馮 秒, 熊思元, 林亞維*
(1.武漢理工大學(xué)化學(xué)化工與生命科學(xué)學(xué)院,湖北武漢 430070;2.武漢市洪山區(qū)疾病預(yù)防控制中心,湖北武漢 430064)
重要生物疾病標(biāo)記物N-聚糖是一種重要的疾病標(biāo)志物,它和癌癥、炎癥、心血管疾病、先天性疾病等多種疾病有關(guān)[1 - 4],其分析檢測對于疾病的診斷與病理研究具有重要意義。目前聚糖的分析檢測在生物研究、臨床診斷、生物制藥方面得到了廣泛關(guān)注[5 - 6]。然而N-聚糖本身結(jié)構(gòu)復(fù)雜、離子化效率低、不含生色基團(tuán)[7 - 9],而復(fù)雜生物樣品中聚糖豐度較低,因此對于復(fù)雜生物基質(zhì)中N-聚糖進(jìn)行高靈敏度、高選擇性分離分析仍是一項艱巨的挑戰(zhàn)。目前N-聚糖主要檢測手段包括毛細(xì)管電泳法、核磁共振法、高效液相色譜法和質(zhì)譜法[10 - 12]?;|(zhì)輔助激光解吸電離-飛行時間質(zhì)譜(MALDI-TOF MS)以其靈敏度高、步驟簡單、易于操作、分析通量大,以及分析速度快等優(yōu)勢成為檢測聚糖的主要方法之一[13 - 15]。該方法首先利用特異性酶如N-糖酰胺酶F(PNGase F)切斷糖蛋白上的酰胺鍵釋放糖鏈,其次將聚糖與標(biāo)記試劑衍生化標(biāo)記,純化,最后進(jìn)行質(zhì)譜檢測。常規(guī)的N-聚糖的固相萃取(SPE)純化方法主要依賴于極性,如PGC是通過聚糖的極性實(shí)現(xiàn)分離[16],然而可能導(dǎo)致生物樣品中親水性雜質(zhì)的共洗脫,干擾其質(zhì)譜檢測。
本文采用一種新型SPE純化方法,即氟固相萃取(F-SPE)。采用“一管式”分析方法實(shí)現(xiàn)N-聚糖提純與富集。利用含氟試劑2-氨氧基-N-(3-全氟己基)-乙酰胺(PFHA)對N-聚糖還原端進(jìn)行標(biāo)記,增強(qiáng)其疏水性和離子化效率;對標(biāo)記后的N-聚糖與含氟材料之間進(jìn)行F-SPE,去除樣品中蛋白、無機(jī)鹽等雜質(zhì),實(shí)現(xiàn)衍生化N-聚糖的富集與提純,最終達(dá)到MALDI-TOF MS的高靈敏度、高選擇性檢測。
MALDI-TOF/TOF 5800質(zhì)譜儀(美國,SCIEX公司);HH-1恒溫水浴箱(國華電器有限公司);WH-2微型漩渦混合儀(上海滬西分析儀器廠);5415D高速離心機(jī)(Eppendorf公司(中國));TW50SPE-12S固相萃取裝置(北京東方)。
麥芽七糖(DP7)、核糖核酸酶B(RNase B)、牛血清白蛋白(BSA)、三氟乙酸均購自美國Sigma公司;2-氨氧基-N-(3-全氟己基)-乙酰胺(PFHA)(美國Fluorous Technologies公司);冰HAc(上海凌峰化學(xué)試劑有限公司);乙腈(美國Fisher公司);2,5-二羥基苯甲酸(DHB)、肽N-糖酰胺酶F(PNGase F)、甲醇、NH4HCO3(Aladdin(中國)公司);壬基酚聚氧乙烯醚(NP-40)、十二烷基硫酸鈉(SDS)、10X、β-株蛋白生成障礙性貧血洗脫緩沖試劑包(G7緩沖液)均購自美國BioLabs公司;NaCl(國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司)。所用試劑無特殊說明均為分析純。實(shí)驗用水為超純水。
人血清樣品由武漢同濟(jì)醫(yī)學(xué)院協(xié)和醫(yī)院提供。
1.2.1 PFHA與DP7的衍生在12.5 μL 10 μmol/L DP7溶液中,依次加入25 μL 2.0 mmol/L PFHA溶液、12.5 μL 0.5%HAc溶液,75 ℃下反應(yīng)2 h得到衍生化DP7溶液,待MALDI-TOF MS分析。
1.2.2 RNase B中N-聚糖的標(biāo)記(1)RNase B的酶解:向10 μL 1 mg/mL標(biāo)準(zhǔn)糖蛋白RNase B溶液中,依次加入50 μL 50 mmol/L NH4HCO3緩沖液溶液,2.4 μL SDS變性緩沖液,混勻后,于100 ℃下反應(yīng)10 min。冷卻至室溫后,加入12 μL 10% NP-40溶液,靜置30 min后加入1.0 μL PNGase F溶液,于37 ℃下酶解18 h,煮沸5 min以終止反應(yīng)。所得溶液經(jīng)混旋、離心干燥后,溶于100 μL超純水中。(2)N-聚糖與PFHA衍生:取0.1 μg酶切產(chǎn)物溶液,依次加入10 μL 4 mmol/L PFHA溶液,5 μL 10% HAc溶液,75 ℃下反應(yīng)2 h得到衍生化溶液。(3)F-SPE萃?。阂来斡?0 μL甲醇預(yù)洗氟化柱3次(內(nèi)填有鑲嵌硅膠的氟化碳材料),50 μL 30%甲醇/水溶液平衡液潤洗氟化柱5次;將所得的衍生化溶液混旋,離心干燥,溶于100 μL 30%甲醇/水溶液中,進(jìn)行F-SPE,最后用50 μL純甲醇洗脫氟化柱3次,收集洗脫液,真空離心干燥,待MALDI-TOF MS分析。
