(jìn)一步分析得出,相同時間及濃度下,藥物作用時間越長,抑制率越高,生存能力越低。不同濃度VPA兩兩比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。VPA對細(xì)胞的增殖抑制作用隨其濃度的增加而增強(qiáng),用濃度為0.5 mmol/L的VPA分別作用于細(xì)胞24、48、72 h后,發(fā)現(xiàn)其對細(xì)胞生長均有明顯的抑制作用,抑制率分別為(31.20±0.21)、(54.30±0.23)、(57.40±0.33)%,與空白對照組比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。不同時間下VPA對細(xì)胞的抑制率有顯著影響(P<0.05)(圖1)。
2.2流式細(xì)胞檢測細(xì)胞凋亡及周期的變化
經(jīng)VPA處理后的食管癌細(xì)胞,處于G2/M期的細(xì)胞隨著濃度的增加而逐漸增多;VPA對食管癌細(xì)胞誘發(fā)凋亡有作用,0.5 mmol/L VPA在0、24和48 h時,細(xì)胞凋亡比例依次為2.6%、11.9%、17.4%,食管癌凋亡細(xì)胞的數(shù)目隨著藥物作用時間的延長,細(xì)胞凋亡的數(shù)目逐漸增多(圖2)。
2.3 VPA對CyclinD1蛋白和p21調(diào)控蛋白表達(dá)的影響
經(jīng)0.5 mmol/L VPA處理后的食管癌細(xì)胞,CyclinD1蛋白表達(dá)水平降低,而p21表達(dá)水平增高,而且隨著藥物作用時間的延長,具有一定的時效關(guān)系(圖3~4)。
2.4 VPA對Caspase家族蛋白表達(dá)的影響
經(jīng)過0.5 mmol/L VPA處理后的食管癌細(xì)胞對Caspase家族蛋白的影響主要是通過調(diào)節(jié)相應(yīng)的活化蛋白C-Caspase-3、C-Caspase-8、C-PARP的表達(dá)水平,且隨著藥物作用時間的延長,增加了相應(yīng)的活化蛋白C-Caspase-3、C-Caspase-8、C-PARP的表達(dá)水平(圖5~7)。
2.5 VPA對Bcl-2家族蛋白和Survivin蛋白表達(dá)的影響
經(jīng)過0.5 mmol/L VPA處理后的食管癌細(xì)胞,降低了Bcl-2家族蛋白和Survivin蛋白的表達(dá),且隨著作用時間的延長,Survivin蛋白的表達(dá)以及抗凋亡蛋白Mcl-l、Bcl-XL的表達(dá)逐漸降低(圖8~10)。
2.6 VPA對PI3K/AKT和MAPK信號通路的影響
經(jīng)0.5 mmol/L VPA處理食管癌細(xì)胞后,Akt和MAPK信號因子表達(dá)水平降低,且隨著作用時間的延長,Akt、MAPK的表達(dá)逐漸下降(圖11~12)。
3討論
隨著臨床醫(yī)學(xué)研究工作的逐漸深入,越來越多的研究發(fā)現(xiàn)在腫瘤的發(fā)生與發(fā)展中,除了基因突變外,表觀遺傳調(diào)控也扮演者重要的角色[5-6]。在眾多的表觀遺傳調(diào)控中都存在著相對應(yīng)的一系列酶對其進(jìn)行修飾,而在這些表觀遺傳調(diào)控修飾酶中,HDACS作為其中的一類存在意義重大,其參與了許多生物化學(xué)信號傳導(dǎo)通路的去乙酰化修飾,其作用與有效干擾腫瘤發(fā)生、發(fā)展的信號傳導(dǎo)激活密切相關(guān),這為在臨床展開研究工作和治療腫瘤提供了新的切入點(diǎn)。目前,所有HDACi按照化學(xué)結(jié)構(gòu)可分為4大類:以MGCD0103、MS-275等為代表的苯酰胺類;以TSA、PXD-101、SAHA等為代表的異羥肟酸類;以丁酸鈉、丙戊酸等為代表的羧酸類;以Trapoxin、Aci- dipin、FK-228等為代表的環(huán)肽類。由于HDACi的抗腫瘤分子機(jī)制相對的復(fù)雜,再加上不同腫瘤類型中其抗腫瘤機(jī)制有著非常大的差別,對于各個HDACi在體內(nèi)的抗腫瘤機(jī)制依然存在欠缺[7-10]。目前已有多種HDACi被批準(zhǔn)上市,主要用于血液/淋巴系統(tǒng)的治療,包括伏立諾他、羅米地辛、貝林司他、西達(dá)本胺等[4,11]。但是,由于藥代動力學(xué)性質(zhì)以及腫瘤特異性等原因,大多數(shù)HDACi在實(shí)體瘤治療中的效果并不令人滿意。
