劉暢 吳長(zhǎng)景 竇愷 劉志華 何正權(quán) 張福麗 龐麗 宋昊躍 葛紅蓮
摘? ? 要:為探究棘孢木霉CBS 433.97(Trichoderma asperellum CBS 433.97)的活性代謝產(chǎn)物在促進(jìn)植物生長(zhǎng)與抑制病原菌等方面的功能,本研究初步分離了棘孢木霉代謝產(chǎn)物,并分析了其活性成分對(duì)尖孢鐮刀菌MC-1和CS-5的抑菌效果,同時(shí)研究了棘孢木霉代謝產(chǎn)物中的活性成分對(duì)小麥的株高、根長(zhǎng)和發(fā)芽率的影響。用不同的萃取劑萃取棘孢木霉發(fā)酵液中的活性成分,正丁醇萃取相獲得的粗提物對(duì)MC-1與CS-5的抑菌效果最好。進(jìn)一步對(duì)正丁醇萃取相獲得的粗提物進(jìn)行薄層層析,獲得了4個(gè)組分TA1,TA2,TA3和TA4,4個(gè)組分對(duì)MC-1與CS-5均無(wú)明顯抑制作用,但組分TA3在濃度為1 g·L-1時(shí),對(duì)小麥生長(zhǎng)具有明顯的促進(jìn)作用。由此可見(jiàn),棘孢木霉CBS 433.97代謝產(chǎn)物中具有能夠抑制病原菌的生長(zhǎng)、促進(jìn)植物生長(zhǎng)發(fā)育的活性成分,具有較好的開(kāi)發(fā)潛力。
關(guān)鍵詞:棘孢木霉;抑菌;促生長(zhǎng);活性代謝產(chǎn)物;初步分離
中圖分類(lèi)號(hào):S476? ? ? ? ? ? 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A? ? ? ? ?DOI 編碼:10.3969/j.issn.1006-6500.2019.07.001
Abstract: To explore the functions of active metabolites of Trichoderma asperellum CBS 433.97 on promoting plants growth and inhibitting phytopathogen, the metabolites were separated preliminarily, and the inhibitions of active components on Fusarium oxysporum MC-1 and Fusarium oxysporum CS-5 , as well as the effects of the active components from T. asperellum CBS 433.97 metabolites on plant height, root length and germination rate of wheat were analyzed. The active components of the fermentation broth from T. asperellum CBS 433.97 were extracted with different ectracting agent, the crude extracts obtained by the n-butanol extraction phase had the best inhibitory effect on MC-1 and CS-5. The crude extracts from the n-butanol phase were further extracted by TLC, and four components, TA1, TA2, TA3 and TA4, were obtained. The four components had no significant inhibitory effect on MC-1 and CS-5. However, component TA3 of 1 g·L-1 significantly promoted germination and growth of wheat. The results showed that the metabolites of T. asperellum CBS 433.97 possessed active components that could inhibit phytopathogen, as well as promote growth and development of plants. Therefore, this Trichoderma strain has good development potential.
