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    紫色紅曲霉固態(tài)發(fā)酵豆渣產(chǎn)紅曲色素的工藝研究

    2019-05-13 09:20:04孔維寶楊樹玲張愛梅牛世全
    中國油脂 2019年5期
    關(guān)鍵詞:紅曲豆渣抗壞血酸

    孔維寶,陳 冬,楊 洋,楊樹玲,張愛梅,牛世全

    (1.西北師范大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,蘭州 730070; 2.金徽酒股份有限公司,甘肅 隴南 742308)

    豆渣是豆制品加工過程中的主要副產(chǎn)物,我國作為大豆生產(chǎn)大國、進(jìn)口大國和消費大國,據(jù)測算每年產(chǎn)生2 000多萬t的濕豆渣,產(chǎn)量大、來源廣[1]。豆渣營養(yǎng)豐富,富含膳食纖維、蛋白質(zhì)、鈣、磷、鐵、維生素等多種營養(yǎng)成分,是目前動物日糧中最常用的蛋白飼料,但高纖維含量以及多種抗?fàn)I養(yǎng)因子的存在,導(dǎo)致豆渣不易被機(jī)體降解消化,使其利用率降低,且在加工過程中產(chǎn)生的豆腥味無法去除,最終導(dǎo)致豆渣的開發(fā)利用效果不佳[2-3]。研究表明,微生物發(fā)酵豆渣不僅能有效緩解這些不利因素,還可進(jìn)一步提高其營養(yǎng)價值,是豆渣高效利用的有效途徑之一[4]。

    紅曲霉(Monascus)為一種小型絲狀腐生真菌,其代謝過程中可產(chǎn)生紅曲色素、Monacolin類膽固醇合成抑制劑、抑菌性物質(zhì)等多種生理活性物質(zhì),尤其是紅曲色素被視為安全性極高的天然食用色素,還可預(yù)防多種疾病,有望替代化學(xué)合成色素,在食品領(lǐng)域廣泛使用[5-6]。以紅曲霉進(jìn)行固態(tài)發(fā)酵是獲取其代謝產(chǎn)物的主要途徑之一,目前固態(tài)發(fā)酵法生產(chǎn)紅曲色素主要以大米為原料進(jìn)行發(fā)酵,但以大米為固態(tài)發(fā)酵基質(zhì)生產(chǎn)紅曲色素的成本較高,在工業(yè)上很難實現(xiàn)大規(guī)模生產(chǎn)[7]。因此,從綠色環(huán)保和有效開發(fā)利用農(nóng)業(yè)廢棄物的角度出發(fā),將豆渣、豆粕、玉米、麥麩等一些廉價的農(nóng)產(chǎn)品及其加工廢棄物用作固態(tài)發(fā)酵基質(zhì),用來發(fā)酵生產(chǎn)紅曲霉次級代謝產(chǎn)物及微生物飼料的研究具有重要的實際應(yīng)用價值。已有的研究表明紅曲霉可利用多種農(nóng)林廢棄物進(jìn)行固態(tài)發(fā)酵生產(chǎn)生物活性物質(zhì)[8]?;诖?,本文主要探討了以紫色紅曲霉(Monascuspurpureus)固態(tài)發(fā)酵豆渣產(chǎn)紅曲色素的可行性,對以豆渣為固態(tài)發(fā)酵基質(zhì)產(chǎn)紅曲色素的工藝進(jìn)行了優(yōu)化,以期篩選出廉價高效的有機(jī)固態(tài)發(fā)酵基質(zhì)和工藝參數(shù),為紅曲霉固態(tài)發(fā)酵制劑(營養(yǎng)強(qiáng)化劑或功能飼料)的開發(fā)提供實驗依據(jù)和技術(shù)參考。

