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    谷子條紋葉突變體wsl2的鑒定及候選基因分析

    2020-04-16 03:41:58王秋蘭王智蘭杜曉芬連世超韓康妮李慧娟張林義郭二虎
    華北農(nóng)學(xué)報 2020年1期
    關(guān)鍵詞:葉綠體突變體條紋

    王秋蘭,王智蘭,韓 芳,杜曉芬,連世超,韓康妮,周 雪,李慧娟,張林義,王 軍,郭二虎

    (1.山西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 谷子研究所,雜糧種質(zhì)資源發(fā)掘與遺傳改良山西省重點實驗室,山西 長治 046011;2.延安市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究所,陜西 延安 716000)

    葉片是植物進行光合作用的主要器官,葉片顏色與光合作用及產(chǎn)量密切相關(guān)[1-4],谷子是C4植物的模式研究作物之一,它具有基因組小、二倍體植物、生育期短、抗旱性和耐瘠薄性極強等特點,因此,谷子葉色突變體已成為探究葉綠體發(fā)育機制和C4光能利用率的理想材料之一[5-7]。目前,在谷子中公開研究報道的葉色突變體非常少,Luo等[8]鑒定出14個具有異?!盎ōh(huán)型”結(jié)構(gòu)的葉色突變體,可用于今后“花環(huán)型”結(jié)構(gòu)發(fā)育和C4光合作用研究相關(guān)基因的定位和克隆。在已經(jīng)克隆的谷子葉色突變體中,SiYGL1編碼Mg-螯合酶的一個D亞基(CHLD)蛋白,該蛋白屬于編碼葉綠素合成途徑關(guān)鍵酶基因之一,該基因突變后葉片表現(xiàn)為黃綠色[9];在葉綠體發(fā)育方面,SiSTL1[10]和SiSTL2[11]分別編碼核糖核苷酸還原酶(Ribonucleotide reductase,RNR)大亞基蛋白和脫氧胞苷單磷酸脫氨酶(Deoxycytidine monophosphate deaminase,DCD)蛋白,其突變體表現(xiàn)出不同程度的條紋葉[10-11]。

    與擬南芥、水稻和玉米等相比,目前,關(guān)于谷子葉色突變體及葉綠體相關(guān)分子機制方面的進展不能滿足對其C4光合和葉綠體發(fā)育機制的研究,迫切需要利用更多的葉色突變體并發(fā)掘鑒定相關(guān)基因及其功能。

    條紋葉表型受多個基因調(diào)控,其分子生物學(xué)機理較為復(fù)雜。影響葉綠體生物合成相關(guān)基因突變后造成葉片白條紋表型,研究表明,水稻V3和St1基因分別編碼核糖核苷酸還原酶大亞基蛋白(RNRL1)和核糖核苷酸還原酶小亞基蛋白(RNRS1),這類基因在三葉期莖基部組織中高表達,即葉綠體發(fā)育第一階段,這2個基因突變后影響質(zhì)體DNA的合成,阻礙葉綠體分化[12];水稻V1[13]、V2[14-15]和VYL[16]基因分別編碼NUS1、pt/mtGK和OsClpP6,該類基因在葉綠體發(fā)育的第二階段高度積累,其突變影響葉綠體遺傳機制的建立,阻礙葉綠體的形成,造成水稻白條紋表型[13-16]。WSL[17]、WSL4[18]和WSL5[19]屬于三角狀五肽(Pentatricopeptide Repeat,PPR)家族蛋白,與葉綠體中RNA代謝有關(guān),其基因突變造成rpl2、rps12、atpA、atpF和ndhA等葉綠體轉(zhuǎn)錄本不能被正常編輯或剪切,導(dǎo)致葉片產(chǎn)生條紋[17-19];還有一類定位于葉綠體類核中的蛋白,這些蛋白的主要功能是參與質(zhì)體轉(zhuǎn)錄,調(diào)控丙酮酸羧化酶(PEP)和RNA聚合酶有關(guān)基因的表達,如WLP2[20]、WSL3[21]和YSS1[22],其突變后損壞PEP活性,造成白條紋表型[20-22];WLP1基因編碼一個50S核糖體大亞基蛋白L13[23],而WP1基因編碼一個纈氨酸-tRNA合成酶1[24],它們主要參與調(diào)控葉綠體核糖體的發(fā)育,其突變體葉片表現(xiàn)為條紋表型,抽穗后幼穗表現(xiàn)白化[23-24];而YSS2[25]和WSL12[26]編碼核苷二磷酸激酶(Nucleoside diphosphate kinase 2,NDPK2)蛋白,參與葉綠素的合成和光合作用,其基因突變后表現(xiàn)為條紋葉[25-26]。此外,編碼鉀離子通道蛋白的基因AM1突變后亦可造成葉片白條紋表型[27]。

