閆非凡, 李 楠, 呂 云, 陳 迪, 樸仁哲, 趙洪顏*
(1.延邊大學(xué)農(nóng)學(xué)院,吉林 延吉 133002;2. 琿春市農(nóng)業(yè)農(nóng)村局,吉林 琿春 133300)
地球表面大約75%處于低溫環(huán)境[1]。在低溫環(huán)境中微生物資源非常豐富,這些微生物資源發(fā)揮著重要的作用,其中厭氧消化過程是碳源降解重要的一環(huán)[2]。產(chǎn)甲烷菌在厭氧消化過程中只占微生物種群的10%左右,但卻是關(guān)鍵菌群,因為由其完成的產(chǎn)甲烷過程通常是厭氧消化過程中最重要的限速步驟。因此,挖掘低溫厭氧消化過程對菌種資源發(fā)揮著舉足輕重的作用。
國外對低溫產(chǎn)甲烷菌研究較早,自從1992年第1株從湖泊底泥中分離得到嗜冷產(chǎn)甲烷菌Methanococcoidesburtonii后已經(jīng)獲得了8個低溫產(chǎn)甲烷菌種,但是多集中在產(chǎn)甲烷八疊球菌,產(chǎn)甲烷鬃毛菌等[3];國內(nèi)對低溫產(chǎn)甲烷菌的研究剛剛起步,東秀珠等人從若爾蓋草原分離獲得了1株低溫甲基營養(yǎng)型產(chǎn)甲烷菌新種并命名為Methanolobuspsychrophilus[4],灑威等人在中低溫沼氣池中分離一株低溫產(chǎn)甲烷菌,但是未對菌株進行鑒定[5];魯建江等人在越冬的沼氣池中分離得到1株低溫產(chǎn)甲烷八疊球菌[6];李軍等人在實驗室長期運行的UASB反應(yīng)器中分離得到1株產(chǎn)甲烷粒菌屬[7]。而對低溫下的產(chǎn)甲烷微菌的分離研究較少,但前期研究證實低溫厭氧消化產(chǎn)甲烷階段產(chǎn)甲烷微菌對菌群的代謝流程起著至關(guān)重要的作用[8]。
因此,該研究在延邊地區(qū)濕地環(huán)境中低溫下采集樣品,采用亨蓋特厭氧技術(shù)、16S rDNA基因測序技術(shù)、掃描電鏡等技術(shù)對菌株進行分離與系統(tǒng)發(fā)育分析,期待為低溫厭氧消化過程中產(chǎn)甲烷微菌對沼氣發(fā)酵的代謝機制和調(diào)控技術(shù)研究提供菌株資源。
1.1.1 樣品來源
污泥樣品采自延邊地區(qū)的敦化雁鳴湖濕地(敦化5和40 cm的污泥(DH5、DH40)、琿春濕地5、25、40 cm(HC5、HC25、HC40)的污泥樣品,樣品放在-20 ℃冰箱儲存。
1.1.2 培養(yǎng)基和培養(yǎng)條件
富集培養(yǎng)基配制方法為:培養(yǎng)基具體成分和含量見表1,2。調(diào)節(jié)pH值為6.8~7.0。用無菌注射器接菌,接種量為10%(V/V)。接種后補加混合氣體,搖勻后用熔蠟消毒器熔蠟封口,置于15 ℃低溫培養(yǎng)箱富集培養(yǎng)[4]。
1.2.1 產(chǎn)甲烷微菌的富集培養(yǎng)及分離純化
樣品的富集培養(yǎng)和分離純化使用上海躍進YQX-1型厭氧培養(yǎng)箱。培養(yǎng)的氣體為N2∶H2∶CO2=85%∶10%∶5%和99.999%的高純N2,氣瓶減壓閥輸出壓力為0~0.25 MPa,粑粒除氧催化劑和干燥劑除氧。采集的污泥樣品,加入到產(chǎn)甲烷微菌的專用培養(yǎng)基中15 ℃低溫培養(yǎng)7 d,第1次富集接種量為10%,取菌液第2次富集,接種量為10%,按照同樣方法多次富集,通過甲烷含量指標監(jiān)測富集情況。采用Hungate滾管法進行分離純化[6]。