    1 材料與方法

    1.1 實驗材料

    1.1.1 菌種與試劑

    紫色紅曲霉(M.purpureus)菌株由作者所在實驗室從市售紅曲米中分離、鑒定并保藏。

    無水乙醇、硫酸鎂、硝酸鈉、磷酸二氫鉀、甘油,均為分析純;紅曲紅標(biāo)準(zhǔn)品(上海源葉生物科技有限公司)。

    1.1.2 儀器與設(shè)備

    DHP-9080B改良恒溫恒濕培養(yǎng)箱(上?,槴\實驗設(shè)備公司),GI54TW高壓蒸汽滅菌鍋(致微儀器有限公司),AC2-4S1生物安全柜(新加坡藝思高),CP124C分析電子天平(上海奧豪斯儀器有限公司),TG20-WS離心機(jī)(湖南湘立科學(xué)儀器有限公司),F(xiàn)CD-3000恒溫鼓風(fēng)干燥箱(上海瑯玕實驗設(shè)備公司),UV-2800紫外可見分光光度計(尤尼柯儀器有限公司)。

    1.1.3 培養(yǎng)基

    菌種保藏培養(yǎng)基:馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基(PDA)。

    種子培養(yǎng)基:葡萄糖30 g/L,蛋白胨10 g/L,KH2PO41 g/L,MgSO4·7H2O 1 g/L,自然pH。

    固態(tài)發(fā)酵基質(zhì):分別以干燥的豆渣(大豆制品加工廢棄物)、大米、大豆粉、去皮大豆粉和小麥麩皮為發(fā)酵基質(zhì),各稱取20 g后加一定量的蒸餾水混勻調(diào)節(jié)初始含水量,121℃滅菌20 min。

    1.2 實驗方法

    1.2.1 發(fā)酵種子液的制備

    取4℃冰箱保存的M.purpureus接種于PDA斜面培養(yǎng)基,30℃活化培養(yǎng)5~7 d,向活化后的PDA斜面培養(yǎng)基中加入5 mL無菌水,輕輕刮下孢子,制成孢子懸浮液。吸取2 mL孢子懸浮液接種于含有100 mL種子培養(yǎng)基的250 mL錐形瓶中,于200 r/min、30℃恒溫振蕩培養(yǎng)箱中培養(yǎng)2 d。

    1.2.2 發(fā)酵培養(yǎng)

    向固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基中接入一定量發(fā)酵種子液,控制溫度30℃、濕度60%~65%的條件下發(fā)酵培養(yǎng)。

    1.2.3 紅曲色素的測定

    標(biāo)準(zhǔn)曲線制作:精密稱取10 mg紅曲紅標(biāo)準(zhǔn)品,用70%乙醇溶解定容至100 mL,配制成質(zhì)量濃度為0.1 mg/mL紅曲紅溶液。精密吸取1、2、3、4、5、6 mL至10 mL容量瓶中,70%乙醇定容至刻度,得到10、20、30、40、50、60 μg/mL的紅曲紅標(biāo)準(zhǔn)溶液。70%乙醇作空白,分別測定各質(zhì)量濃度溶液在505 nm處的吸光值,并以質(zhì)量濃度(y)為縱坐標(biāo),505 nm處的吸光值(A)為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得線性回歸方程為y=0.097A+0.002 1,R2=0.998 53。

    紅曲色素測定:將發(fā)酵后的固態(tài)基質(zhì)冷凍干燥后粉碎,稱取1.00 g樣品加入10 mL 70%乙醇,60℃水浴提取2 h后,3 000 r/min離心10 min,取上清液;沉淀物在相同條件下重復(fù)提取2次,合并上清液,定容、稀釋后測定505 nm處的吸光值。按照標(biāo)準(zhǔn)曲線方程計算紅曲色素含量。

    1.2.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計與分析

    采用Origin 9進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計,SPSS 22和Latin.lnk正交設(shè)計助手用于數(shù)據(jù)分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同固態(tài)發(fā)酵基質(zhì)對M. purpureus產(chǎn)紅曲色素的影響