Key words: Trichoderma asperellum; inhibition; growth promotion; active metabolites; prefractionation
植物根際促生微生物是植物生長(zhǎng)體系中不可缺少的一環(huán),這些微生物能夠促進(jìn)植物生長(zhǎng)及營(yíng)養(yǎng)吸收,甚至能保護(hù)植物免受病蟲(chóng)害侵襲[1-2]。由于世界人口不斷增加,以及城市發(fā)展和氣候變化等因素導(dǎo)致了可耕地不斷縮減,實(shí)際生產(chǎn)中,人們?cè)谛枰嗉Z食的同時(shí)還要減少資源投入[3]。而微生物資源的利用在有效解決當(dāng)前這一問(wèn)題的同時(shí),有利于土壤的改良[4]。
近年來(lái),真菌代謝產(chǎn)物逐漸成為了生物藥劑與農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中生物農(nóng)藥和肥料研發(fā)的重要來(lái)源[5-7]。作為一種非致病性腐生真菌,木霉菌(Trichoderma spp.)是世界上著名的生防因子,可以寄生于植物根系,促進(jìn)根系生長(zhǎng)發(fā)育,提高植物對(duì)病蟲(chóng)害的抗性,目前為止代謝產(chǎn)物已廣泛應(yīng)用于植物的生物防治中[8-9]。相關(guān)研究表明,木霉菌代謝產(chǎn)物具有抵抗植物病原菌、調(diào)節(jié)植物生長(zhǎng)、促進(jìn)植物根系發(fā)育與細(xì)胞活力等功能[10-12]。隨著木霉菌次級(jí)代謝產(chǎn)物在植物保護(hù)與生物防治中的潛力被挖掘出來(lái),對(duì)未來(lái)農(nóng)業(yè)科技發(fā)展將具有重大意義[13]。但與鏈霉菌等真菌相比,木霉菌代謝產(chǎn)物研究及產(chǎn)品開(kāi)發(fā)還相對(duì)較少。因此,本研究預(yù)對(duì)棘孢木霉CBS 433.97代謝產(chǎn)物進(jìn)行初步分離,并對(duì)這些代謝產(chǎn)物的抑菌活性及促植物生長(zhǎng)功能進(jìn)行了分析,以期為木霉菌來(lái)源的生物農(nóng)藥等產(chǎn)品開(kāi)發(fā)提供理論依據(jù)。
1 材料和方法
1.1 材料與試劑
供試菌株:木霉菌株為棘孢木霉CBS 433.97(Trichoderma asperellum CBS 433.97)購(gòu)于中國(guó)農(nóng)業(yè)微生物保藏中心;尖孢鐮刀菌菌株Fusarium oxysporum MC-1(苦瓜枯萎病病原菌)與F. oxysporum CS-5(黃瓜枯萎病病原菌),均由本試驗(yàn)室保藏;小麥(Triticum aestivum)為西農(nóng)979。
主要試劑: G-254硅膠粉(化學(xué)純),購(gòu)于青島海洋化工有限公司;羧甲基纖維素鈉(分析純),購(gòu)于天津市恒興化學(xué)試劑制造有限公司。其他試劑均為分析純。
棘孢木霉液體發(fā)酵罐發(fā)酵培養(yǎng)基:玉米粉40 g,MgSO4·7H2O 0.4 g,ZnSO4 0.001 g,MnSO4 0.001 g,NH4NO3 0.8 g,NaCl 0.7 g,蒸餾水定容至1 000 mL。1×105 Pa滅菌20 min。
PDA固體培養(yǎng)基:土豆200 g,葡萄糖20 g,瓊脂20 g,蒸餾水定容至1 000 mL。1×105 Pa滅菌20 min。
PDA液體培養(yǎng)基:土豆200 g,葡萄糖20 g,蒸餾水定容至1 000 mL。1×105 Pa滅菌20 min。
1.2 方 法
1.2.1 棘孢木霉與其代謝產(chǎn)物的抑菌性分析試驗(yàn) (1)平板對(duì)峙試驗(yàn)。用直徑為9 mm的打孔器分別截取培養(yǎng)3 d的棘孢木霉和培養(yǎng)5 d的病原菌菌塊,兩菌塊分別放置在PDA固體培養(yǎng)基的一端,二者相距4 cm,每組3個(gè)重復(fù)。接種完成后,28 ℃溫度條件下培養(yǎng)。根據(jù)棘孢木霉與2種病原菌在平板中的對(duì)峙情況計(jì)算棘孢木霉對(duì)病原菌MC-1和CS-5的抑菌率,計(jì)算公式如下。
抑菌率=×100%
