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    黨參多糖不同組分的抗炎活性及機制研究

    2020-06-15 06:28:41孟燕徐玉潔張寶徽常聰鄭國華吳勇
    中國藥房 2020年11期
    關(guān)鍵詞:機制

    孟燕 徐玉潔 張寶徽 常聰 鄭國華 吳勇

    中圖分類號 R285 文獻標(biāo)志碼 A 文章編號 1001-0408(2020)11-1348-05

    DOI 10.6039/j.issn.1001-0408.2020.11.11

    摘 要 目的:篩選出黨參多糖中具有較好抗炎效果的組分,并探索其抗炎機制。方法:以黨參藥材為樣品,采用水提醇沉法得黨參粗多糖(CP)。將CP通過DEAE Sepharose Fast Flow、SephadexG-150等凝膠柱分離純化后得到組分CP1-2-1、CP3-1-1,并對其進行表征。采用MTT法測定0.01、0.1、1、10、100 μg/mL的CP、CP1-2-1、CP3-1-1分別對小鼠腹腔巨噬細(xì)胞RAW264.7作用24、48 h后的細(xì)胞存活率。然后將細(xì)胞分為空白組(空白培養(yǎng)基)、模型組[1 μg/mL脂多糖(LPS)]和3種多糖的低、中、高質(zhì)量濃度組(1 μg/mL LPS+25、50、100 μg/mL CP、CP1-2-1、CP3-1-1),加藥培養(yǎng)24 h。分別測定細(xì)胞培養(yǎng)液中一氧化氮(NO)含量以及細(xì)胞中Toll樣受體4(TLR4)、白細(xì)胞介素6(IL-6)、核因子-κB(NF-κB)、腫瘤壞死因子α(TNF-α)mRNA表達水平。結(jié)果:CP的糖含量高達(92.20±0.73)%;CP1-2-1是由果糖組成的單一中性多糖,相對分子量為25.8 kDa;CP3-1-1是由阿拉伯糖、鼠李糖、半乳糖以及半乳糖醛酸等組成的酸性雜多糖,相對分子量為49.5 kDa。3種多糖分別作用24、48 h后,細(xì)胞的存活率均大于99%。與空白組比較,模型組細(xì)胞培養(yǎng)液中NO含量以及細(xì)胞中TLR4、IL-6、NF-κB、TNF-α mRNA表達水平均顯著升高(P<0.05或P<0.01)。與模型組比較,各給藥組細(xì)胞培養(yǎng)液中NO含量均顯著降低;50、100 ?g/mL CP組細(xì)胞中TLR4、NF-κB、TNF-α、IL-6 mRNA表達水平均顯著降低(P<0.05或P<0.01),25 ?g/mL CP1-2-1組細(xì)胞中TLR4、NF-κB mRNA表達水平以及50、100 ?g/mL CP1-2-1組細(xì)胞中TLR4、NF-κB、TNF-α、IL-6 mRNA表達水平均顯著降低(P<0.05或P<0.01),25 ?g/mL CP3-1-1組細(xì)胞中IL-6 mRNA表達水平和50? ? ??g/mL CP3-1-1組細(xì)胞中NF-κB、TNF-α、IL-6 mRNA表達水平以及100 ?g/mL CP3-1-1組細(xì)胞中TLR4、NF-κB、TNF-α、IL-6 mRNA表達水平均顯著降低(P<0.05或P<0.01)。結(jié)論:黨參CP與均一多糖組分CP1-2-1、CP3-1-1均具有一定的抗炎活性;其機制可能與抑制TLR4/NF-κB途徑的活化來抑制TNF-α、IL-6等炎癥因子的生成與釋放有關(guān)。