    不同固態(tài)發(fā)酵基質(zhì)大米、去皮大豆粉、大豆粉、豆渣和小麥麩皮分別加入10、15、20 mL水調(diào)整基質(zhì)初始含水量分別為33.33%、42.86%、50%,按10%的接種量接入發(fā)酵種子液,按1.2.2發(fā)酵培養(yǎng)14 d后,測定發(fā)酵固體樣品中的紅曲色素含量,探究不同固態(tài)發(fā)酵基質(zhì)對M.purpureus產(chǎn)紅曲色素的影響,結(jié)果如圖1所示。

    圖1 不同固態(tài)發(fā)酵基質(zhì)對紅曲色素含量的影響

    由圖1可知,固態(tài)發(fā)酵基質(zhì)初始含水量低,不利于紅曲色素的產(chǎn)生,整體來看,在基質(zhì)初始含水量50%的條件下產(chǎn)紅曲色素的效果相對較好。原因在于固態(tài)發(fā)酵中幾乎沒有游離水,微生物生長所需水分主要依賴于基質(zhì)初始含水量,較低的基質(zhì)初始含水量加上后期的蒸發(fā),導(dǎo)致基質(zhì)較干,不足以滿足微生物大量生長繁殖對水分的需求,從而抑制了紫色紅曲霉的生長[9]。整體來看,大米和豆渣發(fā)酵基質(zhì)產(chǎn)紅曲色素的效果最好,且兩者差距不大,遠(yuǎn)高于去皮大豆粉、大豆粉和小麥麩皮產(chǎn)紅曲色素的量。由于大米主要成分為淀粉,被紅曲淀粉酶降解為葡萄糖加以利用,為紫色紅曲霉的生長提供了豐富的碳源,此外大米發(fā)酵基質(zhì)保濕效果也相對較好,利于色素的積累[10-11]。而大豆的蛋白質(zhì)、脂肪、膳食纖維含量較高,為紫色紅曲霉的生長提供了豐富的碳、氮源。豆渣是大豆經(jīng)物理壓榨或高溫處理得來的,加工過程中更容易使一些不溶性膳食纖維大分子轉(zhuǎn)變?yōu)樾》肿拥途垠w的膳食纖維降解物,被微生物利用,同時豆渣顆粒度大于大豆粉,不易粘連成塊,增加了CO2和O2的通透性,不僅促進(jìn)了紫色紅曲霉生長,還增加了紅曲色素的積累[12]。通過比較去皮大豆粉和大豆粉的紅曲色素的量可以推測,大豆皮中可能存在某種物質(zhì)能夠促進(jìn)紫色紅曲霉發(fā)酵產(chǎn)紅曲色素,也可能由于大豆皮的存在增大了發(fā)酵基質(zhì)間的孔隙,增加了通氣性。基于發(fā)酵基質(zhì)廉價且能高產(chǎn)紅曲色素的目標(biāo),本文選取豆渣做進(jìn)一步的優(yōu)化實驗。

    2.2 不同營養(yǎng)因子對M.purpureus固態(tài)發(fā)酵豆渣產(chǎn)紅曲色素影響的單因素實驗

    2.2.1 甘油添加量的影響

    甘油作為能被紅曲霉快速利用的常用碳源之一,不僅價格低廉容易獲得,還可使菌體生長過程完成后仍保持碳代謝的饑餓狀態(tài),促進(jìn)紅曲色素的大量積累[13-14]。以豆渣為固態(tài)發(fā)酵基質(zhì),在接種量10%、豆渣加水量15 mL的條件下,按1.2.2發(fā)酵培養(yǎng)14 d,考察不同甘油添加量(1%、3%、5%、7%、9%)對M.purpureus產(chǎn)紅曲色素的影響,結(jié)果如圖2所示。

    圖2 甘油添加量對紅曲色素含量的影響

    由圖2可知,甘油添加量在1%~5%時,紅曲色素含量呈現(xiàn)急速上升趨勢,甘油添加量為5%~7%時,紅曲色素含量緩慢上升,當(dāng)甘油添加量在7%~9%時,紅曲色素含量出現(xiàn)下降趨勢,且甘油添加量為7%時紅曲色素含量達(dá)到最大值。該現(xiàn)象可能是由于低濃度的甘油作為碳源促進(jìn)了紫色紅曲霉生物量的積累,逐漸提高紅曲色素含量。當(dāng)甘油添加量大于7%時,碳源積累過多降低了發(fā)酵底物的pH,抑制產(chǎn)物積累[15]。

