劉 飛,郭 偉,王志成*
(1.武警吉林總隊醫(yī)院第二門診部,吉林 長春130052;2.吉林大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院國家衛(wèi)健委放射生物學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗室,吉林 長春130021)
糖尿病(Diabetes mellitus,DM)已成為繼心血管疾病、腫瘤之后的另一個嚴(yán)重危害居民健康的重要慢性代謝性疾病,本研究通過鏈尿佐菌素(STZ)藥物誘導(dǎo)Wistar大鼠的糖尿病模型,進(jìn)而給予低劑量電離輻射(LOR),探討其抗氧化活性和降低凋亡的作用,為糖尿病腦損傷的保護(hù)提供新思路和實(shí)驗數(shù)據(jù)。
1.1 主要試劑與儀器
STZ及DCFH-DA(2,7-Dichlorodi-hydrofluorescein diacetate)購自美國Sigma公司;血糖儀及配套試紙購自美國強(qiáng)生公司;AnnexinⅤ/FITC試劑盒購自美國BD公司;MDA、SOD和CAT試劑盒購自南京建成生物研究院;β-actin、Bcl-2、Bax和caspase-3一抗購自美國CST公司;X-RAD 320iX生物輻照儀購自美國Precision X-ray公司;紫外分光光度計購自美國Bio-Tek公司;其他試劑為國產(chǎn)分析純。
1.2 實(shí)驗動物
Wistar大鼠購自吉林大學(xué)白求恩醫(yī)學(xué)部實(shí)驗動物中心,動物合格證號:SXCK(吉)203-2007,實(shí)驗前大鼠室內(nèi)適應(yīng)環(huán)境一周,自由進(jìn)水、進(jìn)食,60只雄性大鼠進(jìn)行造模,造模成功大鼠進(jìn)行分組。
1.3 STZ誘導(dǎo)糖尿病模型
造模前大鼠禁食12 h,不禁水,造模時按照50 mg/kg進(jìn)行STZ(10 g/L)左下腹腔一次性注射,注射2 d后檢測空腹12 h尿糖,取尿糖“+++”者再次注射STZ,3 d后取尾靜脈血測空腹12 h血糖,血糖大于16.7 mmol/L,且具有多飲、多食、多尿現(xiàn)象,確定為糖尿病模型。
1.4 實(shí)驗分組及處理
正常大鼠10只,以及造模成功的糖尿病大鼠40只,分成正常組、模型組、模型+25 mGy、模型+50 mGy和模型+75 mGy組,每組10只。LDR照射劑量率為12.5 mGy/min,電壓180 kV,電流15 mA,隔日照射,照射12次,繼續(xù)實(shí)驗4周。
1.5 生化法檢測MDA、SOD和CAT
LDR照射后4周,麻醉后處死大鼠,冰上取出大腦,輕輕剝離海馬,每組4只大鼠的海馬在冰冷的生理鹽水中漂洗,除去血液,濾紙拭干,稱重,放入玻璃離心管中,并加入9倍體積的冷勻漿介質(zhì),用組織剪將其剪碎,超聲粉碎儀將組織勻漿后分裝在EP管中,制備好的10%海馬組織勻漿,測定蛋白濃度。分別采用MDA、SOD和CAT試劑盒檢測MDA含量、SOD和CAT活力。
1.6 流式細(xì)胞術(shù)檢測細(xì)胞凋亡和ROS
3只大鼠海馬放置5 ml 0.01 M PBS中,利用毛玻璃輕輕研磨成單細(xì)胞懸液,并經(jīng)200目尼龍網(wǎng)過濾,1 500 rpm離心5 min后,計數(shù),定容后待測。每組取5×105個細(xì)胞,加入450 μl Buffer,2 μl的Annexin V和5 μl的PI;室溫避光染色15 min,流式細(xì)胞術(shù)檢測凋亡;另取1 × 106個細(xì)胞,加入40 μl(20 mmol/L)的DCFH-DA,37℃孵育30 min;PBS洗2次后1500 r/min離心5 min,流式細(xì)胞術(shù)檢測ROS水平;Cell Quest 軟件分析結(jié)果,并以百分率表示。
1.7 Western blot檢測Bcl-2、Bax和caspase-3的表達(dá)
此處引用的是《詩經(jīng)·桃夭》的內(nèi)容,是一首祝賀年輕姑娘出嫁的詩。這是前半夜唱的敘舊歌,表達(dá)姑娘對美好愛情與幸?;橐龅你裤?,想得到一個如意之人。