    在前期工作中,山西省農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院谷子研究所谷子分子育種課題組從谷子主推品種長農(nóng)35號的甲基磺酸乙酯(EMS)誘變庫中篩選鑒定到一個條紋葉突變體wsl2[28],有關(guān)該突變體的遺傳機制尚不清楚。

    本研究以谷子品種長農(nóng)35號條紋葉突變體wsl2為主要研究材料,以wsl2×野生型雜交自交F2分離群體為定位群體,采用MutMap技術(shù)進行wsl2基因精細定位[29-30],同時,開發(fā)、鑒定共分離標(biāo)記,并進行wsl2候選基因預(yù)測,旨在揭示wsl2基因在谷子葉綠素含量和光合作用中的功能,為解析C4植物葉綠體的發(fā)育機制奠定一定理論基礎(chǔ)。

    1 材料和方法

    1.1 試驗材料

    以谷子材料長農(nóng)35號為原始材料,經(jīng)EMS誘變獲得條紋葉色突變體wsl2。試驗所用谷子材料均種植于山西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院谷子研究所試驗田。

    1.2 試驗方法

    1.2.1wsl2突變體表型、遺傳背景、農(nóng)藝性狀及遺傳分析 于谷子苗期、拔節(jié)期、抽穗期、灌漿期和成熟期分別對wsl2和野生型進行葉片顏色表型調(diào)查;同時,選取谷子分子育種實驗室現(xiàn)有的50個谷子分子標(biāo)記(表1)對wsl2和野生型以及另外4份谷子材料品資39號、09K65、高88和K5-496進行分子標(biāo)記檢測,驗證該突變體的遺傳背景。選取突變體wsl2與野生型各10株于成熟期進行調(diào)查,調(diào)查的農(nóng)藝性狀包括節(jié)數(shù)、株高、穗下節(jié)長、節(jié)間粗、穗長、穗粗、穗質(zhì)量及穗粒質(zhì)量等。突變體wsl2同野生型長農(nóng)35號雜交獲得F1,觀察F1葉色情況。F1自交構(gòu)建F2分離群體,苗期(3~6葉)調(diào)查F2分離群體葉色分離情況,統(tǒng)計野生表型和條紋葉表型的植株數(shù)目,并進行卡方測試,進行突變體wsl2的遺傳分析。

    1.2.2 通過MutMap方法克隆候選基因 本研究采用MutMap方法對候選基因進行克隆[29-30]。wsl2與野生型長農(nóng)35號雜交分離獲得F2群體,在苗期取30株條紋葉表型植株的葉片,提取DNA后等量混合并進行全基因組測序,同時,野生型長農(nóng)35號作為對照進行基因組重測序(百邁克生物科技有限公司)。測序完成后,wsl2的混池數(shù)據(jù)以及野生型的數(shù)據(jù)分別同參考基因組豫谷1號比對,得到SNPs數(shù)據(jù)集。然后,對染色體上的SNP 位點進行過濾,去掉長農(nóng)35號和混池DNA都有的SNPs,從而挑選出對于混池DNA特有的SNPs。最后計算每個SNPs的SNP-index,即SNP-index為該位點測到的突變序列的頻次除以該位點的總深度,而理論上由于候選SNP同表型完全連鎖,其SNP-index為1。挑選SNP-index接近1的區(qū)域為關(guān)聯(lián)區(qū)間,最后對關(guān)聯(lián)區(qū)間內(nèi)基因注釋后進一步得到候選基因。

