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    產(chǎn)ε-聚賴氨酸菌株的篩選、鑒定及發(fā)酵

    2019-11-28 10:54:11王昭君趙志軍孫俊松史吉平王紹明
    江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2019年18期
    關(guān)鍵詞:聚賴氨酸性能分析發(fā)酵

    王昭君 趙志軍 孫俊松 史吉平 王紹明

    摘要:分別在培養(yǎng)基中添加2 g/L ε-聚賴氨酸(ε-PL)和復(fù)合抗生素抑菌劑,結(jié)合ε-聚賴氨酸與亞甲基藍(lán)形成透明圈的現(xiàn)象初篩產(chǎn)ε-PL的菌株,根據(jù)ε-聚賴氨酸與道夫根試劑的特殊沉淀反應(yīng)現(xiàn)象復(fù)篩獲得5株菌株,經(jīng)生理生化試驗和16S rDNA分析鑒定,5株菌株中包括1株解淀粉芽孢桿菌(Bacillus amyloliquefaciens),1株蠟樣芽孢桿菌(Bacillus cereus),1株鏈霉菌屬(Streptomyces sp.,未鑒定到種)菌株,1株糖多孢屬(Saccharopolyspora sp)菌株,1株白色鏈霉菌(Streptomyces albulus),其搖瓶發(fā)酵ε-聚賴氨酸產(chǎn)量分別為0.06、0.08、0.70、0.82、1.56 g/L;采用2階段法對wzj4、wzj5進(jìn)行5 L發(fā)酵罐發(fā)酵,結(jié)果發(fā)現(xiàn),其ε-聚賴氨酸最大產(chǎn)量分別為2.54、6.99 g/L。凝膠色譜分析表明wzj5發(fā)酵液中ε-聚賴氨酸分子量大小與對照品相近,最小抑菌濃度為250 μg/mL,對大腸桿菌的抑菌效果良好。

    關(guān)鍵詞:ε-聚賴氨酸;ε-PL生產(chǎn)菌株;不同類型;篩選;鑒定;發(fā)酵;性能分析

    中圖分類號: S182文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A

    文章編號:1002-1302(2019)18-0291-06

    收稿日期:2018-05-25

    基金項目:國家自然科學(xué)基金青年科學(xué)基金(編號:31300048)。

    作者簡介:王昭君(1991—),女,新疆奎屯人,碩士研究生,研究方向為綠洲農(nóng)業(yè)生態(tài)。E-mail:wzjshz@163.com。

    通信作者:趙志軍,博士,副研究員,研究方向為代謝工程,E-mail:zhaozj@sari.ac.cn;王紹明,教授,研究方向為生態(tài)學(xué),E-mail:westwild@vip.sina.com。

    ε-聚賴氨酸(ε-poly-L-lysine,簡稱ε-PL)是由25~35個L-賴氨酸單體通過α-COOH和ε-NH2脫水縮合而成的氨基酸同型聚合物,相對分子質(zhì)量通常為3 500~4 500 Du[1]。ε-PL具有廣泛的抑菌譜,并且穩(wěn)定性強(qiáng),安全高效,目前我國已經(jīng)批準(zhǔn)其作為食品防腐劑[2],在國外更是已被廣泛應(yīng)用。

    近年來,我國研究人員對ε-PL產(chǎn)生菌的篩選[3]、發(fā)酵[4]、產(chǎn)物鑒定[5]、提取[6]、應(yīng)用[7]等進(jìn)行了大量研究。傳統(tǒng)的篩選工作通過鑒定搖瓶發(fā)酵液中的產(chǎn)物來確定所篩菌株是否能夠產(chǎn)生ε-聚賴氨酸,篩選過程費時費力,且效率極低。Nishikawa等采用一種含酸性染料polyR-478的培養(yǎng)基篩選ε-PL產(chǎn)生菌,獲得了大量ε-PL產(chǎn)生菌,包括鏈霉菌屬(Streptomyces)、北里胞菌屬(Kitasatosporia)、香柱菌屬(Epichloe)等[8];該方法大大提高了篩選效率,且可獲得不同菌種的ε-PL產(chǎn)生菌,但因為所用染料試劑的停產(chǎn),該方法未得到普及[9]。目前,我國研究人員多用亞甲基藍(lán)平板篩選法分離篩選ε-PL產(chǎn)生菌,如黃莉等利用含K2Cr7O7和亞甲基藍(lán)的平板篩選出一株Streptomyces griseolus,其ε-PL產(chǎn)量為0.808 g/L[10]。張波用同樣的方法從四川省成都市郊區(qū)土壤中篩選獲得一株ε-PL產(chǎn)量為1.893 g/L的不吸水鏈霉菌Streptomyces ahygroscopicus SAC23[11]。

