賀字典,高玉峰*,王 燕,李翠霞,高歆瑤,張志浩
(1.河北科技師范學院,河北 秦皇島 066600;2.盧龍縣農(nóng)業(yè)農(nóng)村局,河北 秦皇島 066600;3.滄州市開發(fā)區(qū)中心學校,河北 滄州 061000)
【研究意義】植物根際促生菌(plant growth promoting rhizobacteria,PGPR)是植物根際周圍土壤中的一群自生細菌,通過產(chǎn)生抗生素和分泌鐵載體等方式抑制或減輕植物病害、重金屬、鹽脅迫等對植物產(chǎn)生的不良影響,還能通過解磷、固氮、產(chǎn)生植物激素、酶解降低乙烯水平等方式直接刺激和調(diào)節(jié)植物生長[1-3]。土壤中存在大量的PGPR,主要包括假單胞菌屬(Pseudemonas)和芽孢桿菌屬(Bacillus)[4],它們能將難溶性磷轉(zhuǎn)化為農(nóng)作物可吸收利用的可溶性磷,促進農(nóng)作物生長,改善土壤環(huán)境,顯著提高土壤中的有效磷含量。磷肥能夠增強番茄根系活力,使根系吸收養(yǎng)分能力加強,番茄根系中氮、磷、鉀營養(yǎng)元素含量增加,提高番茄葉片中可溶性蛋白質(zhì)和葉綠素含量。而且能夠增加果實中可溶性糖含量、維生素C和可溶性固形物含量[5]?!厩叭搜芯窟M展】隨著番茄栽培面積的不斷擴大,為追求番茄高產(chǎn),不斷增加磷肥施入量。施入土壤中的磷素大部分被土壤固定,只有10 %~25 %被當季作物吸收利用,造成大部分磷元素浪費。在國家實施減肥減藥增效政策的支持下,如何將土壤中被固定住的、難溶性的磷釋放出來,被番茄吸收利用,PGPR將發(fā)揮重要作用。PGPR與生物炭配施提高了番茄根際土微生物群落多樣性,顯著提高了硝化螺旋菌屬和慢生根瘤菌屬的相對豐度[6]。用JD37菌株處理的番茄種子,能夠顯著促進番茄初生苗側(cè)根的生長,與對照相比,番茄幼苗的平均根長、平均苗高、平均鮮重和平均干重分別提高了37.41 %、18.20 %、69.62 %、70.97 %[7]。番茄種子在用蒸餾水浸泡后并在移栽時加含有 CS1(Pseudomnasputida, 惡臭假單胞菌) 和CS2(Enterobactercloacae, 陰溝腸桿菌) 2種促生菌的藻原膠珠子的種植方式可以提高番茄的產(chǎn)量[8]。【本研究切入點】本文從多年連作土壤和海邊鹽生植物根際土壤中篩選出產(chǎn)生ACC脫氨酶的PGPR,在離體條件下篩選出具有解磷效果的菌株后,測定PGPR對番茄幼苗與結(jié)果期番茄生長性狀以及根圍土壤養(yǎng)分的影響?!緮M解決的關(guān)鍵問題】本研究為PGPR在實際生產(chǎn)中的應(yīng)用提供數(shù)據(jù)支撐。
PGPR供試菌株:AHG-1,AHG-2,AHG-4,AHG-5,LZT-1,LZT-5,LZT-7,LZT-8,F(xiàn)QG-1,F(xiàn)QG-3,F(xiàn)QG-5,F(xiàn)QG-6,CRG-1,CRG-3,CRG-8共15株,本實驗室自種植不同連作年限溫室土壤、番茄根際土壤和鹽生植物根際土壤中分離、保存。供試番茄品種:京T301,北京中農(nóng)綠亨種子科技有限公司生產(chǎn)。
無機磷培養(yǎng)基:(NH4)2SO40.5 g,MgSO4·7H2O 0.3 g,KCl 0.3 g,NaCl 0.3 g,磷酸鈣5 g,葡萄糖10 g,MnSO4·H2O 0.3g,F(xiàn)eSO4·7 H2O 0.3 g,瓊脂20 g,蒸餾水1000 mL,pH7.2,不加瓊脂即為液體培養(yǎng)基。LB培養(yǎng)基:蛋白胨10 g,酵母粉5 g,NaCl 10 g,蒸餾水1000 mL,pH 7.2~7.5。NA培養(yǎng)基:蛋白胨10 g,牛肉膏3 g,NaCl 5 g,瓊脂15 g,蒸餾水1000 mL,pH7.2~7.4。