    關(guān)鍵詞 黨參多糖;粗多糖;多糖組分;抗炎活性;機制

    ABSTRACT? ?OBJECTIVE: To screen the components with better anti-inflammatory effect from Codonopsis Radix polysaccharide and explore the anti-inflammatory mechanism. METHODS: Using Codonopsis Radix as sample, the crude polysaccharide (CP) was obtained by water extraction and alcohol precipitation. After CP was separated and purified by Fast Flow DEAE Sepharose, SephadexG-150 gel column and so on, the components CP1-2-1 and CP3-1-1 were obtained and then characterized. The survival rate of RAW264.7 cell was determined by MTT method after cultured with CP, CP1-2-1 and CP3-1-1 (0.01, 0.1, 1, 10, 100? ? ? ?μg/mL) for 24 and 48 h respectively. The cells were divided into blank group (blank culture medium), model group (1 μg/mL LPS) and low-, medium- and high-concentration groups of 3 kinds of Codonopsis Radix polysaccharide (1 μg/mL LPS+25, 50, 100 μg/mL CP, CP1-2-1, CP3-1-1 solution). After cultured for 24 h, NO content in cell culture solution, mRNA expressions of TLR4, IL-6, NF-κB and TNF-α in cells were determined. RESULTS: The sugar content of CP reached (92.20±0.73)%. CP1-2-1 was a single neutral polysaccharide composed of fructose with a relative molecular weight of 25.8 kDa. CP3-1-1 was an acidic heteropolysaccharide composed of arabinose, rhamnose, galactose and galacturonic acid and so on, with a relative molecular weight of 49.5 kDa. Cell survival rates were higher than 99%, after cultured with 3 kinds of polysaccharide for 24 and 48 h. Compared with blank group, NO content in cell culture solution and mRNA expressions of TLR4, IL-6, NF-κB and TNF-α in cells were increased significantly in model group (P<0.05 or P<0.01). Compared with model group, NO content in cell culture solution of each administration group was significantly reduced, mRNA expressions of TLR4, NF-κB, TNF-α, IL-6 in cells in 50, 100 μg/mL CP group were significantly decreased (P<0.05 or P<0.01); mRNA expressions of TLR4, NF-κB in cells in 25 ?g/mL CP1-2-1 group and mRNA expressions of TLR4, NF-κB, TNF-α, IL-6 in cells in 50, 100 ?g/mL CP1-2-1 group were significantly decreased (P<0.05 or P<0.01); mRNA expressionsof IL-6 in cells in 25 ?g/mL CP3-1-1 group, mRNA expressions of NF-κB, TNF-α, IL-6 in cells in 50 ?g/mL CP3-1-1 group and mRNA expressions of TLR4, NF-κB, TNF-α, IL-6 in cells in 100 ?g/mL CP3-1-1 group were significantly decreased (P<0.05 or P<0.01). CONCLUSIONS: CP, CP 1-2-1 and CP 3-1-1 all have certain anti-inflammatory activities. The mechanism may be related to inhibiting the generation and releasing of inflammatory cytokines such as TNF-α, IL-6 by inhibiting the activation of TLR4/NF-κB pathway.

    KEYWORDS? ?Codonopsis Radix polysaccharides; Crude polysaccharide; Polysaccharide component; Anti-inflammatory activity; Mechanism

    多糖是繼核酸和蛋白質(zhì)之后的第三大類生物大分子。近年,隨著糖組學(xué)、糖生物學(xué)的飛速發(fā)展,已有越來越多的傳統(tǒng)中藥多糖(如枸杞多糖、當(dāng)歸多糖、黃芪多糖、靈芝多糖等)被證實具有諸如抗氧化、調(diào)節(jié)免疫、抗腫瘤以及降血糖等多種生物活性[1]。黨參為桔梗科植物黨參[Codonopsis pilosula(Franch.) Nannf.]、素花黨參 [Codonopsis pilosula Nannf. var. modesta (Nannf.)L.T.Shen]或川黨參(Codonopsis tangshen Oliv.)的干燥根,是我國常用的傳統(tǒng)中藥,具有健脾益肺、補中益氣以及調(diào)理胃腸運動的效用[2-3]。目前,已有許多研究從黨參中提取到黨參多糖,并證實了其具有多種生物活性,其中就包括了抗炎活性[4-6]。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),黨參粗多糖對潰瘍性結(jié)腸炎模型大鼠有防治作用[7],然而其中具有抗炎活性的有效組分并不明確。鑒于此,本研究擬對黨參粗多糖進行進一步的分離純化,篩選其中具有抗炎作用的有效組分,并探索其抗炎機制,以期為明確黨參多糖中的抗炎活性物質(zhì)提供參考。