    江南大學(xué)[12]、天津科技大學(xué)[13]、南京工業(yè)大學(xué)[14]等單位在ε-PL菌種篩選與發(fā)酵優(yōu)化方面做了大量的研究工作。張超等篩到一株Streptomyces sp. M-Z18,該菌的搖瓶ε-PL產(chǎn)量為0.2 g/L,其所在課題組以Streptomyces sp. M-Z18為出發(fā)菌株采用物理化學(xué)誘變、原生質(zhì)體融合、基因組重排(genome shuffling)技術(shù)等一系列方法進(jìn)行ε-PL高產(chǎn)菌株選育,2007年以該菌株為出發(fā)菌株進(jìn)行紫外誘變得到一株高產(chǎn)ε-PL的菌株C-18,其搖瓶ε-PL產(chǎn)量為1.23 g/L[15]。任喜東等提出了一種酸性pH值沖擊策略,先將pH值調(diào)至5.0,對pH值沖擊階段進(jìn)行預(yù)適應(yīng),再調(diào)節(jié)pH值至3.0,以調(diào)控菌體代謝活力,最后調(diào)節(jié)pH值至4.0為ε-PL的積累提供最適條件,在此條件下,5 L發(fā)酵罐的發(fā)酵產(chǎn)量達(dá)54.70 g/L,不僅達(dá)到了商業(yè)生產(chǎn)要求,甚至高于日本工業(yè)生產(chǎn)用菌Streptomyces albulus stain 410的報道產(chǎn)量(48.3 g/L)[16-17]。

    本研究在篩選培養(yǎng)基中添加ε-PL和復(fù)合抗生素抑菌劑,結(jié)合ε-PL與亞甲基藍(lán)的靜電作用形成透明圈的特性,篩選不同類型的ε-PL生產(chǎn)菌株,并在搖瓶及5 L發(fā)酵罐中進(jìn)行發(fā)酵,對不同類型ε-PL生產(chǎn)菌株產(chǎn)ε-PL的性能進(jìn)行考察。

    1?材料與方法

    1.1?材料

    1.1.1?樣品

    2016年9月從上海市郊區(qū)采集土樣,除去表層土,取距表層5~10 cm土壤100 g,裝入已滅菌的牛皮紙袋中,于室溫下自然風(fēng)干3~10 d,碾碎過篩后,在50 ℃下烘1 h,取1 g土樣加入10 mL滅過菌的0.005 mol/L磷酸緩沖液[pH值為7.0,其中含6.00%蛋白胨和0.05%十二烷基硫酸鈉(SDS)]中,50 ℃下振蕩10 min[18]。

    1.1.2?試劑

    ε-PL對照品購自鄭州拜納佛生物工程股份有限公司;酶及引物購自生工生物工程(上海)股份有限公司;DNA提取試劑盒購買自碧云天生物技術(shù)有限公司;其他試劑均為分析純,購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

    1.1.3?儀器

    PCR儀(BIO-RAD),高壓蒸汽滅菌鍋(SANYO),電泳儀(BIO-RAD),SBA-40D生物傳感分析儀(山東省科學(xué)院生物研究所),5 L發(fā)酵罐(Sartorius Stedim Biotech GmbH),高效液相色譜儀(島津公司)等。

    1.1.4?培養(yǎng)基及溶液

    分離培養(yǎng)基(SG培養(yǎng)基):甘油1%,酵母膏0.01%,KH2PO4 0.025%,NaH2PO4·2H2O 0.088%,MgSO4·7H2O 0.025%,(NH4)2SO4 0.066%,ZnSO4·7H2O 0.005%,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.001%,瓊脂1.5%,pH值7.5。115 ℃,滅菌15 min。

    鏈霉菌篩選(ISP2)培養(yǎng)基:酵母浸膏0.4%,麥芽浸膏1%,葡萄糖0.4%,瓊脂1.5%,微量鹽溶液1 mL,pH值7.2。115 ℃,滅菌15 min。

