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      利用SSR構(gòu)建甜菜品種的分子身份證

      2019-10-11 07:13:24栗媛王茂芊邳植吳則東
      中國糖料 2019年4期
      關(guān)鍵詞:標記技術(shù)甜菜指紋

      栗媛 ,王茂芊 ,邳植 ,吳則東

      (1.黑龍江大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,哈爾濱150080;2.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院甜菜研究所/黑龍江大學(xué)農(nóng)作物研究院,哈爾濱150080;3.黑龍江省甜菜工程技術(shù)研究中心,哈爾濱150080)

      0 引言

      糖用甜菜(Beta vulgarisL.)屬于藜科、甜菜屬、二年生草本植物[1]。栽培甜菜分為糖用甜菜、飼用甜菜、葉用甜菜和食用甜菜。我國糖用甜菜主要分布在黑龍江、新疆、內(nèi)蒙古等地,是除了甘蔗之外的另一個主要糖來源,也是我國北方一種重要的經(jīng)濟作物[1]。近年來,甜菜分子生物學(xué)發(fā)展迅速,目前已經(jīng)有多種分子標記技術(shù)在甜菜分子生物學(xué)中得到了應(yīng)用,包括:SSR[2-3]、ISSR[4]、SRAP[5]以及RAPD[6]等。其中,由于SSR分子標記技術(shù)操作簡單并且所得產(chǎn)物具有共顯性、重復(fù)性好等特點[10],因此在作物遺傳多樣性以及品種的鑒定研究中得到廣泛應(yīng)用,例如:水稻[7]、小麥[8]、玉米[9]、煙草[10]、甘薯[11]以及甘蔗[12]等,均利用SSR分子標記技術(shù)構(gòu)建了相應(yīng)的分子身份證,并建立了標準。

      對于甜菜來說,2017年國家對甜菜品種實行登記制度,然而目前鑒別品種純度和真實性的方法主要是形態(tài)學(xué)鑒定法,形態(tài)學(xué)鑒定的方法一般需要整個生長周期,不僅鑒別時間長,還有時效性的問題,而且對于親緣關(guān)系較近的品種難以鑒別,這樣甜菜種植者一旦買到假冒偽劣的種子,將會極大地影響他們當(dāng)年的收入以及育種公司的利益。而分子標記技術(shù)可以實現(xiàn)對近似品種的鑒別,并且不受生育期的限制,隨時提取DNA即可鑒別。因此新登記的品種亟需利用分子標記技術(shù)構(gòu)建指紋圖譜,而利用SSR分子標記技術(shù)構(gòu)建甜菜品種的指紋圖譜是目前比較好的一個選擇。本試驗利用SSR引物對2018年農(nóng)業(yè)農(nóng)村部全國農(nóng)業(yè)技術(shù)推廣服務(wù)中心提供的39份甜菜登記品種進行分子身份證的構(gòu)建,為將來利用SSR分子標記技術(shù)鑒定甜菜品種的純度和真實性提供技術(shù)依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 試驗材料

      1.1.1 供試品種

      實驗用到的39份甜菜品種均來自于農(nóng)業(yè)農(nóng)村部全國農(nóng)業(yè)技術(shù)推廣服務(wù)中心,品種名稱及其編號見表1。

      表1 供試甜菜品種編號及名稱Table 1 Number andname of sugar beet varieties for trial

      1.1.2 引物

      實驗中用到的 17 對核心引物,分別為 BVGTT6、BVV45、BVV21、BVV23、C74、LNX38、LNX95、SB06、SB13、SB15、SSD6、TC55、TC58、TC83、TC122、TC123和TC129。

      1.2 實驗方法

      1.2.1 甜菜DNA的提取

      本實驗中用到的甜菜品種是在光照培養(yǎng)室進行培養(yǎng),播種時每個品種取15粒,待其長出4片真葉時,從每個品種里挑選10株新鮮健康的幼苗,然后利用改進過的CTAB法[13]提取甜菜基因組DNA。最后每個離心管加入100μL TE緩沖液溶解DNA,利用核酸蛋白測定儀最終得到DNA原液并取部分稀釋至10 ng/μL,剩下的母液放到-20℃的冰箱中保存。