每組3只大鼠的海馬,提取總蛋白并進(jìn)行定量,蛋白變性后每組取25 μg上樣,SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳時,濃縮膠采用60 V恒壓,分離膠采用120 V恒壓。蛋白轉(zhuǎn)膜至硝酸纖維膜后,利用新鮮配置的封閉液(1×TBST,5%脫脂奶粉,0.05%的Tween-20)常溫封閉1 h,分別按照1∶1000(β-actin)和1∶500(Bcl-2、Bax和caspase-3)進(jìn)行一抗孵育,4℃過夜,用含0.05% Tween-20的TBST洗3次,每次10 min,繼而按照1∶1000的辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗,37℃震蕩孵育1 h,TBST洗3次,每次10 min,利用ECL發(fā)光試劑盒進(jìn)行發(fā)光,X線片曝光顯影,照相后分析蛋白的表達(dá)。
1.8 統(tǒng)計學(xué)處理
2.1 LDR對大鼠血糖水平的影響
造模成功后未進(jìn)行LDR前,DM和DM+LDR組大鼠血糖水平均高于16.7 mmol/L,且各組間無明顯差異,表明模型為糖尿病模型,可以用于后續(xù)研究(表1)。給予25、50和75 mGy照射后2周,血糖繼續(xù)增加,且顯著高于Control組(P<0.05),各劑量組間無顯著差異;照射后4周,DM組血糖水平升高到25.33 mmol/L,LDR各組均顯著低于DM組(P<0.05,表1);而LDR照射結(jié)束后4周,DM組血糖仍維持在高水平,25、50和75 mGy照射組血糖均有下降趨勢,且以75 mGy降低最多。
表1 各組大鼠血糖水平
注:*P<0.05 vs Control group,#P<0.05 vs DM group
2.2 LDR對大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞氧化損傷的影響
模型大鼠經(jīng)LDR后4周,檢測海馬神經(jīng)元細(xì)胞ROS水平、MDA含量、SOD和CAT活力,結(jié)果顯示,與Control組比較,DM組ROS水平和MDA含量顯著升高(P<0.05,表2),而SOD和CAT活力未見明顯改變;而給予25、50和75 mGy LDR后,ROS水平和MDA含量則較DM組顯著降低(P<0.05,表2),且SOD和CAT活力仍處于較低水平(P<0.05,表2)。
表2 各組Wistar大鼠經(jīng)LDR后ROS水平、MDA含量、SOD和CAT活力
注:*P<0.05 vs Control group,#P<0.05 vs DM group
2.3 LDR對模型大鼠海馬神經(jīng)細(xì)胞凋亡百分比的影響
流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果顯示(圖1):海馬神經(jīng)細(xì)胞凋亡百分比Control組為(6.85±0.75)%、DM組為(28.51±2.47)、DM+25 mGy組為(18.56±2.66)%、DM+50 mGy組(14.83±1.59)%和DM+75 mGy組為為(13.88±2.98)%;與Control組比較,DM和DM+LDR組凋亡百分比均顯著增加(P<0.05),與DM組比較DM+LDR組凋亡百分比則顯著降低(P<0.05)。
2.4 LDR對大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞中Bcl-2、Bax和caspase-3蛋白表達(dá)的影響
模型大鼠經(jīng)LDR后4周,檢測海馬神經(jīng)元細(xì)胞中Bcl-2、Bax和caspase-3蛋白的表達(dá),由圖2可見,DM模型組Bcl-2表達(dá)降低,而Bax和caspase-3均增加,暗示凋亡的增加;而DM大鼠經(jīng)LDR后Bcl-2表達(dá)增加,而Bax和caspase-3表達(dá)則降低,暗示LDR降低了DM大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞的凋亡,與流式結(jié)果相似。