    種子培養(yǎng)基及發(fā)酵培養(yǎng)基(M3G):葡萄糖5.000 0%,酵母粉0.500 0%,(NH4)2SO4 1.000 0%,K2HPO4·3H2O0.104 8%,KH2PO4 0.136 0%,10倍濃縮鹽溶液(MgSO4·7H2O 0.0500%,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.0030%,ZnSO4·7H2O0.004%)100 mL,pH值6.8。葡萄糖單獨滅菌。

    LB培養(yǎng)基:胰蛋白胨10 g、酵母提取物5 g、NaCl 10 g、瓊脂2 g,用蒸餾水定容至1 000 mL。121 ℃,滅菌20 min。

    微量鹽溶液:FeSO4·7H2O 0.1 g,MnCl2·4H2O 0.1 g,ZnSO4·7H2O 0.1 g,加水定容至1 L。

    復(fù)合抗生素抑菌劑:將10 mg放線菌酮、10 mg制霉菌素、20 mg萘啶酮酸鈉分別平鋪在三角瓶中,覆蓋乙醚,使乙醚沒過抗生素粉末,用培養(yǎng)基封口膜封口放入通風(fēng)櫥中待乙醚揮發(fā)干后,轉(zhuǎn)至超凈臺上,加入定量無菌水,于45 ℃下水浴溶解后過0.2 μm濾膜。制霉菌素在pH值為7.2時溶解不完全,需用1 mol/L氫氧化鈉溶液調(diào)pH值至11.0,完全溶解后用鹽酸中和滴定,使pH值回復(fù)至7.2。

    0.1 mol/L磷酸緩沖液:稱取35.820 g Na2HPO4·12H2O,15.605 g NaH2PO4·2H2O,分別定容至1 L,相互滴定至pH值為6.6。

    道夫根試劑(DR試劑):參照文獻(xiàn)[19]配制。

    1.2?方法

    1.2.1?產(chǎn)ε-PL菌株初篩

    1.2.1.1?ε-PL耐受菌株的篩選

    首先對土樣進(jìn)行預(yù)處理,具體為大致去除土樣中的雜物,風(fēng)干后碾碎過篩,烘干。取1 g 預(yù)處理過的土樣加入10 mL無菌水中,30 ℃、100 r/min振蕩15 min后靜置30 min,吸取上清液稀釋適當(dāng)倍數(shù)后涂布于含2 g/L ε-PL的LB分離培養(yǎng)基平板上。

    1.2.1.2?復(fù)合抗生素抑菌劑平板篩選

    據(jù)文獻(xiàn)[20]報道,產(chǎn)ε-PL的菌種大多屬于北里胞菌屬、鏈霉菌屬等,其中鏈霉菌屬的菌種產(chǎn)量普遍較高。萘啶酮酸對細(xì)菌的抑制效果較好,制霉菌素能夠抑制真菌,放線菌酮能夠抑制霉菌和酵母等,因此添加抑制細(xì)菌、霉菌、酵母和真菌的抗生素于ISP2培養(yǎng)基平板上進(jìn)行放線菌株的篩選。在已滅菌的ISP2平板中加入復(fù)合抗生素抑菌劑,倒板涂布,篩選產(chǎn)ε-PL的放線菌株。

    1.2.1.3?透明圈篩選

    挑取ε-PL耐受平板和復(fù)合抗生素篩選平板上的菌落,接種至含0.003%亞甲基藍(lán)的SG培養(yǎng)基平板上30 ℃培養(yǎng)7 d[8]。亞甲基藍(lán)是一種堿性染料,菌落分泌的帶正電荷的物質(zhì)(ε-PL)會由于靜電作用排斥亞甲基藍(lán),進(jìn)而形成透明圈,且?guī)д姾晌镔|(zhì)的濃度越高,透明圈越大[21]。挑取有明顯透明圈的單菌落進(jìn)行保存,用于復(fù)篩。

    1.2.2?復(fù)篩

    將初篩得到的細(xì)菌接種至盛有30 mL LB液體培養(yǎng)基的250 mL搖瓶中,在30 ℃、200 r/min下發(fā)酵84 h;轉(zhuǎn)接到盛有30 mL M3G培養(yǎng)基的250 mL搖瓶中,在30 ℃下發(fā)酵96 h,收集發(fā)酵液在7 000 r/min條件下離心10 min,用DR試劑檢測發(fā)酵產(chǎn)物是否存在ε-PL。該反應(yīng)很靈敏,可以有效檢測出發(fā)酵液中的ε-PL[22]。