    1.2.3 候選基因的進一步確定 根據(jù)候選SNPs所在區(qū)域的DNA序列,采用軟件Primer Premier 5.0設(shè)計引物(表1),分別以wsl2和野生型基因組DNA為模板,特異PCR產(chǎn)物回收后直接測序,根據(jù)峰圖判斷突變體中是否存在候選SNP。進一步根據(jù)突變位點設(shè)計dCAPS分子標(biāo)記或共分離標(biāo)記(表1),對wsl2和野生型進行檢測,從而確定突變位點是否真實存在。PCR擴增總體積10 μL:模板1 μL,10× Buffer 1 μL,2.5 mmol/L dNTPs 0.8 μL,4 μmol/L特異引物1 μL,rTaqDNA聚合酶0.1 μL和ddH2O 6.1 μL。PCR擴增程序為:95 ℃ 5 min;95 ℃ 30 s,55~60 ℃ 30 s,72 ℃ 45~90 s,35個循環(huán);72 ℃ 10 min,4 ℃保存。引物SIsv0296b1、SIsv0078b2、SIsv1045b1、SIsv0546b1、MRI501-3和MRI498-1(Cac8Ⅰ)用8%非變性PAGE膠電泳,經(jīng)快速銀染后照相統(tǒng)計。引物MRI413和MRI414的PCR產(chǎn)物在1%瓊脂糖凝膠上進行電泳檢測。

    表1 所用引物信息

    利用Phytozome(https:// phytozome.jgi.doe.gov/pz/portal.html#!info?alias= Org_Sitalica)和PlantGDB(http://www.plantgdb.org/SiGDB/)數(shù)據(jù)庫查找定位區(qū)間內(nèi)的基因,對區(qū)間內(nèi)基因進行功能注釋;同時結(jié)合SIFGD(http://structuralbiology.cau. edu.cn/SIFGD/)數(shù)據(jù)庫進行候選基因的轉(zhuǎn)錄模式分析[31]。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 wsl2突變體表型、遺傳背景及農(nóng)藝性狀分析

    通過EMS誘變品種長農(nóng)35號,篩選得到一個條紋葉突變體,命名為wsl2。在山西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院谷子研究所試驗田大田生長情況下,wsl2在苗期表現(xiàn)為條紋葉表型,但從拔節(jié)期開始恢復(fù)為正常葉片表型,而野生型長農(nóng)35號全生育期葉片表現(xiàn)均正常(圖1-A)。選用50對分子標(biāo)記對wsl2、野生型及另外4個谷子材料進行檢測,突變體與野生型對照的條帶在凝膠上的相對位置一致,DNA片段大小相同,說明突變體與野生型遺傳背景相同,不是其他品種混雜;而其余4個谷子品種的條帶與野生型在部分標(biāo)記間顯示出差異性(圖1-B-E)。在農(nóng)藝性狀方面,突變體wsl2與野生型相比,節(jié)數(shù)、株高、穗下節(jié)長、節(jié)間粗、穗長、穗粗、穗質(zhì)量及穗粒質(zhì)量等性狀上均無顯著差異(表2)。

    A.wsl2和野生型苗期第4葉表型;B-E.分別為部分標(biāo)記SIsv0296b1、SIsv0078b2、SIsv1045b1和SIsv0546b1檢測突變體遺傳背景的電泳圖片;1-6.分別為WT(長農(nóng)35號)、wsl2、品資39號、09K65、高88和K5-496。

    2.2 wsl2的遺傳學(xué)分析

    2.3 基于MutMap的候選基因克隆

    為了進一步研究wsl2條紋葉形成的分子機制,本研究利用MutMap方法對突變體wsl2的候選基因進行克隆[29-30]。從突變體與野生型長農(nóng)35號雜交的F2群體中挑選出30株條紋葉表型植株,混池測序,同時對野生型長農(nóng)35號進行測序作為對照,然后進行SNP分析。挑選SNP-index接近1的SNPs為候選SNPs。對染色體上的SNP位點進行過濾,突變體wsl2共檢測到12 585個混池特異SNP,得到突變體混池SNP-index的分布圖(圖2)。