根據(jù)目前相關(guān)研究顯示,VPA具有明顯的HDACi活性,可以特異性地作用在HDACⅠ與HDACⅡ中,故具有抗腫瘤作用的效果[12]。本次研究所使用的VPA歸于短鏈脂肪酸(SCFA)的范疇內(nèi)。其優(yōu)勢在于患者耐受性較好且不會產(chǎn)生明顯的副作用。本研究結(jié)果顯示,VPA可影響ECa-109細(xì)胞的增殖凋亡以及抑制細(xì)胞的生長,而且具有濃度依賴性,尤其在濃度為0.05 mmol/L時即可明顯抑制食管癌細(xì)胞的活力和增殖。能夠通過抑制CyclinD1啟動子組蛋白H4的乙?;?,誘導(dǎo)細(xì)胞G2/M期阻滯和細(xì)胞凋亡,顯示出較強(qiáng)的抗食管癌活性。相關(guān)研究表明,在大多數(shù)的腫瘤模型當(dāng)中,HDACi已經(jīng)被證實(shí)可以通過影響細(xì)胞內(nèi)、外信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑而發(fā)揮作用[13]。死亡受體(DR)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路在大多數(shù)的轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑中有與其相對應(yīng)的配體,當(dāng)死亡受體和其相對應(yīng)的配體結(jié)合后就能夠啟動凋亡途徑,誘導(dǎo)相對應(yīng)的細(xì)胞凋亡。相關(guān)的研究已經(jīng)證實(shí),在乳腺癌中,MS275和SAHA能夠誘導(dǎo)TRAIL的表達(dá)而不改變DR4和DR5水平,通過募集FADD和激活Caspase8促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的調(diào)亡[14]。另有研究表明,線粒體凋亡途徑也被證實(shí)能夠通過細(xì)胞內(nèi)外信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑而發(fā)揮作用,其受到外界應(yīng)激因素的干擾破壞線粒體內(nèi)蛋白質(zhì)的釋放,導(dǎo)致Caspase8、Caspase9的釋放和活化,緊接著被活化的Caspase3、Caspase6、Caspase8和已被激活的Caspase8和Caspase9共同作用誘導(dǎo)細(xì)胞的調(diào)亡[14]。在調(diào)節(jié)細(xì)胞凋亡的過程中,細(xì)胞內(nèi)的促調(diào)亡蛋白和抗調(diào)亡蛋白也發(fā)揮著非常重要的作用[15]。本研究結(jié)果顯示,VPA能夠通過對Caspase通路的干擾及減少Survivin蛋白的表達(dá),下調(diào)Bcl-2家族中的抗凋亡蛋白Bcl-XL、Mcl-1等機(jī)制促進(jìn)細(xì)胞的凋亡來影響食管癌細(xì)胞。相關(guān)研究表明,細(xì)胞周期抑制劑p21可以被HDACi特異性地抑制[16-17];而且,抑制HDACS可以阻斷多種腫瘤生長相關(guān)信號通路,如PI3K/Akt、MAPK/Erk等[18-19]。因此,本研究通過Western Blot檢測了VPA對p21表達(dá)和PI3K/Akt、MAPK/Erk這兩條細(xì)胞生長依賴的生存信號通路的影響,結(jié)果顯示,VPA可明顯上調(diào)細(xì)胞周期抑制劑p21的表達(dá)水平以及抑制這兩條信號通路中的關(guān)鍵蛋白Akt、MAPK的磷酸化,提示VPA抗食管癌活性不僅僅涉及簡單的分子機(jī)制,還可以通過上調(diào)p21、抑制PI3K/Akt和MAPK信號通路在其中發(fā)揮重要作用。經(jīng)0.5 mmol/L VPA處理食管癌細(xì)胞后,Akt和MAPK信號因子表達(dá)水平降低,且隨著作用時間的延長,Akt、MAPK的表達(dá)逐漸降低。出現(xiàn)這一結(jié)果的原因?yàn)閂PA作用癌細(xì)胞后,抑制了AKt及MAPK的激活,使其表達(dá)降低,間接影響其下游靶基因的激活,從而調(diào)節(jié)下游凋亡相關(guān)蛋白Caspase表達(dá)。
綜上所述,本研究報道的一種高活性的HDACi——VPA的抗食管癌作用及其分子機(jī)制,VPA可以影響食管癌細(xì)胞的增殖凋亡,且具有濃度依賴性;可以通過降低CyclinD1啟動子組蛋白H4的乙酰化水平,抑制G2期CyclinD1的轉(zhuǎn)錄和表達(dá)使食管癌細(xì)胞周期停滯在G2/M期;可以通過影響蛋白酶途徑和減少Survivin蛋白的表達(dá)促進(jìn)細(xì)胞凋亡,并下調(diào)Bcl-2家族中的抗凋亡蛋白Bcl-XL和Mcl-1,從而激活多重信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑和誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡;可以通過降低CyclinD1蛋白的表達(dá)和上調(diào)細(xì)胞周期抑制劑p21表達(dá)水平,并有效抑制Akt和MAPK的磷酸化,影響PI3K/Akt和MAPK信號通路的表達(dá)而影響食管癌細(xì)胞的生長,為進(jìn)一步臨床用藥提供了理論依據(jù);然而,目前有關(guān)VPA在食管癌患者體內(nèi)單獨(dú)用藥效果如何以及用藥后不良反應(yīng)的相關(guān)報道罕見,需要進(jìn)一步的動物實(shí)驗(yàn)及臨床研究,隨著該領(lǐng)域研究工作的不斷深入,HDACi VPA在食管癌方面的應(yīng)用價值必然會不斷的增強(qiáng)。
[參考文獻(xiàn)]
[1]郭瓊.甲基化、乙?;揎椄淖儗κ彻馨┘?xì)胞生長及相關(guān)基因表達(dá)的研究[D].烏魯木齊:新疆醫(yī)科大學(xué),2015.