    1.2.3?生理生化鑒定

    參照《伯杰氏細(xì)菌鑒定手冊》(第9版)、《放線菌分類基礎(chǔ)》及《鏈霉菌鑒定手冊》對復(fù)篩得到的菌株進(jìn)行初步鑒定。

    1.2.4?16S rDNA鑒定

    取搖瓶培養(yǎng)7 d后的菌液,采用基因組提取試劑盒提取基因組DNA,并采用通用引物27F:5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′,1 492R:5′-GGTTACCTTGTTACGACTT-3′進(jìn)行PCR擴(kuò)增,引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。將得到的16S rDNA序列與Gen Bank數(shù)據(jù)庫中相關(guān)種屬的序列進(jìn)行比較,構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。

    1.2.5?高效液相色譜產(chǎn)量測定

    高效液相色譜(HPLC)采用國標(biāo)法(GB/T 5009.124)進(jìn)行:C18柱,流動相為8%乙腈,流速為0.4 mL/min,檢測波長為215 nm,進(jìn)樣體積 為20 μL,溫度為40 ℃。

    1.2.6?菌株生物量測定

    采用干質(zhì)量法測定菌株生物量(DCW)。每隔12 h取5 mL發(fā)酵液樣品,在7 000 r/min轉(zhuǎn)速下離心10 min,沉淀(即菌絲體)經(jīng)蒸餾水洗滌3次后放入干燥清潔且已知質(zhì)量的培養(yǎng)皿中,于60 ℃下烘干至恒質(zhì)量,稱質(zhì)量得菌體干質(zhì)量。重復(fù)測定3次,取平均值。

    1.2.7?發(fā)酵產(chǎn)物的分子量分析

    使用凝膠滲透色譜確定發(fā)酵液中ε-PL分子量大小。參考色譜條件:凝膠柱為TSK-gelG2000SWXL;檢測溫度為35 ℃,檢測波長為210 nm,流速為1 mL/min,進(jìn)樣量為20 μL;流動相,乙腈 ∶水=20 ∶80(體積比),含三氟乙酸1 mL/L[15,23-24]。

    1.2.8?最小抑制濃度的確定

    以鄭州拜納佛生物工程股份有限公司生產(chǎn)的ε-PL為對照,從wzj5發(fā)酵液提取得到的ε-PL固體粉末作為試驗樣品,按0~250 μg/mL不同的9個濃度梯度添加到培養(yǎng)基中,將稀釋了適當(dāng)倍數(shù)的大腸桿菌BW25113菌液涂在平板上,驗證ε-PL的抑菌效果。

    2?結(jié)果與分析

    2.1?產(chǎn)ε-PL菌株的初篩

    2.1.1?ε-PL耐受菌株和產(chǎn)ε-PL菌株篩選

    以往的研究經(jīng)驗表明,目標(biāo)物的生產(chǎn)菌株通常對目標(biāo)物具有一定的耐受性,依據(jù)這一特性,本研究嘗試通過篩選ε-PL的耐受菌株來獲得產(chǎn)ε-PL的菌株。將從ε-PL耐受平板上篩選出的菌落接種至含0.003%亞甲基藍(lán)的SG平板上,篩選出wzj1、wzj2菌株。圖1為通過該原理篩選出的2株在含亞甲基藍(lán)的SG培養(yǎng)基上形成透明圈的菌株wzj1、wzj2,根據(jù)菌落長出的時間與其濕潤、黏稠、易挑起的形態(tài)特征初步判斷可能是細(xì)菌。

    2.1.2?復(fù)合抗生素抑菌劑平板篩選

    將從復(fù)合抗生素抑菌劑平板上篩選出的菌落接種至含0.003%亞甲基藍(lán)的SG平板上,篩選出wzj3、wzj4、wzj5等3株透明圈較大的菌株(圖2),其中wzj5菌株形成的透明圈明顯大于其他2株菌株。從形態(tài)特征上看,這3株菌株不同于wzj1、wzj2菌株,其菌落干燥,質(zhì)地緊密而不蔓延,不易挑起,初步判斷可能是真菌或者放線菌。