圖1 利用AnnexinⅤ/FITC試劑盒流式細(xì)胞術(shù)檢測Wistar大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞的凋亡
圖2 Western blot檢測Wistar大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞Bcl-2、Bax和caspase-3的表達(dá)
STZ誘導(dǎo)的糖尿病模型大鼠高血糖在大腦各個區(qū)域神經(jīng)的降解起到重要作用,包括扣帶回皮質(zhì)、丘腦核和海馬體,主要和ROS的產(chǎn)生有關(guān)[1]。海馬體對近期主要記憶具有重要作用,并將其存入大腦皮層轉(zhuǎn)變成永久記憶。海馬體在記憶和學(xué)習(xí)中的重要作用已經(jīng)得到充分的認(rèn)識,海馬受損的患者記憶力明顯下降,并可能患有焦慮癥。研究表明,糖尿病時葡萄糖對神經(jīng)的毒性作用也是因為增強(qiáng)細(xì)胞內(nèi)葡萄糖的氧化進(jìn)而導(dǎo)致ROS產(chǎn)生的增加[2]。在本研究的動物模型中,海馬神經(jīng)元細(xì)胞ROS水平和MDA含量均顯著高于正常組,暗示糖尿病模型處于氧化損傷狀態(tài)。另外,氧化應(yīng)激損傷細(xì)胞可以誘導(dǎo)凋亡,研究表明糖尿病時海馬細(xì)胞由高血糖誘導(dǎo)的凋亡是海馬損傷的一個重要途徑[3,4]。而且在凋亡過程中,凋亡的線粒體調(diào)控途徑涉及到持續(xù)的高血糖狀態(tài)可以產(chǎn)生過量的ROS,使得線粒體膜電位及滲透性發(fā)生變化,膜通透性轉(zhuǎn)運(yùn)孔開放,膜去極化,使得線粒體內(nèi)促凋亡因子釋放到細(xì)胞漿中,激活caspase-3,引發(fā)級聯(lián)反應(yīng),從而誘發(fā)凋亡;另外,Bcl-2/Bax對于調(diào)控膜的通透性具有重要的作用[5]。本研究所構(gòu)建的糖尿病大鼠模型中,海馬神經(jīng)細(xì)胞凋亡顯著增加,且Bcl-2表達(dá)降低、Bax和caspase-3表達(dá)增高,暗示相應(yīng)的線粒體通路被激活。
長期的高血糖會導(dǎo)致嚴(yán)重的并發(fā)癥,針對性治療可以有效緩解相應(yīng)的并發(fā)癥。研究者利用番茄紅素(lycopene)治療糖尿病大鼠模型,結(jié)果顯示可以降低氧化損傷,并且降低氧化應(yīng)激導(dǎo)致的外周炎癥和認(rèn)知損傷的發(fā)展,而且也能降低線粒體途徑介導(dǎo)的細(xì)胞凋亡[6,7]。由此可見,以降低氧化損傷為目的的糖尿病神經(jīng)損傷將具有重要的意義。低劑量電離輻射是單次照射劑量小于0.2 Gy,劑量率控制在0.05 Gy/min以內(nèi)的劑量[8]。以往研究顯示可通過誘導(dǎo)抗氧化活性對大腦進(jìn)行保護(hù)作用,且LDR對大腦不具有損傷效應(yīng)[9,10]。在本研究中,25、50和75 mGy的LDR對糖尿病模型大鼠的血糖具有一定的控制作用,但并未達(dá)到完全逆轉(zhuǎn)的效果。而且,也降低DM大鼠海馬ROS水平和MDA含量,暗示可以降低氧化損傷,未能顯著提高抗氧化能力。同時,也降低了DM大鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞凋亡和線粒體途徑相關(guān)分子的表達(dá)。由此可見,LDR可以通過降低氧化損傷、抑制凋亡的誘導(dǎo),從而發(fā)揮控制血糖的作用,有可能是一個較好的糖尿病腦并發(fā)癥控制的新思路。
總之,本研究通過STZ建立Ⅰ型糖尿病大鼠模型,并給予LDR照射治療,結(jié)果顯示糖尿病大鼠海馬的氧化損傷和凋亡誘導(dǎo)增加,且LDR具有一定的緩解作用,這為LDR控制糖尿病腦損傷的研究提供了必要的實(shí)驗證據(jù)。