(2)棘孢木霉發(fā)酵液制備。將在PDA培養(yǎng)基上培養(yǎng)3 d的棘孢木霉菌菌餅接種于PDA液體培養(yǎng)基中,28 ℃溫度條件下、180 r·min-1震蕩培養(yǎng)7 d。將棘孢木霉發(fā)酵液轉(zhuǎn)接到容量為120 L的液體菌種發(fā)酵罐內(nèi),液體菌種發(fā)酵罐內(nèi)的培養(yǎng)基為棘孢木霉液體發(fā)酵培養(yǎng)基,發(fā)酵20 d。發(fā)酵好的棘孢木霉發(fā)酵液用于代謝產(chǎn)物抑菌活性測(cè)定。
(3)棘孢木霉發(fā)酵液抑菌活性測(cè)定。采用含藥培養(yǎng)基平板法[14],按照棘孢木霉代謝產(chǎn)物與PDA固體培養(yǎng)基體積比為1∶10、1∶50、1∶100的比例分別加到PDA固體培養(yǎng)基中并混均,對(duì)照為PDA固體培養(yǎng)基。用打孔器打制MC-1與CS-5的菌餅分別接種于含棘孢木霉代謝產(chǎn)物的培養(yǎng)基中心,將平板倒置于28 ℃恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),每組3個(gè)重復(fù)。培養(yǎng)4 d后,測(cè)量各組實(shí)驗(yàn)菌落直徑大小,計(jì)算棘孢木霉代謝產(chǎn)物對(duì)MC-1和CS-5的抑菌率。
抑菌率=×100%
1.2.2 棘孢木霉代謝產(chǎn)物的分離 (1)最佳萃取劑的確定。在棘孢木霉代謝產(chǎn)物中分別加入等體積的正丁醇、乙酸乙酯和石油醚進(jìn)行萃取,萃取相用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀進(jìn)行減壓濃縮蒸干,然后用甲醇溶解,獲得粗提物。將粗提物的濃度調(diào)整至1 g·L-1,作為母液備用。將粗提物母液分別稀釋至濃度為0.1,0.01和0.001 g·L-1溶液,4 ℃保存?zhèn)溆茫瑢?duì)照為甲醇。將病菌MC-1和CS-5用打孔器打成菌餅接種于PDA固體平板中央,將各濃度的粗提物與甲醇分別吸取100 μL滴加到接種于平板上的菌餅上,每組3個(gè)重復(fù),放置28 ℃培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)3 d,觀察現(xiàn)象,測(cè)量菌落直徑,用于計(jì)算粗提物對(duì)病原菌的抑菌率,確定最佳萃取溶劑。
(2)薄層層析。應(yīng)用張量[15]的方法制備硅膠板。將待測(cè)的粗提物樣品用毛細(xì)管(直徑0.5 mm)點(diǎn)樣于活化好的硅膠板上,分別用氯仿和甲醇的不同比例的混合溶劑作為展開(kāi)劑進(jìn)行展開(kāi),在紫外燈下或用碘蒸氣進(jìn)行顯色觀察來(lái)確定最佳的展開(kāi)劑。
(3)收集組分。將薄層層析獲得的各組分從硅膠板上刮下,溶于甲醇中。在超凈工作臺(tái)內(nèi)將有機(jī)溶劑吹干,稱各組分質(zhì)量,用定量無(wú)菌水溶解各組分置于EP管內(nèi),4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.3 薄層層析獲得的各組分功能分析? ? (1)抑菌功能分析。將在PDA液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)2 d的MC-1和CS-5菌液吸取1 mL與100 mL PDA固體培養(yǎng)基混均倒板,將無(wú)菌濾紙片均勻放置于含MC-1和CS-5菌液培養(yǎng)基上,然后分別吸取各組分溶液與無(wú)菌水各100 μL滴加到濾紙片上,每組3個(gè)重復(fù),放置28 ℃培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)3 d,觀察抑菌圈的大小,計(jì)算各組分對(duì)病原菌的抑菌率。
(2)促生長(zhǎng)功能分析。將上述的各組分分別用無(wú)菌蒸餾水稀釋成濃度為1 g·L-1,100 mg·L-1,10 mg·L-1,
1 mg·L-1,100 μg·L-1,10 μg·L-1,1 μg·L-1和100 ng·L-1的溶液。小麥種子(西農(nóng)979)用75%的乙醇消毒2 min,無(wú)菌水洗6遍,再用2%的次氯酸鈉消毒2 min,無(wú)菌水洗6遍。用上述不同濃度的各組分溶液分別浸泡小麥種子30 min。同時(shí),用不同濃度的IAA(1 g·L-1,100 mg·L-1,10 mg·L-1,1 mg·L-1,100 μg·L-1,