    2.2?產(chǎn)ε-PL菌株的復(fù)篩

    據(jù)文獻(xiàn)報道,ε-PL在酸性(pH值為2~5)條件下能夠與DR試劑發(fā)生特異性反應(yīng)生成橘紅色沉淀(BiI3)(ε-PL·HI)[25]。本試驗結(jié)果(圖3)表明,wzj1、wzj2、wzj3、wzj4、wzj5菌株的發(fā)酵液均能夠與DR試劑發(fā)生反應(yīng)生成橘紅色沉淀。其中,wzj1、wzj2菌株的發(fā)酵液與DR試劑反應(yīng)產(chǎn)生的沉淀偏少,而wzj3、wzj4、wzj5菌株的發(fā)酵液與DR試劑反應(yīng)產(chǎn)生的沉淀較多。

    2.3?ε-PL產(chǎn)生菌的鑒定

    2.3.1?生理生化鑒定

    傳統(tǒng)微生物分類鑒定的主要依據(jù)是微生物的形態(tài)學(xué)特征、生理生化反應(yīng)特征等,可初步判定其種屬。5株菌株在LB固體培養(yǎng)基上的菌落形態(tài)見圖4-a,它們在顯微鏡下的個體形態(tài)如圖4-b所示,形態(tài)特征描述與生理生化試驗結(jié)果見表1。根據(jù)試驗結(jié)果推測,菌株wzj1、wzj2歸屬于芽孢桿菌屬;wzj3、wzj4、wzj5歸屬于鏈霉菌屬。

    2.3.2?16S rDNA鑒定

    從Gen Bank數(shù)據(jù)庫中通過Blast查找與5株菌株相似的16S rDNA序列,并通過MEGA軟件與菌株wzj1、wzj2、wzj3、wzj4、wzj5的16S rDNA序列進(jìn)行比對,構(gòu)建以16S rDNA全序列為基礎(chǔ)的系統(tǒng)發(fā)育樹。結(jié)果(圖5)表明,菌株wzj1為解淀粉芽孢桿菌(Bacillus amyloliquefaciens),wzj2為蠟樣芽孢桿菌(Bacillus cereus),wzj3屬于鏈霉菌(Streptomyces sp,未鑒定到種),wzj4為糖多孢菌(Saccharopolyspora sp),wzj5為白色鏈霉菌(Streptomyces albulus)。

    2.4?ε-PL產(chǎn)量測定

    2.4.1?搖瓶發(fā)酵

    圖6顯示了5株菌株在搖瓶發(fā)酵過程中ε-PL濃度的變化,可以看出,wzj1、wzj2均在發(fā)酵42 h時達(dá)到其最高ε-PL產(chǎn)量,wzj1產(chǎn)量為0.06 g/L,wzj2產(chǎn)量為0.08 g/L,在發(fā)酵42 h后,ε-PL濃度緩慢遞減;wzj3在搖瓶發(fā)酵108 h時,ε-PL濃度最高,為0.70 g/L;wzj4在發(fā)酵84~108 h時快速積累ε-PL,在108 h達(dá)到0.82 g/L;wzj5發(fā)酵產(chǎn)生的ε-PL含量明顯高于其他4株菌株,且在搖瓶發(fā)酵96 h時ε-PL產(chǎn)量達(dá)到最大值,為1.56 g/L。

    2.4.2?發(fā)酵罐發(fā)酵

    選取搖瓶發(fā)酵中ε-PL產(chǎn)量較高的wzj4菌株和wzj5菌株進(jìn)行發(fā)酵罐發(fā)酵。發(fā)酵調(diào)控采取2階段法:第1階段為菌體生長階段,初始pH值為6.8;第2階段為ε-PL合成階段,pH值維持4.0不變。

    圖7-a是wzj4菌株發(fā)酵罐發(fā)酵過程的參數(shù)變化情況,可以看出,第1階段(0~96 h)菌體濃度與條件呈負(fù)相關(guān)關(guān)系,菌體濃度大幅度增長,同時菌體吸收葡萄糖代謝產(chǎn)酸導(dǎo)致pH值不斷下降。第2階段(96~168 h),維持pH值為4.0。此時在酸性條件下菌體生長受到抑制,菌體濃度逐漸趨于穩(wěn)定,胞內(nèi)積累的ATP不再主要是用于菌體生長,而是被用于ε-PL 合成酶功能的發(fā)揮,有利于ε-PL的積累。從132 h開始,ε-PL產(chǎn)量增長速度變慢,在156 h時ε-PL產(chǎn)量達(dá)2.54 g/L。

