蔡德豐,陳運(yùn)生,朱純青,孟青,肖麗霞,田潔,馬東禮
(1. 深圳市兒童醫(yī)院檢驗(yàn)科,深圳 518038;2. 亞能生物技術(shù)(深圳)有限公司,深圳 518000)
急性腹瀉在全球均有較高的發(fā)病率和死亡率,主要發(fā)生在兒童和老年人群[1]。目前引起嬰幼兒及兒童腹瀉的最常見(jiàn)病毒包括輪狀病毒(rotaviruses,RV)、諾如病毒(norovirus,NoV)、腸道腺病毒(adenoviruses,Adv)、扎如病毒(sapovirus,SV)及星狀病毒(human astroviruses,HAstV)[2-3]。目前約40%的腹瀉并不能快速準(zhǔn)確診斷出病因[4-5]。病毒的分離培養(yǎng)及鑒定周期較長(zhǎng);免疫學(xué)方法在窗口期通常不能反映現(xiàn)癥感染;單病原體的PCR方法檢測(cè)通量較低。本研究首次以兒童常見(jiàn)腹瀉病毒RV、NoV、Adv、SV及HAstV作為診斷目標(biāo),建立多重PCR-毛細(xì)管電泳法檢測(cè)體系,以提高兒童腹瀉病毒診斷的效率。
1.1臨床樣本與標(biāo)準(zhǔn)毒株 收集2017—2018年深圳市兒童醫(yī)院185例兒童感染性腹瀉(診斷標(biāo)準(zhǔn):感染性腹瀉診斷標(biāo)準(zhǔn),WS 271-2007)樣本;Adv、NoV G1、NoV G2、RV A、SV及HAstV的標(biāo)準(zhǔn)毒株(參考品)購(gòu)于廈門(mén)至善生物公司。特異性評(píng)價(jià)的細(xì)菌株及毒株腸致病型大腸埃希菌、痢疾志賀菌、副溶血弧菌、腸炎沙門(mén)菌及腸道病毒71型來(lái)自深圳市兒童醫(yī)院檢驗(yàn)科微生物實(shí)驗(yàn)室。
1.2主要試劑和儀器 Hotstart HiTaq一步法RT-PCR Mix(廣東菲鵬生物公司),引物由英濰捷基貿(mào)易有限公司(上海)合成,瓊脂糖(西班牙索萊寶生物公司),磁珠法病毒總核酸提取試劑盒(廣州美基生物公司),TGuide S32半自動(dòng)樣本提取儀(北京天根生物公司);QSEP 100毛細(xì)管電泳儀、S1 High resolution凝膠卡匣(中國(guó)臺(tái)灣光鼎公司)。測(cè)序送上海生工生物公司。
1.3核酸提取 將10 μL參考品稀釋至200 μL;配制108/mL各細(xì)菌水溶液,95 ℃ 10 min,12 000 r/min 10 min。取200 μL稀釋后參考品、腹瀉樣本及細(xì)菌提取液于TGuide S32半自動(dòng)樣本提取儀上提取核酸,參照磁珠法病毒總核酸提取試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。
1.4引物設(shè)計(jì)、PCR擴(kuò)增體系及條件建立 從NCBI等數(shù)據(jù)庫(kù)檢索病毒基因組或某個(gè)保守基因的全長(zhǎng)序列,篩選出相應(yīng)病毒的檢測(cè)靶點(diǎn):Adv(Hexon)、NoV G1(ORF1-ORF2junction1)、NoV G2(ORF1-ORF2junction2)、RV A(NSP3)、HAstV(ORF1-ORF2之間保守序列)、SV(RdRp-VP1junction);將參考序列保守性最高的500~600 bp候選區(qū)域輸入JCVIPrimer Designer生成候選的簡(jiǎn)并引物,引物序列見(jiàn)表1。擴(kuò)增體系為25 μL:5×OneStep Reverse Buffer(Mg2+)5 μL,10×Solution I 2.5 μL,dNTP 0.05 μL,dN(U)TP 0.35 μL,Primer Pool 2.5 μL,Enzyme Mix 2 μL,模板 5 μL,ddH2O 7.6 μL。PCR擴(kuò)增條件方案:(1)55 ℃ 15 min,95 ℃ 10 min;95 ℃ 30 s,65 ℃ 30 s(每個(gè)循環(huán)退火溫度下降0.7 ℃),72 ℃ 30 s,20個(gè)循環(huán);95 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,25個(gè)循環(huán);72 ℃ 5 min。(2)55 ℃ 15 min,95 ℃ 10 min;95 ℃ 30 s,63 ℃ 30 s(每個(gè)循環(huán)退火溫度下降0.5 ℃),72 ℃ 30 s,20個(gè)循環(huán);95 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,25個(gè)循環(huán);72 ℃ 5 min。(3)常規(guī)PCR擴(kuò)增條件:50 ℃ 15 min,95 ℃10 min;94 ℃ 15 s,55 ℃ 60 s,45個(gè)循環(huán);72 ℃ 30 s。并對(duì)多重降落PCR、常規(guī)PCR擴(kuò)增進(jìn)行比較。取擴(kuò)增產(chǎn)物5 μL,經(jīng)20 g/L瓊脂糖凝膠電泳,電壓160 V,時(shí)間35 min,用Biorad PowerPac進(jìn)行驗(yàn)證。