    2.2.2 NaNO3添加量的影響

    NaNO3是促進(jìn)紅曲霉產(chǎn)紅曲色素的最佳氮源之一。以豆渣為固態(tài)發(fā)酵基質(zhì),在豆渣加水量15 mL、接種量10%條件下,按1.2.2發(fā)酵培養(yǎng)14 d,考察不同NaNO3添加量(0.01%、0.04%、0.07%、0.10%、0.13%、0.16%)對M.purpureus發(fā)酵產(chǎn)紅曲色素的影響,結(jié)果如圖3所示。

    圖3 NaNO3添加量對紅曲色素含量的影響

    由圖3可知,NaNO3添加量在0.01%~0.04%時,紅曲色素含量呈現(xiàn)上升的趨勢,NaNO3添加量在0.04%~0.16%時,紅曲色素含量逐漸降低,且豆渣中NaNO3添加量為0.04%時紅曲色素含量達(dá)到最大值。NaNO3為紫色紅曲霉的生長繁殖提供氮源,在低濃度NaNO3的添加范圍內(nèi),氮源被紫色紅曲霉充分利用,增加生物量的同時提升了紅曲色素含量。當(dāng)NaNO3添加量達(dá)到飽和后,不再被紫色紅曲霉利用,此時高濃度的NaNO3抑制了紫色紅曲霉的生長代謝[16]。

    2.2.3 KH2PO4添加量的影響

    以豆渣為固態(tài)發(fā)酵基質(zhì),在豆渣加水量15 mL、接種量10%條件下,按1.2.2發(fā)酵培養(yǎng)14 d,考察不同KH2PO4添加量(0.1%、0.2%、0.3%、0.4%、0.5%)對M.purpureus發(fā)酵產(chǎn)紅曲色素的影響,結(jié)果如圖4所示。

    圖4 KH2PO4添加量對紅曲色素含量的影響

    由圖4可知,KH2PO4添加量在0.1%~0.2%內(nèi),紅曲色素含量緩慢上升,在0.2%~0.4%的范圍內(nèi),紅曲色素含量迅速增加,KH2PO4添加量在0.4%~0.5%時,紅曲色素含量呈現(xiàn)下降趨勢,且KH2PO4添加量為0.4%時紅曲色素含量達(dá)到最大值。無機(jī)鹽濃度可以顯著影響菌體細(xì)胞的生長和紅曲色素的形成,因此低濃度的無機(jī)鹽有益于紫色紅曲霉的生理活動,而當(dāng)濃度過高時主要表現(xiàn)為抑制等負(fù)面效應(yīng),該結(jié)果與周建建等[17]結(jié)果趨勢相似。

    2.2.4 MgSO4添加量的影響

    以豆渣為固態(tài)發(fā)酵基質(zhì),在豆渣加水量15 mL、接種量10%條件下,按1.2.2發(fā)酵培養(yǎng)14 d,考察不同的MgSO4添加量(0.1%、0.2%、0.3%、0.4%、0.5%)對M.purpureus發(fā)酵產(chǎn)紅曲色素的影響,結(jié)果如圖5所示。

    圖5 MgSO4添加量對紅曲色素含量的影響

    由圖5可知,MgSO4添加量在0.1%~0.2%內(nèi),紅曲色素含量逐漸上升,在0.2%~0.4%的范圍內(nèi),紅曲色素含量急速下降,在0.4%~0.5%時,紅曲色素含量呈現(xiàn)平穩(wěn)狀態(tài),MgSO4添加量為0.2%時紅曲色素含量達(dá)到最大值,此時MgSO4促進(jìn)了紫色紅曲霉的生理活動和紅曲色素的產(chǎn)生,當(dāng)添加量大于0.2%時,濃度過高則抑制了紫色紅曲霉的生長。