    圖7-b給出了wzj5在發(fā)酵過程中各參數(shù)的變化趨勢,其中0~60 h為菌體的生長階段,在產(chǎn)ε-PL的第2階段(60~168 h)中,在發(fā)酵96~120 h時ε-PL積累速率較高,并在發(fā)酵120 h時達(dá)到最大積累量6.99 g/L。

    2.5?平均分子量大小的確定

    參照韓岱等的ε-PL提取方法[26],對發(fā)酵液中的ε-PL進(jìn)行提取。以鄭州拜納佛生物工程股份有限公司的ε-PL作為對照,對從wzj5菌株發(fā)酵液中提取的ε-PL樣品進(jìn)行凝膠滲透色譜比較分析。結(jié)果(圖8)表明,對照在保留時間 為6.9 min 時有最大峰,且樣品在此處也存在最大峰,因此確定發(fā)酵液中存在與對照分子量大小相近的ε-PL。

    2.6?最小抑菌濃度

    由圖9可知,從wzj5發(fā)酵液中提取的ε-PL具備與對照品基本相近的抑菌能力,最小抑菌濃度為0.25 mg/mL。

    3?結(jié)論與討論

    ε-PL是一種新型的天然高效生物防腐劑,其菌種選育一直受到研究者的廣泛關(guān)注。本研究采用不同的方法篩選獲得5株不同類型的產(chǎn)ε-PL菌株,其中2株芽孢桿菌分別是Bacillus amyloliquefaciens和Bacillus cereus,ε-PL產(chǎn)量分別是0.06 g/L和0.08 g/L。前期有文獻(xiàn)報道,芽孢桿菌產(chǎn)ε-PL的搖瓶產(chǎn)量為0.036~0.083 g/L[5,27],且已有研究者對產(chǎn)ε-PL芽孢桿菌的發(fā)酵條件作了初步研究[28]。芽孢桿菌具有發(fā)酵周期短,易培養(yǎng)的優(yōu)點,對于ε-PL生產(chǎn)來說,仍具有一定的開發(fā)潛力。此外,本研究還篩選到一株糖多孢菌屬的菌株wzj4,其搖瓶最大產(chǎn)量為0.82 g/L,發(fā)酵罐發(fā)酵最大產(chǎn)量為2.54 g/L,該結(jié)果為本研究首次報道。

    ε-PL產(chǎn)生菌主要集中在鏈霉菌屬[5,29],包括灰橙鏈霉菌[30]、禾栗鏈霉菌[31]、稠李鏈霉菌[32]等。本研究篩選獲得2株鏈霉菌屬菌株,其中wzj3的搖瓶最大產(chǎn)量為0.70 g/L,wzj5的搖瓶最大產(chǎn)量為1.56 g/L,其發(fā)酵罐發(fā)酵最大產(chǎn)量為6.99 g/L,具有較好的產(chǎn)ε-PL潛力。菌株wzj5的ε-PL產(chǎn)量較高,因此提取其發(fā)酵液中ε-PL進(jìn)行凝膠色譜分析,結(jié)果表明,ε-PL的分子量大小與鄭州拜納佛生物工程股份有限公司生產(chǎn)的ε-PL對照品一致,最小抑菌濃度為250 μg/mL。

    ε-PL作為一種新型高效安全的天然防腐保鮮劑,具有廣闊的應(yīng)用前景,但與其他生物防腐劑相比,目前ε-PL的生產(chǎn)成本和市場價格仍然偏高,后期可采用分子生物學(xué)和發(fā)酵調(diào)控優(yōu)化等手段,進(jìn)一步提高ε-PL的產(chǎn)量和得率;另外,ε-PL是聚合度在25~30范圍內(nèi)的混合物,其提取與分離工藝比較復(fù)雜,仍有較大的技術(shù)提升空間。本研究聚焦在產(chǎn)聚賴氨酸菌株的篩選上,并在發(fā)酵、產(chǎn)物提取分離和產(chǎn)物性能檢測方面進(jìn)行了初步研究,可為后期進(jìn)一步的菌株改良、發(fā)酵條件優(yōu)化、提取工藝優(yōu)化等研究奠定實踐基礎(chǔ)。

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