表1 本文所使用引物
注:簡(jiǎn)并堿基Y代表C/T,R代表A/G,K代表G/T,W代表A/T,M代表A/C。
1.5毛細(xì)管電泳檢測(cè) 取20 μL擴(kuò)增后核酸樣本,使用QSEP 100毛細(xì)管電泳儀和S1 High resolution凝膠卡匣對(duì)PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行檢測(cè),檢測(cè)程序?yàn)镠igh Voltage Purge 4 V 60 s;Marker Injection 4 V 10 s;Sample Injection 4 V 2 s;Separation Detection 4 V 210 s,計(jì)282 s。使用marker為lower marker:20 bp,upper marker:1 000 bp,YN sep Analyzer 軟件判讀的擴(kuò)增片段。
1.6體系靈敏度、特異性、重復(fù)性及穩(wěn)定性驗(yàn)證 將標(biāo)準(zhǔn)毒株(3×1011copies/μL)進(jìn)行10倍梯度稀釋,濃度范圍3×102~3×310copies/μL,每個(gè)濃度進(jìn)行20次重復(fù)試驗(yàn),將能夠檢出的最低稀釋濃度定義為靈敏度。以Adv、NoV G1、NoV G2、RV A、SV及HAstV為目的擴(kuò)增毒株,以其他引起腹瀉的病原菌(腸致病型大腸埃希菌、痢疾志賀菌、副溶血弧菌、腸炎沙門(mén)菌及腸道病毒71型)為非目的病原體制備模板,在優(yōu)化的多重PCR-毛細(xì)管電泳體系下進(jìn)行分析。通過(guò)本體系對(duì)檢出限進(jìn)行20次重復(fù)檢測(cè),計(jì)算峰面積,根據(jù)峰面積差異計(jì)算變異系數(shù)(CV),評(píng)價(jià)該方法的重復(fù)性[6]。將PCR擴(kuò)增試劑25 ℃加速破壞5 d,反復(fù)凍融20次,對(duì)濃度為檢出限的稀釋毒株進(jìn)行檢測(cè),每個(gè)病毒重復(fù)檢測(cè)5次,評(píng)價(jià)其穩(wěn)定性。
1.7臨床樣本檢測(cè) 采用建立方法檢測(cè)185例臨床樣本。
1.8測(cè)序驗(yàn)證 隨機(jī)選擇5例建立方法檢測(cè)陽(yáng)性的RV感染樣本,經(jīng)提取核酸后,對(duì)編碼RV結(jié)構(gòu)蛋白的VP4及VP7基因設(shè)計(jì)引物,進(jìn)行PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增條件:50 ℃ 15 min,95 ℃ 10 min;94 ℃ 15 s,53 ℃ 60 s,40個(gè)循環(huán),72 ℃ 30 s。然后對(duì)擴(kuò)增后VP4及VP7基因片段進(jìn)行雙端測(cè)序分析,擴(kuò)增和測(cè)序采用同一對(duì)引物,見(jiàn)表1。
2.1標(biāo)準(zhǔn)毒株P(guān)CR產(chǎn)物分析 通過(guò)對(duì)不同3種擴(kuò)增條件的比較,最終選擇方案(1)(見(jiàn)1.4)的降落條件,可見(jiàn)5種病毒擴(kuò)增產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果與設(shè)計(jì)片段長(zhǎng)度一致,引物設(shè)計(jì)合理。見(jiàn)圖1。
注:1,Adv;2,HAstV;3,NoV G1;4,NoV G2;5,RV;6,SV;7,5種病毒混合條帶;M,marker。
圖1PCR擴(kuò)增片段瓊脂糖凝膠電泳分析
2.2毛細(xì)管電泳技術(shù)建立 5種病毒陽(yáng)性參考品擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)毛細(xì)管電泳后均檢測(cè)到相應(yīng)片段,無(wú)明顯的干擾雜峰出現(xiàn),其他腹瀉病原體核酸對(duì)反應(yīng)體系無(wú)影響,見(jiàn)圖2。各病毒的檢出限及CV分別為:Adv 2.04×103copies/μL,CV=6.96%;HAstV 3.99×103copies/μL,CV=7.24%;SV 8.56×102copies/μL,CV=9.03%;NoV G1 6.94×102copies/μL,CV=7.63%;NoV G2 7.38×103copies/μL,CV=8.12%;RV 2.20×102copies/μL,CV=8.89%。各病毒檢出限的CV均小于10%。擴(kuò)增試劑在25 ℃ 5 d及反復(fù)凍融20次后,位于檢出限濃度的毒株均能夠檢出。