    2.2.5 抗壞血酸添加量的影響

    抗壞血酸能夠在一定程度上提高紅曲色素的穩(wěn)定性,同時還能促進(jìn)紅曲霉的生長和色素的產(chǎn)生[18]。以豆渣為固態(tài)發(fā)酵基質(zhì),在豆渣加水量15 mL、接種量10%條件下,按1.2.2發(fā)酵培養(yǎng)14 d,考察不同的抗壞血酸添加量(0.5%、1%、1.5%、2%、2.5%)對M.purpureus產(chǎn)紅曲色素的影響,結(jié)果如圖6所示。

    圖6 抗壞血酸添加量對紅曲色素含量的影響

    由圖6可知,抗壞血酸添加量在0.5%~1.5%的范圍內(nèi),紅曲色素含量緩慢上升,在1.5%~2%內(nèi),紅曲色素含量急速上升,當(dāng)抗壞血酸添加量由2%逐漸增加到2.5%時,紅曲色素含量呈下降趨勢,且在抗壞血酸添加量為2%時,紅曲色素含量達(dá)到最大值。由于紫色紅曲霉產(chǎn)紅曲色素的最佳條件為中性偏酸,而少量抗壞血酸的添加使發(fā)酵環(huán)境逐漸偏酸性,利于紅曲色素的積累,當(dāng)抗壞血酸添加量超過2%時過酸的發(fā)酵環(huán)境開始抑制紫色紅曲霉的生長[19]。

    2.3 不同發(fā)酵條件對M. purpureus固態(tài)發(fā)酵豆渣產(chǎn)紅曲色素影響的單因素實驗

    2.3.1 基質(zhì)初始含水量的影響

    在豆渣中加入蒸餾水,得到不同初始含水量(30%、40%、50%、60%和70%)的基質(zhì),在接種量10%條件下,按1.2.2發(fā)酵培養(yǎng)14 d,考察初始含水量對發(fā)酵的影響,結(jié)果如圖7所示。

    圖7 基質(zhì)初始含水量對紅曲色素含量的影響

    由圖7可知,當(dāng)初始含水量從30%增加到50%時,紅曲色素含量逐漸上升,當(dāng)初始含水量從50%增加到60%時,紅曲色素含量急速下降,初始含水量從60%增加到70%時,紅曲色素含量緩慢降低后趨于平穩(wěn)。初始含水量在50%時,紅曲色素含量達(dá)到最大值。造成上述現(xiàn)象的主要原因是初始含水量低使得紫色紅曲霉生長受到抑制,到發(fā)酵后期,由于微生物對水分的消耗及蒸發(fā)損失造成物料較干,抑制微生物生長。當(dāng)含水量過高時,減少了基質(zhì)內(nèi)氣體的交換,不利于微生物生長[20]。鄭虹等[7]以大米和玉米的混合物為固態(tài)發(fā)酵基質(zhì),含水量約為57%時紅曲色素含量較高;王金字等[9]以糯米為固態(tài)發(fā)酵基質(zhì),在初始含水量為50%時紅曲色素含量最高;Babitha等[21]以菠蘿蜜種子粉為基質(zhì),50%的含水量條件下產(chǎn)色素效果較好。可以看出,初始含水量在50%左右時,紫色紅曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)紅曲色素效果較好。

    2.3.2 接種量的影響

    接種量的多少會影響到整個發(fā)酵的效果,一般要求適量。通常采用大的接種量可以縮短菌體繁殖達(dá)到高峰的時間,使產(chǎn)物的形成提前到來,并可減少雜菌的生長機(jī)會,但接種量過大也會導(dǎo)致單位體積內(nèi)養(yǎng)料和溶氧不足,干擾菌體繁殖代謝[16]。在豆渣中加入15 mL蒸餾水,設(shè)置不同接種量(2%、4%、6%、8%、10%),按1.2.2發(fā)酵培養(yǎng)14 d,考察接種量對發(fā)酵的影響,結(jié)果如圖8所示。