1.2.3 生物樣品中N-聚糖檢測取5 μg 1 μg/μL血清樣品進(jìn)行酶解處理(處理方式同1.2.2(1)),待樣品冷卻至室溫后蒸干,向酶解得到的混合物中加入50 μL 0.8% 三氟乙酸,于80 ℃下反應(yīng)45 min,以除去糖鏈中唾液酸基團(tuán)。衍生、純化條件同1.2.2。
1.2.4 MALDI-TOF MS分析樣品溶解在20 μL 50%甲醇/水溶液中,混合均勻,并取0.5 μL樣品溶液與0.5 μL基質(zhì)(含有5 mg/mL DHB、5 mmol/L NaAc的50%甲醇混合溶液),點(diǎn)滴在MALDI金屬板上,在空氣中晾干,待測。質(zhì)譜分析以正離子模式進(jìn)行。MALDI激光光源Nd∶YAG (355 nm,400 Hz),激光強(qiáng)度為5 500,加速電壓20 kV,質(zhì)量掃描范圍m/z1 000~5 000。
氟衍生化原理如圖1所示。圖2(A)是12.5 μL 10 μmol/L DP7溶液與25.0 μL 1.0 mmol/L PFHA溶液,12.5 μL 2%HAc溶液,于65 ℃恒溫反應(yīng)2 h得到衍生化DP7質(zhì)譜圖,可以同時觀察到衍生產(chǎn)物DP7-PFHA信號峰[M+Na]+(m/z1607.70)和未經(jīng)衍生的DP7信號峰[M+Na]+(m/z1175.60),說明反應(yīng)未完全。我們采用歸一化法對衍生效率進(jìn)行計算:衍生產(chǎn)物峰面積(H1)除以剩余DP7峰面積(H2)和產(chǎn)物峰面積總和(H1+H2)。以衍生效率為衡量標(biāo)準(zhǔn),對反應(yīng)溫度、摩爾比、反應(yīng)時間以及反應(yīng)酸度進(jìn)行了優(yōu)化(圖3),得到DP7最優(yōu)衍生條件為:反應(yīng)溫度75 ℃,DP7∶PFHA摩爾比為1∶400,反應(yīng)時間2 h,體系中HAc體積分?jǐn)?shù)為0.5%。在最優(yōu)條件下的衍生效率達(dá)到80%,在此條件下對衍生之后的DP7進(jìn)行質(zhì)譜檢測(圖2(B)),未發(fā)現(xiàn)未衍生DP7的峰,而衍生化產(chǎn)物峰[M+Na]+(m/z1607.33)極強(qiáng),說明該條件下DP7衍生效率高。在此條件下,檢測限低至5 nmol/L的衍生化DP7,此時信噪比為10.71。
圖2 DP7衍生化質(zhì)譜圖(A)和最優(yōu)衍生條件下的DP7衍生化質(zhì)譜圖(B)Fig.2 Mass spectrum of DP7-PFHA derivative(A) and Mass spectrum of DP7-PFHA derivative under optimal derivatization conditions(B)
圖3 衍生條件對DP7衍生效率的影響Fig.3 Effect of derivatization conditions on derivatization efficiency for DP7(a)reaction temperature;(b)molar ratio of PFHA to DP7;(c)reaction time;(d)volume of acetic acid.
2.2.1 RNase B酶解緩沖溶液優(yōu)化實(shí)驗分別選取了G7、NH4HCO3作為緩沖溶液進(jìn)行優(yōu)化,圖4(a)、4(b)分別為G7、NH4HCO3作為緩沖溶液,酶切0.1 μg RNase B產(chǎn)物衍生后直接檢測的結(jié)果,圖4(a)中只出現(xiàn)4種N-聚糖信號,均為未衍生聚糖信號,而且有很多雜質(zhì)出現(xiàn);圖4(b)中,m/z1689.26、1851.29和2013.33信號峰分別對應(yīng)Man5-7衍生產(chǎn)物[M+Na]+??赡苁荖H4HCO3熱穩(wěn)定相對較差,在離心干燥過程中會逐步分解脫離樣品體系,從而減少其在氟化衍生過程中對體系酸堿度的影響。因此,實(shí)驗選用NH4HCO3作為緩沖溶液。
圖4 不同緩沖溶液條件下RNase B中N-聚糖衍生質(zhì)譜圖Fig.4 Mass spectra of derived N-glycans in RNase B under different buffer solutions (a)NH4HCO3 buffer;(b)G7 buffer.