    1 材料

    1.1 儀器

    UV-2550型紫外分光光度計(日本Shimadzu公司);2F1-I型多功能紫外分析儀(上海嘉鵬科技有限公司);1100LC/MSD Trap型二維液相色譜儀(美國Agilent公司);RE-2010型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海亞榮生化儀器廠);FDU-2110型冷凍干燥機(日本Eyela東京理化器械株式會社);MCO-230AICU-VL-PC型CO2培養(yǎng)箱(日本Panasonic公司);iMark型酶標(biāo)儀(美國Bio-Rad公司)。

    1.2 藥品與試劑

    黨參藥材購自九州通醫(yī)藥集團股份有限公司(產(chǎn)地:湖北恩施板橋鎮(zhèn),批號:181103,規(guī)格:500 g),經(jīng)湖北中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院陳科力教授鑒定為桔梗科植物川黨參(C. tangshen Oliv.)的干燥根莖;DEAE Sepharose Fast Flow凝膠、Sephadex G-150葡聚糖凝膠、G-100葡聚糖凝膠(美國通用電氣醫(yī)療生物科學(xué)有限公司,規(guī)格:500 g);分子量分別為2 000、500、70、40、10、3 kDa的葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)品(批號:S14118、S14116、S14112、S14110、S14107、S14101)以及葡萄糖(批號:B21882)、甘露糖(批號:B21895)、半乳糖(批號:JG155275)、阿拉伯糖(批號:B25848)、鼠李糖(批號:B21931)、木糖(批號:B21155)、果糖(批號:B21896)、半乳糖醛酸(批號:YY11147)等單糖標(biāo)準(zhǔn)品均購自上海源葉生物科技有限公司,純度均為98%;脂多糖(LPS,美國Sigma公司,批號:L2630);一氧化氮(NO)檢測試劑盒(上海碧云天生物技術(shù)有限公司,批號:20170211);AzfreshTM總RNA小量/微量提取試劑盒(批號:A06110014)、AZpolarisTM cDNA Synthesis 提取試劑盒(批號:A0610105)、AZpolarisTM實時熒光定量-聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(qPCR)試劑盒MasterMix(SYBR Green)(批號:A1127110)均購自瑞典Azanno公司;白細(xì)胞介素6(IL-6)、腫瘤壞死因子α(TNF-α)、核因子-κB(NF-κB)mRNA引物均由上海Invitrogen公司合成及檢驗;二甲基亞砜(DMSO)等試劑均為市售分析純,水為超純水。

    1.3 細(xì)胞

    小鼠腹腔巨噬細(xì)胞系RAW264.7購于武漢普諾賽生命科技有限公司。

    2 方法與結(jié)果

    2.1 黨參多糖不同組分的分離純化

    按照本課題組前期報道方法[8]進行黨參粗多糖的制備:取500 g黨參藥材,采用水提醇沉法得棕黃色粉末狀粗多糖(記為CP)46.6 g,得率為9.3%。CP的分離純化:將CP溶于水中,制成20 mg/mL的溶液。取200 mL上述溶液,經(jīng)0.45 μm微孔濾膜過濾后,上DEAE Sepharose Fast Flow凝膠柱(20 cm×2.6 cm),以2 mL/min的流速依次用水和0.1、0.25 mol/L的氯化鈉溶液進行洗脫,按10 mL/管收集洗脫液,采用苯酚-硫酸法隔管檢測,直至紫外分光光度計測定無多糖吸收峰為止(最后用0.5 mol/L氯化鈉溶液沖柱)。將收集得到的3種溶液洗脫部分透析凍干,得淡黃色粉末,分別命名為CP1、CP2、CP3,得率分別為54.9%、9.9%、22.8%。取100 mg各洗脫部分粉末,分別加4 mL相應(yīng)洗脫液溶解后,繼續(xù)上SephadexG-150葡聚糖凝膠柱(90 cm×2.0 cm)進行純化,然后以0.5 mL/min的流速分別用相應(yīng)洗脫液進行洗脫,按5 mL/管收集洗脫液,將所有洗脫劑的洗脫組分分別透析凍干,分別命名為CP1-1(得率為5.7%)、CP1-2(得率為36.1%)、CP2-1(得率為1.5%)、CP2-2(得率為1.7%)、CP3-1(得率為14.2%)。取其中得率較高的CP1-2、CP3-1各50 mg,分別加2 mL水、0.25 mol/L氯化鈉溶液溶解后,上SephadexG-100柱(70 cm×1.5 cm)進行分離(分別用對應(yīng)溶劑進行洗脫,流速為0.25 mL/min,按4 mL/管進行收集),最終得2個多糖組分,透析凍干后,分別命名為CP1-2-1、CP3-1-1,得率分別為28.9%、9.3%。