表1 產(chǎn)甲烷菌的富集、分離培養(yǎng)基
1.2.2 低溫產(chǎn)甲烷微菌菌株篩選
純化后的產(chǎn)甲烷微菌,將產(chǎn)甲烷微菌株接種到pH值為7.0,產(chǎn)甲烷液體培養(yǎng)基中,在5、10、15、20、30 ℃厭氧培養(yǎng)箱中培養(yǎng)10 d,利用氣相色譜測定甲烷含量,通過產(chǎn)氣情況篩選菌株。
1.2.3 菌株形態(tài)學(xué)觀察及生理生化試驗
1) 菌株生長曲線測定:用紫外可見分光光度計(UV-7502PC)在波長600 nm測定菌液的吸光度OD600。
2) 菌體形態(tài)學(xué)觀察:取對數(shù)生長期樣品,革蘭氏染色后采用Olympus體式顯微鏡觀察菌株的菌落形態(tài);采用對數(shù)生長期的樣品,干燥、固定后采用掃描電鏡HITACHI S-4800觀察并拍照。
3) 最適溫度、pH值、NaCl濃度生長試驗:在液體培養(yǎng)基中添加5%的菌株,厭氧培養(yǎng)箱中恒溫培養(yǎng)10 d,氣相色譜測定甲烷產(chǎn)量。
4) 生長底物測定:甲醇、甲酸、H2/CO2(80∶20)為單一碳源,加入到滅菌后的產(chǎn)甲烷微菌培養(yǎng)基中,pH值7.0,培養(yǎng)溫度15 ℃,培養(yǎng)10 d測定產(chǎn)甲烷含量[9]。
1.2.4 產(chǎn)甲烷菌16S rRNA基因的擴增、測序鑒定及系統(tǒng)發(fā)育分析
DNA的提取參照趙洪顏等的方法[10]。16S rRNA基因的擴增選用上海生工股份有限公司用HAP法合成的引物:引物Arch519F的序列為5’-CAGCCGCCGCGGTAA-3’,引物Arch915R的序列為5’-GTGCTCCCCCGCCAATTCCT-3’。PCR方法參照[11]。經(jīng)上海生工測序公司測定后,將16 S rRNA基因的測序結(jié)果與NCBI數(shù)據(jù)庫進行Blast比對分析,用Mega 6進行bootstrap分析,重復(fù)1 000次,Neighbor-Joining法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。
表2 產(chǎn)甲烷菌富集、分離培養(yǎng)基中的微量元素和維生素溶液
圖1為富集培養(yǎng)轉(zhuǎn)接第7代菌液1~10 d的OD600值。由圖可知,富集菌液的OD600都在6 d達到最大值,之后稍有降低,敦化40 cm的富集菌液在6 d的OD600最大,說明DH40的產(chǎn)甲烷菌在所有富集菌液樣品中生長能力最強。并且可以看出,通過對各樣品7代的富集轉(zhuǎn)接,菌種得到馴化,適應(yīng)該試驗所設(shè)的培養(yǎng)溫度和其他條件,可以進行下一步的分離試驗。此外,HC5、HC25、HC40、DH5、DH40的OD600值分別為0.67、0.636、0.605、0.655和0.651,菌液的OD600值均處在0.6~0.8之間,表明細菌處于旺盛生長的對數(shù)生長期。說明當產(chǎn)甲烷菌生長至10 d時,培養(yǎng)基中菌群的生長繁殖已達到穩(wěn)定狀態(tài),可以進行下一代富集培養(yǎng)。
圖1 產(chǎn)甲烷菌富集菌液的OD600值
顯微鏡下觀察和掃描電鏡照片見圖2,3。由圖可知,15 ℃下培養(yǎng)10 d長出的菌落為圓形,規(guī)則,邊緣完整,表面光滑,不透明,呈現(xiàn)乳白色,直徑約0.6 μm,長1.5~2 μm,革蘭氏染色為陰性,極端嚴格厭氧,桿狀。