[2]王小兵.MIC1在食管鱗癌診斷和抗體靶向治療中的意義及其作為腫瘤干細(xì)胞治療靶點(diǎn)的初步研究[D].北京:北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院,2014.
[3]吳健,王晶晶,楊鯨蓉,等.組蛋白去乙?;敢种苿κ彻馨┘?xì)胞抗腫瘤活性及其相關(guān)機(jī)制的研究進(jìn)展[J].東南國防醫(yī)藥,2018,20(4):394-398.
[4]Wahaib K,Beggs AE,Campbell H,et al.Panobinostat:A histone deacetylase inhibitor for the treatment of relapsed or refractory multiple myeloma[J].Am J Health Syst Pharm,2016, 73(7):441-450.
[5]Conte M,Palma RD,Altucci L.HDAC inhibitors as epigenetic regulators for cancer immunotherapy[J].Int J Biochem Cell Biol,2018,98:65-74.
[6]Carolina V D A,Julia H,César C,et al.Epigenetic priming in cancer initiation[J].Trends Cancer,2018,4(6):408-417.
[7]Knipstein J,Gore L.Entinostat for treatment of solid tumors and hematologic malignancies[J].Expert Opin Investig Drugs,2011,20(10):1455-1467.
[8]Ozaki T,Wu D,Sugimoto H,D,et al.Runt-related transcription factor 2 (RUNX2) inhibits p53-dependent apoptosis through the collaboration with HDAC6 in response to DNA damage[J].Cell Death Dis,2019,4(4):e610.
[9]Lopez G,Bill KL,Bid HK,et al.HDAC8,a potential therapeutic target for the treatment of malignant peripheral nerve sheath tumors (MPNST)[J].PLoS One,2015,10(7):e133302.
[10]Saito T,Nishida K,F(xiàn)urumatsu T,et al.Histone deacetylase inhibitors suppress mechanical stress-induced expression of RUNX-2 and ADAMTS-5 through the inhibition of the MAPK signaling pathway in cultured human chondrocytes[J].Osteoarthritis Cartilage,2013,21(1):165-174.
[11]Yoon S,Eom GH.HDAC and HDAC inhibitor:from cancer to cardiovascular diseases[J].Chonnam Med J,2016,52(1):1-11.
[12]Yang H,Maddipoti S,Quesada A,et al.Analysis of class Ⅰ and Ⅱ histone deacetylase gene expression in human leukemia[J].Leuk Lymphoma,2015,56(12):3426-3433.
[13]Glaser KB.HDAC inhibitors:Clinical update and mechanism-based potential[J].Biochem Pharmacol,2007,74(5):659-671.
[14]Xu J,Zhou JY,Wei WZ,et al.Sp1-mediated TRAIL induction in chemosensitization[J].Cancer Res,2008,68(16):6718-6726.
[15]Fulda S.Modulation of TRAIL-induced apoptosis by HDAC inhibitors[J].Curr Cancer Drug Targets,2008,8(2):132-140.
[16]Zhou H,Cai Y,Liu D,et al.Pharmacological or transcriptional inhibition of both HDAC1 and 2 leads to cell cycle blockage and apoptosis via p21Waf1/Cip1 and p19INK4d upregulation in hepatocellular carcinoma[J].Cell Prolif,2018,51(3):e12447.
[17]Arts J,King P,Marien A,et al.JNJ-26481585,a novel "second-generation" oral histone deacetylase inhibitor,shows broad-spectrum preclinical antitumoral activity[J].Clin Cancer Res,2009,15(22):6841-6851.
[18]Witt O,Sand K,Pekrun A.Butyrate induced erythroid differentiation of human K562 cells involves inhibition of ERK and activation of p38 MAP kinase pathways[J].Blood,2000, 95(7):2391-2396.
[19]Peng Z,Guo Z,Ying W,et al.Histone deacetylase inhibitors inhibit the proliferation of gallbladder carcinoma cells by suppressing AKT/mTOR signaling[J].PLoS One,2015,10(8):e136193.
(收稿日期:2020-02-14? 本文編輯:任秀蘭)
[基金項(xiàng)目]福建省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(2017J01223)
通訊作者