1.3.1 PGPR菌種活化與菌懸液制備 將4 ℃保存的15株P(guān)GPR菌種,分別接種到NA平板上。2 d后將長好的15株P(guān)GPR分別接入120 mL LB液體培養(yǎng)基(250 mL三角瓶)中,28 ℃、150 r/min搖床中振蕩培養(yǎng)36 h后,用無菌水稀釋菌液至活菌密度為108cfu·mL-1,備用。
1.3.2 解磷效果篩選 將牛津杯置于無機磷固體培養(yǎng)基中央,用移液槍吸取100 μl已制備好的PGPR菌懸液注入到牛津杯中,28 ℃黑暗培養(yǎng)7 d后,十字交叉測量解磷透明圈直徑。
1.3.3 PGPR育苗土準備 將篩選出來的解磷菌株用液體解磷培養(yǎng)基擴繁,調(diào)節(jié)菌懸液濃度為108cfu·mL-1后,按照5 %和10 %的體積/重量比(V/W)比例與草炭︰蛭石=2︰1的育苗基質(zhì)混勻,并保持濕潤,7 d后裝育苗盤,以清水為對照。
1.3.4 番茄種子催芽和播種 挑選大小均一、籽粒飽滿的番茄種子。將番茄種子用涼水浸泡30 min,再用50 ℃的溫水攪拌浸泡20 min。撈出后均勻放入鋪有濕紗布的保濕盒內(nèi)催芽待種子露白后播種于32孔穴盤中,每穴2粒種子,正常管理。
1.3.5 PGPR灌根 試驗地點選擇在河北科技師范學院開發(fā)區(qū)校區(qū)試驗田。小區(qū)面積1 m×6 m,株行距35 cm×30 cm,隨機排列。等番茄緩苗后和開花前使用灌根法澆灌PGPR,每株100 mL。并以三本農(nóng)好有機肥3000 kg·hm-2、羊糞+尿素3000 kg·hm-2、生物炭復(fù)合肥150 kg·hm-2為對照。
1.3.6 番茄生長性狀的測定 當番茄幼苗長至3片真葉時,分別測量5 %和10 % PGPR對番茄生長性狀的影響,每個處理取10株,用自來水將番茄根際的基質(zhì)輕輕沖掉,測量番茄幼苗株高、莖粗、葉長、葉寬、地上部、地下部的鮮重和干重。剩下的番茄苗移栽到露地實驗地,在初果期使用德國WALZ公司生產(chǎn)的光合儀GSF-3000于上午10:00-12:00測定番茄葉片的光合作用。每株測定果實上下各2片番茄葉片的光合作用,每畦測10株。同時測定莖粗等其他生長性狀。
1.3.7 番茄根圍土壤養(yǎng)分的測定 當番茄植株長至3片真葉和初果期時,對植株根際的土壤進行取樣,在實驗室通風晾干后,挑揀出砂石和植物體殘渣并用研缽碾碎過20目篩。有機質(zhì)含量采用重鉻酸鉀滴定法測定;全氮含量采用凱氏定氮法測定;全鉀含量采用氫氧化鈉熔融法-火焰光度法測定;速效磷含量采用鉬銻抗比色法測定;速效鉀含量采用NH4AC浸提-火焰光度法測定[9-10]。
1.3.8 解磷細菌的鑒定 采用細菌DNA試劑盒提取解磷菌DNA。①將菌株分別接種于液體LB培養(yǎng)基中,28 ℃震蕩培養(yǎng)2 d。②取1.5 mL培養(yǎng)物于離心管中,在離心機下以12 000 r/min離心2 min。③沉淀物加入567 μl的TE緩沖溶液,反復(fù)吹打使之重新懸浮,加入30 μl 10 %SDS和15 μl的蛋白酶K,混勻,于37 ℃溫1 h。④加入100 μl 5 mol·L-1NaCl,充分混勻,再加入80 μl CTAB/NaCl 溶液,混勻后再于65 ℃溫育10 min。⑤加入等體積的酚/氯仿/異戊醇混勻,離心4~5 min,將上清轉(zhuǎn)到新管中,加入0.6~0.8倍體積的異丙醇,輕輕混合直到DNA沉淀下來,沉淀可稍加離心。⑥沉淀用70 %的乙醇洗滌后,離心棄乙醇,在潔凈工作臺中稍加干燥,重溶于20 μl TE緩沖溶液(含RNaseA< 25 ng/mL)中,備用。