圖2 菌落形態(tài)和革蘭氏染色照片 圖3 產(chǎn)甲烷微菌分離菌株掃描電鏡照片F(xiàn)ig.2 Colony morphology and gram staining Fig.3 Scanning electron micrograph of isolated methanogen strain
BDP-8菌株在pH值為4~9時均能生長,生長最適pH值為7;BDP-8菌株在5~30 ℃均能生長,最適溫度為15 ℃;BDP-8菌株在0~0.6 mol/L NaCl濃度下均能生長,而高于0.6 mol/L NaCl濃度時,產(chǎn)甲烷停止,說明最適NaCl濃度為0~0.4 mol/L(圖4)。底物實驗證實,BDP-8菌株接種碳源底物后,只能利用H2/CO2(80:20) 混合氣體,不能利用甲醇、甲酸(表3)。BDP-8菌株生理生化特征(表3),BDP-8菌株的最適生長溫度、pH值、NaCl濃度、生長底物等與目前已報道的產(chǎn)甲烷微菌株非常相似;系統(tǒng)發(fā)育的結(jié)果進一步證實了此結(jié)果。
圖4 不同pH值、溫度、NaCl濃度下甲烷含量
表3 BDP-8菌株與其它產(chǎn)甲烷微菌屬菌株主要生理生化特征比較
從富集菌液中分離出1株產(chǎn)甲烷菌命名為BDP-8,圖5為BDP-8菌株16S rRNA gene的同源性結(jié)構(gòu)系統(tǒng)發(fā)育樹,BDP-8菌株與Methanolacinia屬的3個菌株16S rDNA基因序列相似性為100%,通過NCBI上BLAST BDP-8菌株可為Methanolaciniapetroleariastrain,屬于Methanomicrobia;Methanomicrobiales;Methanomicrobiaceae;Methanolacinia。
注:BDP-8為分離菌株的編號;屬種前的序號為GenBank登錄號;分支節(jié)點上的數(shù)字代表在1 000次構(gòu)樹過程中的自展值;標尺代表序列差異度為1%
圖5 BDP-8菌株16S rDNA gene的系統(tǒng)發(fā)育分析
Fig.5 16S rDNA gene phylogenetic analysis of BDP-8 strain
利用厭氧消化技術(shù)不僅可以處理廢棄物資源而且還可以生產(chǎn)清潔能源,是一項一舉雙得的技術(shù),但是在寒冷地區(qū)受溫度的影響無法大規(guī)模的產(chǎn)業(yè)化,主要原因是低溫限制了產(chǎn)甲烷微生物的代謝,影響了產(chǎn)甲烷菌的活性,所以,如何挖掘低溫下的微生物資源,從本質(zhì)上提高產(chǎn)甲烷菌的活性至關(guān)重要。因此,該試驗從延邊地區(qū)低溫生境中篩選到優(yōu)良的微生物菌株,對于解析低溫下沼氣發(fā)酵的代謝途徑及提高沼氣發(fā)酵系統(tǒng)的產(chǎn)甲烷效能具有重要意義。在延邊地區(qū)敦化、琿春不同深度的湖底底泥中分離出1株BDP-8菌株,此菌株生長能力最強,低溫的耐受性最好;該菌株最適合的生長溫度為15 ℃、pH值為7.0、NaCl濃度為0~0.4 mol/L; 該菌株只能利用H2/CO2(80∶20) 混合氣體。16S rDNA gene的系統(tǒng)發(fā)育分析鑒定為產(chǎn)甲烷微菌。