    利用擬合后index的95百分位數(shù)即0.95,得到該染色體上包含基因的關(guān)聯(lián)區(qū)域共2個(表3),區(qū)間總長度為1.35 Mb,共包含184個基因,據(jù)統(tǒng)計,親本與混池間存在非同義突變的SNP共18個,分布于9個基因上,即非同義突變的基因共9個,這些SNP或基因很有可能與突變性狀直接相關(guān)(表4)。

    圖2 SNP-index值在染色體上的分布

    表3 MutMap關(guān)聯(lián)區(qū)域信息統(tǒng)計

    表4 突變體wsl2非同義突變位點分析

    通過Phytozome(https://phytozome.jgi.doe.gov/pz/portal.html#!info?alias= Org_Sitalica)和PlantGDB(http://www.plantgdb.org/SiGDB/)數(shù)據(jù)庫對非同義突變基因進行功能注釋,發(fā)現(xiàn)Seita.9G561800是一個編碼與葉綠體相關(guān)的PsbP蛋白基因(表4);同時,用SIFGD(http://structuralbiology.cau.edu.cn/SIFGD/)數(shù)據(jù)庫對這9個非同義突變基因的轉(zhuǎn)錄模式進行了分析[31],根據(jù)基于FPKM的轉(zhuǎn)錄水平,發(fā)現(xiàn)Seita.9G561800在葉部的表達明顯高于其他部位(圖3)。因此,該基因可能為wsl2的關(guān)鍵候選基因。

    數(shù)據(jù)來源于SIFGD(http://structuralbiology.cau.edu.cn/SIFGD/)數(shù)據(jù)庫[31]。

    2.4 突變位點的進一步驗證

    為了進一步驗證突變體wsl2的候選突變位點,在突變位點上下游設(shè)計引物(表1)。PCR 擴增及測序顯示,在野生型長農(nóng)35號中,該位置為G,而在wsl2中,該位置為T(圖4-A)。因此,在wsl2中確實發(fā)生了突變。為了進一步驗證wsl2突變體的候選位點,根據(jù)突變堿基設(shè)計了dCAPS 標(biāo)記MRI498-1(cac8Ⅰ)(突變位點造成限制性內(nèi)切酶Cac8Ⅰ的差異)和共分離標(biāo)記MRI501-3(表1)。利用分子標(biāo)記檢測野生型長農(nóng)35號和wsl2突變體,結(jié)果顯示,wsl2與野生型條帶存在差異,與預(yù)期結(jié)果相符合(圖4-B)。因此,wsl2中確實存在G-T突變,wsl2的條紋葉表型很可能是由基因Seita.9G561800的突變導(dǎo)致。

    2.5 基因位點的功能分析

    查詢谷子基因注釋網(wǎng)站(https: //phytozome.jgi.doe. gov/pz/portal.html#!info? alias= Org_ Sita lica),Seita.9G561800含有6個外顯子和5個內(nèi)含子。其中,wsl2突變發(fā)生在第1外顯子77 bp處,導(dǎo)致一個精氨酸(R)變成亮氨酸(L)。Seita.9G561800編碼葉綠體相關(guān)的類PsbP蛋白,已被報道參與植物光合作用等生物學(xué)過程。Seita.9G561800是擬南芥AT3G553330基因的同源基因,其編碼的類PsbP蛋白PPL1能夠在高強度光照下有效修復(fù)PSⅡ;是水稻LOC-Os10g32400基因的同源基因,其編碼PsbP蛋白,研究發(fā)現(xiàn),PsbP表達下調(diào)的植株葉片輕微發(fā)白,生長遲緩,光合作用受到抑制。因此,結(jié)合候選基因的分析和功能注釋,wsl2應(yīng)該是谷子的一個新條紋葉突變體,初步推測其是由一個編碼類PsbP蛋白的Seita.9G561800基因發(fā)生突變所致,但還需進一步進行基因功能驗證。

    A.突變體和野生型測序峰圖;B.緊密連鎖標(biāo)記MRI501-3電泳圖片。M.DNA Marker;1.野生型長農(nóng)35號;2.突變體wsl2;3-5.wsl2×野生型雜交自交F2分離群體中的部分突變表型單株;6-11.wsl2×野生型雜交自交F2分離群體中的部分正常表型單株。