采用細菌通用引物F27(5’-AGAGTTTGATCTTGGCTCAG-3’)和P1492r(5’-GGTT ACCTTGTTACGACTT-3’)對16 Sr DNA序列進行擴增和測序。PCR反應(yīng)體系為Premix 12.5 μl,10 μmol·L-1引物各1 μl,模板DNA 1 μl,以ddH2O補足至25 μl。PCR反應(yīng)條件:94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性30 s;55 ℃退火1 min;72 ℃延伸2 min;35個循環(huán),72 ℃后延伸10 min。
將PCR擴增樣品送交上海生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司,分別以F27和P1492r為測序引物,雙向測通序列。將測序結(jié)果進行拼接后,取一完整序列在GenBank上進行序列比對,參考相似度、同源性最高的菌株對目標菌株進行分類鑒定。采用鄰接法(Neighbor-Joining,NJ)構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,對序列親緣關(guān)系進行分析。
采用Microsoft Excel 2010和SAS 9.1.3軟件對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析,采用單因素方差分析、LSD法進行差異顯著性檢驗。
在15株P(guān)GPR菌株中,以FQG-5的解磷透明圈直徑最大,為2.33 cm,其次是LZT-5、FQG-6和FQG-3的解磷透明圈分別為2.27,2.17 cm,四者差異不顯著,但顯著高于其他菌株的解磷透明圈(表1)。
表2顯示,將5 %和10 %的FQG-5和LZT-5 2種PGPR分別加入到番茄育苗基質(zhì)后,番茄幼苗地上部鮮重和地下部鮮重分別為1.23,1.29,1.12,1.19 g和0.19,0.20,0.18,0.18 g,四者間差異不顯著,但均顯著高于清水對照。番茄幼苗地上部干重以10 % FQG-5處理的最重為0.04 g,顯著高于其他處理。用FQG-5和LZT-5處理的番茄幼苗地下部干重均顯著高于清水對照。同樣用10 % FQG-5和LZT-5處理的育苗基質(zhì)栽培的番茄幼苗株高、莖粗和葉面積最高,分別為13.66 cm、0.35 cm、28.95 cm2和13.70 cm、0.36 cm、29.75 cm2,顯著高于其他處理。
表3顯示,將10 % FQG-5加入到番茄育苗基質(zhì)中測定番茄根圍土壤養(yǎng)分,全氮、全磷、全鉀、銨態(tài)氮、速效磷、速效鉀和有機質(zhì)含量分別為245.2,73.0,268.7,70.59,43.45,160.42 mg·kg-1和40.22 g·kg-1。10 % FQG-5與其他PGPR菌株處理后的番茄根圍土壤養(yǎng)分含量相比,除了銨態(tài)氮含量差異不顯著外,其他6種養(yǎng)分含量均顯著增高。
表1 PGPR解磷透明圈直徑
表2 PGPR對番茄幼苗生長性狀的影響
表3 PGPR對番茄幼苗根圍土壤養(yǎng)分的影響
表4顯示,PGPR灌根后的番茄莖粗為0.90 cm、株高為88.70 cm、葉面積為18.08 cm2、光照強度為5905 lx、產(chǎn)量為42 371.18 kg·hm-2,分別為生物炭+復(fù)合肥的1.10、1.11、1.13、1.19和1.19倍,顯著于其他對照。
表4 PGPR對露地番茄成株期生長性狀的影響
表5 PGPR對露地番茄根圍土壤養(yǎng)分的影響
表6 PGPR解磷菌種類