2.2.2 RNase B中N-聚糖衍生條件優(yōu)化與標(biāo)準(zhǔn)糖DP7相比較,RNase B中N-聚糖衍生需要進(jìn)一步優(yōu)化。我們通過以衍生產(chǎn)物中信號最強(qiáng)的m/z1689.30離子峰峰高作為衡量衍生效率的標(biāo)準(zhǔn),固定N-聚糖的量為0.1 μg RNase B酶切得到,改變PFHA溶液的濃度和酸度進(jìn)行衍生,得到的衍生產(chǎn)物以50%甲醇溶液為平衡液進(jìn)行F-SPE。從圖5可以看出,最優(yōu)衍生條件為:PFHA(4 mmol/L)用量為10 μL,10% HAc溶液為5 μL。在此條件下成功檢測到4種中性N-聚糖。
圖5 RNase B中N-聚糖衍生質(zhì)譜圖(內(nèi)插圖為PFHA濃度(a)與HAc濃度(b)對衍生效率的影響)Fig.5 Mass spectrum of derived N-glycans in RNase B(Inset:molar ratio of PFHA to DP7(a),volume of acetic acid(b)on derivatization efficiency)
圖5中可以看到m/z1689.27、1851.30、2013.32和2175.34這4個信號峰,它們分別對應(yīng)Man5-8四種產(chǎn)物[M+Na]+離子峰,缺少M(fèi)an-9衍生產(chǎn)物離子峰,且在該條件下質(zhì)譜圖中出現(xiàn)較多雜峰,這可能是由于所用洗脫條件并不適用于該分析方法,雜質(zhì)殘留,影響聚糖的檢測,因此需要對F-SPE洗脫條件進(jìn)行優(yōu)化。據(jù)此采用不同體積分?jǐn)?shù)的甲醇溶液為平衡液進(jìn)行F-SPE。仍以質(zhì)譜圖中信號響應(yīng)最強(qiáng)的m/z1 689.30離子峰峰高作為衡量F-SPE效率的標(biāo)準(zhǔn),可以發(fā)現(xiàn)以30%甲醇為平衡液F-SPE富集效率最高。在此條件下進(jìn)行質(zhì)譜檢測,可以觀察到RNase中Man5-9的5個信號峰(m/z=1689.30、1851.29、2013.37、2175.33和2337.38)。在此條件下,可成功檢測到5 ng/μL的RNase B中5種N-聚糖,且信噪比為3.74。
在RNase B(0.1 μg)酶解得到的N-聚糖中,加入1 μg BSA以及10 μg NaCl,經(jīng)過PFHA衍生和F-SPE后,檢測結(jié)果如圖6所示。在非糖基化蛋白和鹽濃度較大的情況下,依然可清楚地觀測到RNase B中所有N-聚糖Man5-9的5個[M+Na]+離子峰。表明此方法具有良好的選擇性和抗干擾性能。
將PFHA衍生結(jié)合F-SPE的MALDI-TOF MS方法應(yīng)用到5 μg 1 μg/μL人血清樣品中N-聚糖的檢測。按照上述所得的最優(yōu)條件下進(jìn)行衍生、純化、檢測(圖7),成功檢測到12種N-聚糖。表明該方法在生物樣品檢測中具有良好的適用性。
圖6 加入1 μg BSA及10 μg NaCl后衍生RNase B的質(zhì)譜圖Fig.6 Mass spectrum of derived RNase B after spiked with 1 μg BSA and 10 μg NaCl
圖7 人血清中N-聚糖的質(zhì)譜圖Fig.7 Mass spectrum of N-glycans in human serum
本文發(fā)展了一種PFHA衍生,結(jié)合F-SPE后MALDI-TOF MS檢測N-聚糖的方法。該方法在增強(qiáng)N-聚糖疏水性,提高其離子化效率的同時實(shí)現(xiàn)其高效富集純化,有效提高生物樣品中N-聚糖豐度,降低雜質(zhì)對其質(zhì)譜信號的干擾,達(dá)到高選擇性、高靈敏度檢測N-聚糖的目的。通過此方法,我們最終可以檢測到5 ng/μL的標(biāo)準(zhǔn)糖蛋白RNase B的所有N-聚糖,并將此方法運(yùn)用到5 μg血清樣品的檢測,成功檢測到12種N-聚糖。該方法具有操作簡便、靈敏度高、選擇性強(qiáng)等優(yōu)點(diǎn),為復(fù)雜生物樣品中N-聚糖的分析提供了新的有利方法。