    2.2 黨參多糖的表征

    2.2.1 黨參多糖的糖含量和糖醛酸含量 采用苯酚-硫酸法[9]測定CP中糖含量:將CP制備成質(zhì)量濃度為0.2 mg/mL的水溶液,以葡萄糖為對照品,采用紫外可見分光光度計進行測定。采用間羥基聯(lián)苯法[10]測定CP1-2-1、CP3-1-1中糖醛酸含量:將樣品制成1 mg/mL的水溶液,以葡萄糖醛酸為對照品,采用紫外可見分光光度計進行測定。結(jié)果顯示,CP的糖含量高達(92.20±0.73)%,表明所提取的產(chǎn)物幾乎均為多糖,可以用于后續(xù)試驗。組分CP1-2-1中幾乎不含有糖醛酸(含量接近0),是一種中性多糖;而組分CP3-1-1中糖醛酸的含量高達(76.3±0.71)%,表明CP3-1-1可能是一種富含糖醛酸的酸性多糖。

    2.2.2 組分CP1-2-1、CP3-1-1的相對分子量 采用高效凝膠滲透色譜法(HPGPC)[11]進行測定。色譜柱為TSK-GEL,檢測器為示差折光檢測器,進樣量為50 μL,流動相為水,流速為0.95 mL/min,柱溫為40 ℃。取不同分子量(2 000、500、70、40、10、3 kDa)的葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)品,加水制成質(zhì)量濃度均為1 mg/mL的標(biāo)準(zhǔn)溶液,按上述色譜條件進行測定,記錄色譜圖。運用EZ Chrom Elite Compact軟件對測得的洗脫體積(Vp)與標(biāo)準(zhǔn)品分子量(Mp)進行擬合,得到標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為lgMp=-0.6×? ? ?10-10Vp3+1.365×10-5Vp2-0.108 9Vp+295.5(R=0.999 1)。然后,取組分CP1-2-1、CP3-1-1適量,用水制備成質(zhì)量濃度為1 mg/mL的樣品溶液,按上述色譜條件進樣測定,記錄色譜圖,詳見圖1。結(jié)果顯示,組分CP1-2-1、CP3-1-1的色譜圖中均顯示為單一對稱峰,說明這2種組分是均一多糖。測得兩種組分的洗脫體積分別為? ? ?8 514.21、7 901.32 mL,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線方程計算得組分CP1-2-1、CP3-1-1的相對分子量分別為25.8、49.5 kDa。

    2.2.3 組分CP1-2-1和CP3-1-1的單糖組成 采用完全酸水解法聯(lián)合薄層色譜(TLC)法[12]進行分析。取各單糖(葡萄糖、甘露糖、半乳糖、阿拉伯糖、鼠李糖、木糖、果糖、半乳糖醛酸)對照品適量,用水制備成質(zhì)量濃度均為10 mg/mL的單糖標(biāo)準(zhǔn)溶液,備用。將組分CP1-2-1在0.2 mol/L硫酸、60 ℃條件下水解40 min,將組分CP3-1-1在2 mol/L鹽酸、110 ℃條件下水解2 h,待完全酸水解后,取產(chǎn)物適量分別加水溶解,制成質(zhì)量濃度均為10 mg/mL的樣品溶液。分別取單糖標(biāo)準(zhǔn)溶液和樣品溶液點樣于薄層纖維素板(20 cm×10 cm)上,點樣量均為10 μL。以正丁醇-乙酸乙酯-異丙醇-甲酸-水-吡啶(3.5 ∶ 10 ∶ 6 ∶ 3.5 ∶ 3 ∶ 3,V/V/V/V/V/V)為展開劑,展開。以苯胺-鄰苯二甲酸為顯色劑進行顯色(110 ℃、10 min)后,分別在可見光、紫外燈下(波長范圍為260~280 nm)觀察,詳見圖2。結(jié)果顯示,組分CP1-2-1中只含有果糖,是一種單一組成的多糖;而組分CP3-1-1則由阿拉伯糖、鼠李糖、半乳糖以及半乳糖醛酸等單糖組成,是一種酸性雜多糖。