    圖8 接種量對紅曲色素含量的影響

    由圖8可知,當(dāng)接種量從2%增加到8%時,紅曲色素含量呈現(xiàn)先緩慢上升,后急速上升的趨勢。當(dāng)接種量大于8%時,紅曲色素含量呈現(xiàn)下降趨勢,從而確定豆渣培養(yǎng)基產(chǎn)紅曲色素的最佳接種量為8%。

    2.3.3 發(fā)酵時間的影響

    在豆渣中加入15 mL蒸餾水、接種量10%條件下,按1.2.2分別發(fā)酵培養(yǎng)6、8、10、12、14 d,考察發(fā)酵時間對發(fā)酵的影響,結(jié)果如圖9所示。

    由圖9可知,發(fā)酵時間從6 d逐漸增加到12 d時,紅曲色素含量也隨之增加,且在發(fā)酵時間為12 d時,紅曲色素含量達(dá)到最大值。微生物發(fā)酵都有一個最佳時間,發(fā)酵時間過短,不利于目標(biāo)產(chǎn)物(紅曲色素)的積累,發(fā)酵時間過長,由于營養(yǎng)物質(zhì)的消耗及多種代謝產(chǎn)物的積累導(dǎo)致環(huán)境不利于菌體生長,導(dǎo)致紅曲色素含量下降[22]。

    圖9 發(fā)酵時間對紅曲色素含量的影響

    2.4 正交實驗優(yōu)化

    結(jié)合單因素實驗結(jié)果,固定豆渣初始含水量50%、接種量8%、發(fā)酵時間12 d,以甘油添加量(A)、NaNO3添加量(B)、KH2PO4添加量(C)、MgSO4添加量(D)和抗壞血酸添加量(E)為考察因素,以紅曲色素含量為響應(yīng)值,采用Latin.lnk正交設(shè)計助手設(shè)計L16(45)的五因素四水平正交實驗,正交實驗因素水平見表1,正交實驗設(shè)計及結(jié)果見表2。

    表1 正交實驗因素水平

    表2 正交實驗設(shè)計及結(jié)果

    由表2可知,5個因素對M.purpureus固態(tài)發(fā)酵豆渣產(chǎn)紅曲色素的影響程度大小順序為抗壞血酸添加量>甘油添加量>KH2PO4添加量>NaNO3添加量>MgSO4添加量。固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)紅曲色素的最優(yōu)固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基組合為A2B2C1D2E3,即:甘油6%,NaNO30.04%,KH2PO40.3%,MgSO40.2%,抗壞血酸2.2%。在優(yōu)化的培養(yǎng)基組合下進(jìn)行3次驗證實驗,紅曲色素含量可達(dá)(6.03±0.11)mg/g。

    3 結(jié) 論

    (1)從大米、去皮大豆粉、大豆粉、豆渣和小麥麩皮5種固體基質(zhì)中篩選出廉價的大豆制品加工副產(chǎn)物——豆渣作為適宜生產(chǎn)紅曲色素的固態(tài)發(fā)酵基質(zhì)。

    (2)采用單因素實驗和正交實驗,確定以紫色紅曲霉固態(tài)發(fā)酵豆渣產(chǎn)紅曲色素的優(yōu)化培養(yǎng)基組成為豆渣初始含水量50%,添加甘油6%、NaNO30.04%、KH2PO40.3%、MgSO40.2%、抗壞血酸2.2%;最佳培養(yǎng)條件為控制濕度60%~65%、接種量8%、30℃發(fā)酵12 d。在最佳條件下,發(fā)酵豆渣中紅曲色素含量可達(dá)(6.03±0.11)mg/g。

    (3)以豆渣為主要原料固態(tài)發(fā)酵生產(chǎn)紅曲色素具有良好的可行性和經(jīng)濟(jì)性。一方面經(jīng)紫色紅曲霉發(fā)酵的豆渣可作為提取生產(chǎn)紅曲色素的原料,另一方面富含生物活性物質(zhì)的紅曲豆渣可直接作為功能性生物飼料或紅曲制劑,可顯著提高豆渣的利用度和附加值。

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