表5顯示,用10 %FQG-5灌根處理的露地番茄根圍的速效磷為40.05 mg·kg-1、速效鉀193.00 mg·kg-1、銨態(tài)氮78.30 mg·kg-1、硝態(tài)氮50.53 mg·kg-1、有機質(zhì)37.79 g·kg-1、全氮0.80 g·kg-1、全磷0.79 g·kg-1、全鉀2.03 g·kg-1,分別為生物炭+復(fù)合肥的1.11、1.46、1.26、1.10、1.66、1.33、1.22和1.43倍,均顯著高于其它處理。
由表6及圖1可以看出,將PGPR菌株的16SrRNA序列測序后,經(jīng)過與Genbank中的16SrRNA序列比對后15株P(guān)GPR分屬于8個種的細菌,分別為嗜麥芽寡養(yǎng)單胞菌(Stenotrophomonasmaltophilia)、土生拉烏爾菌(Raoultellaterrigena)、土壤農(nóng)桿菌(Agrobacteriumtumefaciens)、產(chǎn)酸克雷伯菌(Klebsiellaoxytoca)、克呂沃爾氏菌(Kluyveracryocrescens)、不動桿菌(Acinetobacter)、粘質(zhì)沙雷氏菌(Serratiamarcescens)、成團泛菌(Pantoeaagglomerans)。其中解磷效果較好的菌株LZT-5為不動桿菌(Acinetobacter)。FQG-5為嗜麥芽寡養(yǎng)單胞菌(Stenotrophomonasmaltophilia)。FQG-6和FQG-3分別為成團泛菌(Pantoeaagglomerans)和土壤農(nóng)桿菌(Agrobacteriumtumefaciens)。
從連作番茄和鹽生雜草根際土壤中15株P(guān)GPR中分離到2株解磷效果較好的菌株LZT-5和FQG-5,分別為不動桿菌屬細菌(Acinetobacter)和嗜麥芽寡養(yǎng)單胞菌(S.maltophilia)。PGPR能促進番茄根圍難溶性磷肥的轉(zhuǎn)化與吸收,用10 % FQG -5灌根處理的露地番茄根圍的速效磷為40.05 mg·kg-1,顯著高于其他肥料處理的速效磷含量。
國內(nèi)外已發(fā)現(xiàn)20多個種屬的根際微生物具有防病促生的潛能,其中芽孢桿菌屬(Bacillus)和假單胞菌桿菌屬(Pseudemonas)在很多植物的根圍都占了絕對優(yōu)勢,可達60 %~93 %的比例[11-12]。PGPR功能主要包括固氮作用、解磷作用、解鉀作用、降解重金屬、防治植物病害等[13]。Toshy Agrawal 等篩選到溶磷效果好的惡臭假單胞菌(Pseudomonasputida)菌株P(guān)132[14]。解磷菌能在土壤有效磷減少的情況下,將植物難以吸收利用的難溶性或不溶性磷轉(zhuǎn)化為可利用的形態(tài),提高土壤中磷素的利用效率,從而減少化學肥料的施用[15]。
圖1 基于16srRNA的 FQG-5和LZT-5與代表種系統(tǒng)發(fā)育樹圖譜
PGPR通過提高土壤有機質(zhì)、全磷、速效磷、全鉀、速效鉀含量,從而對鷹嘴豆和玉米幼苗和成株均有促生作用,顯著提高其鮮重、干重、葉面積等生長性狀,還能促進葉片的光合作用,提高產(chǎn)量[16-18]。本文結(jié)果與前人結(jié)果相似,PGPR在溶解難溶性磷為植物吸收狀態(tài)時,也會增加植物體內(nèi)磷的存貯量,成為植酸磷[16]。但不同環(huán)境條件下分離到的解磷菌種類不同,解磷效果和促生作用也不相同[19-21],PGPR施用土壤后效果如何與其在土壤中的定殖量[22]、生態(tài)條件[23-25]有關(guān),還與土壤根際微生物的數(shù)量和種類有關(guān)[26]。因此還有待于研究解磷菌最適生存環(huán)境和生長條件,為發(fā)揮解磷菌的作用,將其開發(fā)成微生物解磷菌肥提供數(shù)據(jù)支撐。