    2.3 3種多糖的抗炎活性評價及機制研究

    2.3.1 3種多糖的細(xì)胞毒性考察 取處于對數(shù)生長期的RAW264.7細(xì)胞,以5×103個/孔接種于96孔板中(取3塊板,分別考察CP、CP1-2-1、CP3-1-1這3種多糖的細(xì)胞毒性),每孔100 μL。將細(xì)胞分為空白組、對照組和不同質(zhì)量濃度多糖組,每組設(shè)6個復(fù)孔。將細(xì)胞置于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中,待細(xì)胞培養(yǎng)24 h貼壁良好后,空白組加入培養(yǎng)基,對照組加入磷酸鹽緩沖液(PBS),多糖組分別加入不同質(zhì)量濃度的多糖PBS溶液(0.01、0.1、1、10、100? ?μg/mL),每孔200 μL。分別將各組細(xì)胞置于37 ℃、5% CO2條件下繼續(xù)培養(yǎng)24 、48 h后,吸棄培養(yǎng)基,加20 μL MTT溶液,在37 ℃下繼續(xù)培養(yǎng)4 h,吸棄培養(yǎng)基;每孔中加入150 μL的DMSO溶液,搖勻,采用酶標(biāo)儀在490 nm波長處測定其吸光度(OD),并計算各多糖組細(xì)胞的存活率。各多糖組的細(xì)胞存活率=[(OD多糖組-OD空白組)/(OD對照組-OD空白組)]×100%。試驗重復(fù)3次。3種多糖作用24、48 h后的細(xì)胞存活率測定結(jié)果見表1。

    結(jié)果顯示,0.01~100 μg/mL的3種多糖在作用24、48 h后,對細(xì)胞均無細(xì)胞毒性(細(xì)胞存活率均大于99%),甚至還有一定的促細(xì)胞增殖作用。這提示黨參多糖是一種天然無毒的生物大分子,可用于后續(xù)試驗。

    2.3.2 黨參多糖對LPS誘導(dǎo)細(xì)胞炎癥的影響 取處于對數(shù)生長期的RAW264.7細(xì)胞,以5×103個/孔接種于96孔板中(每種多糖單獨使用一塊板),每孔100 μL。將細(xì)胞分為空白組(空白培養(yǎng)基)、模型組(1 μg/mL LPS)和多糖低、中、高質(zhì)量濃度組(1 μg/mL LPS+25、50、100? ? ? μg/mL多糖溶液,多糖用PBS溶解),每組設(shè)4個復(fù)孔。加藥后,將細(xì)胞置于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,收集細(xì)胞培養(yǎng)液,按照試劑盒說明書操作測定NO含量。試驗重復(fù)3次。采用SPSS 19.0軟件對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析。計量資料以x±s表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用t檢驗,P<0.05表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。各組細(xì)胞培養(yǎng)液中NO含量測定結(jié)果見表2。

    結(jié)果顯示,與空白組比較,模型組細(xì)胞培養(yǎng)液中NO含量顯著升高(P<0.01);與模型組比較,3種多糖組細(xì)胞培養(yǎng)液中NO含量均顯著降低(P<0.05或P<0.01)。

    2.3.3 3種多糖的抗炎機制研究 按“2.3.2”項下方法進行細(xì)胞接種、分組和給藥。然后將細(xì)胞置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,用PBS快速清洗細(xì)胞,加入Trizol試劑,反復(fù)吹打,使細(xì)胞充分裂解,按照試劑盒說明書操作提取總mRNA。采用分光光度計測定總mRNA在260、280 nm波長處的吸光度(OD),根據(jù)OD260/OD280評價其純度。然后取mRNA反轉(zhuǎn)錄合成cDNA后,在Mini OpticonTM檢測系統(tǒng)上進行PCR擴增。擴增體系(20 μL):qPCR試劑10 μL,上、下游引物(10? ? ? ? μmol/L)各0.5 μL,雙蒸水5.0 μL,cDNA模板4.0 μL。擴增條件:95 ℃預(yù)變性2 min;95 ℃變性10 s,62 ℃退火30 s,72 ℃延伸15 s,共40個循環(huán)。以β-actin為內(nèi)參,采用2-ΔΔct法計算目的基因的表達水平。試驗重復(fù)3次。按照“2.3.2”項下方法進行統(tǒng)計分析。PCR引物序列和擴增產(chǎn)物長度見表3,各組細(xì)胞中TLR-4、NF-κB、IL-6、TNF-α mRNA表達水平測定結(jié)果見表4。