      1.2.2 甜菜SSR-PCR擴增反應(yīng)體系及程序

      甜菜SSR-PCR的反應(yīng)體系來自于文獻[14],反應(yīng)程序采用Touchdown程序,退火溫度由65℃到56℃,1℃兩個循環(huán),最后55℃20個循環(huán)。

      1.2.3 電泳及銀染

      利用8%的非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳對PCR擴增產(chǎn)物進行分離,每個孔加入PCR產(chǎn)物2μL,電壓180 V,時間為90 min。電泳結(jié)束后,使用快速銀染法對其染色[15],最后拍照記錄。

      圖1引物TC129對39個甜菜品種的擴增結(jié)果Fig.1 Amplification results of 39 sugar beet varieties by primer TC129

      2 結(jié)果及分析

      2.1 39個甜菜品種指紋圖譜的構(gòu)建

      把這17對引物作為核心引物,對已提取出的39份甜菜品種的基因組DNA進行擴增,便成功構(gòu)建出39個甜菜品種的SSR指紋圖譜。通過對SSR-PCR擴增產(chǎn)物的檢測,在同一遷移率位置,有帶記為1,無帶記為0,利用0、1數(shù)據(jù)構(gòu)建甜菜品種的指紋圖譜。圖1為引物TC129對39個甜菜品種的擴增條帶。利用5對引物L(fēng)NX38、LNX95、SSD6、SB06、SB13,便可完全鑒別出39個甜菜品種(0、1數(shù)據(jù)略)。

      2.2 聚類分析

      利用17對SSR引物所擴增的條帶,依據(jù)0、1數(shù)據(jù),按照UPGMA進行聚類分析,得到了39份甜菜品種的遺傳關(guān)系樹狀圖,親緣關(guān)系樹狀圖在分子水平上顯示了甜菜品種間的親緣關(guān)系,可以為今后甜菜育種親本的選配提供理論依據(jù)。聚類圖見圖2。

      在遺傳距離0.17的位置,39份甜菜品種被分成5個類群,包括了4個較大的類群和1個小類群,聚類的結(jié)果與品種的來源有較好的一致性,也就是一般說來來源于同一種子公司或者同一地區(qū)的品種聚在了一起。如BETA176和BETA468聚在了一起,這兩個品種均為美國Betaseed公司的品種;KUHN1178和SV1375聚在了一起,這兩個品種均為荷蘭的品種;HI0936和MA3001聚在了一起,這兩個品種同屬于瑞典的Hillesh?gMaribo公司。這種現(xiàn)象說明一定程度上,目前生產(chǎn)方面同一公司反復(fù)使用同一不育系或授粉系配制品種,從而才造成了遺傳基礎(chǔ)狹窄這一事實。因為甜菜的遺傳基礎(chǔ)本來就比較狹窄,未來甜菜育種工作只有加強國內(nèi)外的合作才有可能組配、選育出更加優(yōu)良的甜菜品種。

      圖2 39個甜菜品種的聚類圖Fig.2 Clustergram of 39 sugar beet varieties

      3 討論

      目前,雖然有多篇文獻記載關(guān)于甜菜指紋圖譜的構(gòu)建,但構(gòu)建標準卻各不相同,例如:甜菜基因組DNA的提取[16]、PCR反應(yīng)程序[17]、SSR擴增產(chǎn)物不同的檢測方法[18]等。這些因素均會對我們的實驗結(jié)果產(chǎn)生或大或小的影響,因此我們不斷地改進DNA提取方法以及反應(yīng)體系、反應(yīng)程序,最終利用SSR核心引物成功地構(gòu)建出39份甜菜品種的指紋圖譜,實現(xiàn)了快速鑒定甜菜品種真實性以及純度的目的。這對于減少種植者的損失,以及維護甜菜品種市場的秩序均具有重大的意義。

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