注:A,RV(91 bp);B,SV(112 bp);C,Adv(126 bp);D,HAstV(241 bp);E,NoV G2(352 bp);F,NoV G1(399 bp);LM,low marker;UM,up marker。
圖25種腹瀉病毒陽(yáng)性參考品毛細(xì)管電泳檢測(cè)結(jié)果
2.3臨床樣本檢測(cè)結(jié)果 185例臨床腹瀉樣本中132例檢出陽(yáng)性,陽(yáng)性率為71.35%。感染方式分析:?jiǎn)尾《靖腥?01例(54.6%)、雙病毒感染31例(16.8%)和無(wú)信號(hào)陰性樣本53例(28.6%)。其中,Adv 22例(11.9%)、HAstV 10例(5.4%)、NoV G1 0例(0%)、NoV G2 11例(5.9%)、RV A 105例(56.8%)和SV 15例(8.1%)。結(jié)果見(jiàn)圖3。
注:A—E,分別為 Adv和RV(91 bp,125 bp)混合感染、RV和NoV G2(91 bp,356 bp)混合感染、SV(113 bp)感染、RV A(92 bp)感染、Adv(120 bp)感染、HAstV(240 bp)感染;LM,low marker;UM,up marker。
圖3部分臨床樣本核酸毛細(xì)管電泳檢測(cè)結(jié)果
2.4測(cè)序結(jié)果分析 將編碼RV結(jié)構(gòu)蛋白的VP4及VP7基因的測(cè)序結(jié)果與GeneBank比對(duì)分析,結(jié)果序列一致。VP4及VP7部分測(cè)序序列見(jiàn)圖4。
圖4 RV病毒VP4(A)及VP7(B)部分基因片段測(cè)序結(jié)果
本研究選取病毒保守序列進(jìn)行PCR分析,在設(shè)計(jì)引物同時(shí)注意病毒間產(chǎn)物長(zhǎng)度的差異化,以便于毛細(xì)管電泳的直觀判斷分析。首先對(duì)PCR反應(yīng)體系進(jìn)行優(yōu)化,摸索出基于降落PCR技術(shù)的最終擴(kuò)增反應(yīng)條件,以保證擴(kuò)增效率及擴(kuò)增穩(wěn)定性。通過(guò)瓊脂糖凝膠電泳驗(yàn)證,無(wú)非特異性擴(kuò)增條帶;陽(yáng)性參考品經(jīng)毛細(xì)管電泳檢測(cè)條帶長(zhǎng)度與設(shè)計(jì)長(zhǎng)度基本一致,未出現(xiàn)明顯非特異性檢測(cè)峰;雖YN sep Analyzer軟件判讀后,與實(shí)際片段存在一定差異,這與實(shí)驗(yàn)條件中存在誤差有一定關(guān)系,并不影響結(jié)果判斷。本研究建立的方法與大腸埃希菌﹑痢疾志賀菌﹑副溶血弧菌﹑腸炎沙門(mén)菌及腸道病毒71型腹瀉病原體無(wú)交叉反應(yīng),特異性強(qiáng);Adv、NoV G1、RV A、SV及HAstV檢出限均小于5×103copies/μL,NoV G1小于1×104copies/μL,具有較好的敏感性;在重復(fù)性方面,CV均小于10%;擴(kuò)增試劑在25 ℃ 5 d及反復(fù)凍融20次,位于檢出限濃度的毒株均能夠檢出,穩(wěn)定性較好;通過(guò)對(duì)輪狀病毒結(jié)構(gòu)基因VP4及VP7進(jìn)行測(cè)序分析,與GeneBank的標(biāo)準(zhǔn)序列一致,具有較高的準(zhǔn)確性,能夠滿足臨床實(shí)驗(yàn)室診斷的需求。本檢測(cè)方法檢測(cè)通量高,適合批量檢測(cè);且分析系統(tǒng)能夠?qū)γ?xì)管電泳的電泳圖譜及檢測(cè)峰自動(dòng)分析,結(jié)合marker分析片段的長(zhǎng)度,根據(jù)片段長(zhǎng)度判斷腹瀉病毒的種類;該檢測(cè)體系從樣本處理到分析出結(jié)果近3 h,相比其他檢測(cè)手段具有高通量、低成本、臨床操作性強(qiáng)及檢測(cè)效率高的特點(diǎn),但實(shí)驗(yàn)室需配備凝膠電泳儀及培訓(xùn)后的專業(yè)檢測(cè)人員。
185例臨床腹瀉樣本經(jīng)本體系檢出132例病毒感染,陽(yáng)性率達(dá)71.35%,5種腹瀉病毒均檢出;單病毒感染及復(fù)合病毒感染分別為101例及31例,以單病毒感染為主;腹瀉病毒檢出情況包括RV A感染105例、Adv 22例、SV 15例、NoV G2 11例和HAstV 10例,主要集中在輪狀病毒和腺病毒,與Thongprachum等研究結(jié)果基本一致[2]。