    結(jié)果顯示,與空白組比較,模型組細(xì)胞中TLR4、NF-κB、TNF-α、IL-6 mRNA表達水平均顯著升高(P<0.05或P<0.01)。與模型組比較,50、100 ?g/mL CP組細(xì)胞中TLR4、NF-κB、TNF-α、IL-6 mRNA表達水平均顯著降低(P<0.05或P<0.01),25 ?g/mL CP1-2-1組細(xì)胞中TLR4、NF-κB mRNA表達水平以及50、100 ?g/mL CP1-2-1組細(xì)胞中TLR4、NF-κB、TNF-α、IL-6 mRNA表達水平均顯著降低(P<0.05或P<0.01),25 ?g/mL CP3-1-1組細(xì)胞中IL-6 mRNA表達水平和50 ?g/mL CP3-1-1組細(xì)胞中NF-κB、TNF-α、IL-6 mRNA表達水平以及100 ?g/mL CP3-1-1組細(xì)胞中TLR4、NF-κB、TNF-α、IL-6 mRNA表達水平均顯著降低(P<0.05或P<0.01)。

    3 討論

    目前,國內(nèi)外已有許多文獻報道從黨參中提取的多糖具有多種生物活性[4-6],但這些多糖大多數(shù)是粗多糖,而關(guān)于黨參多糖具體哪個組分影響了其生物活性的報道較為少見。本研究將CP通過色譜柱分離純化后,最終獲得2種均一的黨參多糖組分(CP1-2-1、CP3-1-1)。通過初步表征發(fā)現(xiàn),組分CP1-2-1是一種只含有果糖的中性多糖,而組分CP3-1-1是由一種由阿拉伯糖、鼠李糖、半乳糖以及半乳糖醛酸等組成的酸性雜多糖。

    巨噬細(xì)胞是機體重要的免疫細(xì)胞之一,具有吞噬、抗原提呈以及分泌多種生物活性物質(zhì)的功能[13]。通常情況下,急性炎癥反應(yīng)發(fā)生時,巨噬細(xì)胞內(nèi)會產(chǎn)生大量的NO,造成細(xì)胞損傷,而通過測定細(xì)胞培養(yǎng)液中NO的含量,可以反映炎癥的病變程度[13]。本研究通過考察CP、CP1-2-1、CP3-1-1對炎癥模型細(xì)胞NO釋放量的影響,發(fā)現(xiàn)三者均可抑制細(xì)胞中NO的釋放,均有較好的抗炎效果。Toll樣受體(TLRs)是一種重要的炎性受體,其與配體結(jié)合可開啟信號傳遞途徑;NF-κB對參與免疫反應(yīng)各階段的許多分子都具有調(diào)控作用;TLR4/NF-κB是一種常見的信號通路,可調(diào)控炎性介質(zhì)的合成和釋放來介導(dǎo)炎性損傷[13-15]。在LPS炎癥模型中,巨噬細(xì)胞受到LPS的誘導(dǎo)刺激后,其模式識別受體TLR4會與配體LPS結(jié)合,從而刺激巨噬細(xì)胞炎癥通路TLR4/NF-κB的激活,以此增加炎性因子mRNA的轉(zhuǎn)錄,使細(xì)胞分泌更多炎性因子(如TNF-α、IL-6等),從而導(dǎo)致炎癥的發(fā)生[16]。因此,通過探究細(xì)胞中各炎癥因子的mRNA表達情況,可初步探究黨參多糖的抗炎機制。本研究結(jié)果顯示,3種多糖組分均能降低炎癥模型細(xì)胞中TLR4、NF-κB、TNF-α和IL-6的mRNA表達水平。

    綜上所述,3種多糖組分均具有一定的抗炎活性,其抗炎機制可能與抑制TLR4/NF-κB通路的活化,從而抑制如TNF-α、IL-6等炎癥因子的生成與釋放有關(guān)。

    參考文獻

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    (收稿日期:2019-11-06 修回日期:2020-04-16)

    (編輯:林 靜)

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