    3 結(jié)論與討論

    3.1 MutMap在突變基因定位和克隆中的應(yīng)用

    MutMap方法是Abe等[29-30]2012年提出的一種基因克隆新方法,相較于圖位克隆方法,MutMap方法克隆基因更快捷、效率更高、成本更低,該方法是以二代測序技術(shù)為基礎(chǔ),通過對F2分離群體中隱性表型個體的DNA pool的深度測序,然后把突變體群體測序結(jié)果與野生型基因組序列相比對,找出造成突變體性狀的基因。MutMap方法在快速克隆質(zhì)量性狀的隱性核基因和數(shù)量性狀的QTL定位方面均有應(yīng)用[29-30,32-34]。本研究中,以wsl2和野生型雜交自交的F2分離群體為定位群體,采用MutMap技術(shù)進行wsl2突變基因精細定位,取30株條紋葉表型植株的葉片,同時野生型作為對照進行基因組重測序,篩選SNP-index接近于1的區(qū)域作為與目標(biāo)性狀關(guān)聯(lián)的染色體區(qū)域,在該區(qū)間中共包含9個非同義突變基因,進一步根據(jù)基因功能注釋及表達模式分析,快速推測候選基因。

    3.2 PsbP蛋白家族的功能分析

    PsbP蛋白是葉綠體光系統(tǒng)Ⅱ中放氧復(fù)合體的外周蛋白之一,是保證PSⅡ功能完整性不可缺少的組成部分,在光合作用中能夠利用光能氧化水產(chǎn)生氧氣[35-36]。光合系統(tǒng)相關(guān)基因的研究對葉綠體發(fā)育機制和提高植物光合效率具有重要的理論意義和研究價值[37]。

    高等植物中的PsbP蛋白來源于藍細菌的cyanoP蛋白[35]。在高等植物中發(fā)現(xiàn)了大量的PsbP同源基因,擬南芥中有2個PsbP基因分別編碼PsbP1和PsbP2,而煙草中據(jù)報道有4個PsbP同源基因,這些基因編碼蛋白的結(jié)構(gòu)功能相對比較保守[36,38]。除此之外,高等植物中還編碼了一些與cyanoP序列同源性較高的類PsbP蛋白(PsbP-like protein,PPL)[39-40]和一些具有PsbP結(jié)構(gòu)域的PPD(PsbP-domain protein,PPD)蛋白[41]。PsbP蛋白家族含有保守的C端結(jié)構(gòu)域。利用RNAi方法不同程度地沉默煙草的4個同源基因(PsbP-RNAi),使PsbP的表達受到抑制,結(jié)果發(fā)現(xiàn),PsbP的積累量影響了PSⅡ的活性。突變體在生長過程中與野生型相比葉色偏白,植株生長遲緩,葉綠體結(jié)構(gòu)紊亂[42-43]。擬南界中發(fā)現(xiàn)了2個類PsbP蛋白,PPL1(AT3G553330)能夠在高強度光照下有效修復(fù)PSⅡ[39],而PPL2(AT2G39470)是葉綠體NAD(P)H脫氫酶復(fù)合體穩(wěn)定積累所必需的[40]。

    本研究中,通過MutMap方法克隆到一個與葉綠體相關(guān)的類PsbP蛋白基因,Seita.9G561800是擬南芥PPL1(AT3G553330)基因的同源基因,其編碼的類PsbP蛋白PPL1能夠在高強度光照下有效修復(fù)PSⅡ;是水稻Os10g32400基因的同源基因,其編碼PsbP蛋白,研究發(fā)現(xiàn),PsbP表達下調(diào)的植株葉片輕微發(fā)白,生長遲緩,光合作用受到抑制。因此,結(jié)合候選基因的分析和功能注釋,該編碼類PsbP蛋白的Seita.9G561800基因發(fā)生的突變可能是導(dǎo)致wsl2葉色發(fā)生突變的原因,該基因尚需進一步進行功能驗證。

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