10 μg·L-1,1 μg·L-1和100 ng·L-1)和無(wú)菌水作為對(duì)照。無(wú)菌濾紙平鋪到培養(yǎng)皿中,然后分別加入7 mL相應(yīng)的各組分溶液,最后將上述處理過(guò)的小麥種子接種到濾紙上,每皿10顆,每組3個(gè)重復(fù)。測(cè)定小麥種子在24 h和48 h的發(fā)芽率,生長(zhǎng)第15天時(shí)測(cè)定小麥幼苗的根長(zhǎng)及株高。試驗(yàn)結(jié)果表明(數(shù)據(jù)未在本文中列出),IAA在濃度為100 μg·L-1時(shí),小麥種子發(fā)芽率最高,24 h和48 h時(shí)的發(fā)芽率分別為75%和90%。培養(yǎng)15 d后,IAA促進(jìn)小麥種子根部生長(zhǎng)的最適濃度為100 μg·L-1;促進(jìn)小麥幼苗株高的最適濃度為10 μg·L-1。IAA處理小麥根長(zhǎng)、株高和發(fā)芽率的最佳濃度分別作為此次試驗(yàn)的陽(yáng)性對(duì)照;無(wú)菌水處理組作為本次試驗(yàn)的陰性對(duì)照。
1.3 數(shù)據(jù)分析
利用Microsoft Excel 2010 和SPSS 16.0 對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行計(jì)算與方差分析。
2 結(jié)果與分析
2.1 棘孢木霉與其代謝產(chǎn)物的抑菌活性分析
采用平板對(duì)峙法分析了棘孢木霉對(duì)植物病原尖孢鐮刀菌MC-1和CS-5的拮抗作用。結(jié)果顯示,棘孢木霉對(duì)2種病原菌均具有不同程度的拮抗作用,其中對(duì)MC-1的抑菌率為36.4%,對(duì)CS-5的抑菌率為62.0%(圖1)。采用含藥培養(yǎng)基法分析棘孢木霉代謝產(chǎn)物對(duì)MC-1和CS-5抑制效果。結(jié)果顯示,在棘孢木霉發(fā)酵液與PDA比例為1∶10時(shí)對(duì)MC-1的抑菌率為13.04%,抑菌效果顯著高于其他處理;在棘孢木霉發(fā)酵液與PDA比例為1∶10時(shí)對(duì)CS-5的抑菌率為18.75%,抑菌效果顯著高于其他處理(圖2)。
2.2 棘孢木霉代謝產(chǎn)物的分離
2.2.1 最佳萃取劑的確定 經(jīng)過(guò)萃取,乙酸乙酯和正丁醇均萃取出活性物質(zhì),但是石油醚沒(méi)有萃取出活性物質(zhì)(結(jié)果未列出),故本研究只列出了乙酸乙酯萃取相與正丁醇萃取相對(duì)CS-5和MC-1的抑菌試驗(yàn)。不同濃度的各萃取相粗提物對(duì)CS-5和MC-1的抑菌效果見(jiàn)圖3。從圖3中可以看出1 g·L-1的正丁醇萃取相對(duì)CS-5和MC-1的抑菌效果均為最好,對(duì)MC-1的抑菌率達(dá)到57.14%,對(duì)CS-5的抑菌率達(dá)到50.45%。故在接下來(lái)對(duì)棘孢木霉代謝物進(jìn)行分離時(shí),采用正丁醇作為萃取相進(jìn)行大量萃取。
2.2.2 展開(kāi)劑的選擇 本試驗(yàn)探索的展開(kāi)劑比例有以下幾種,氯仿∶甲醇=9∶1,10∶1,8∶2,7∶3和6∶4,待展開(kāi)完畢后,將硅膠板晾干,用碘蒸氣進(jìn)行顯色,展開(kāi)劑比例為氯仿∶甲醇=9∶1的展開(kāi)效果最好(圖4),得到四條帶,自下而上分別標(biāo)記為T(mén)A1,TA2,TA3,TA4。2.3 薄層層析獲得的各組分功能分析
2.3.1 抑菌作用 對(duì)TA1,TA2,TA3和TA4 4個(gè)組分的抑菌活性分別進(jìn)行了分析,由圖5可知,分離得到的4個(gè)組分均無(wú)明顯抑菌效果(圖5)。2.2.1部分研究表明該菌株代謝物具有抑制病原菌的潛能,因此此部分的結(jié)論與2.2.1部分相矛盾,原因可能是抑菌活性物質(zhì)在TA1,TA2,TA3和TA4 4個(gè)組分之外。
2.3.2 TA1,TA2,TA3和TA4 4個(gè)組分的促生長(zhǎng)作用分析 小麥種子用各組分不同濃度的溶液培養(yǎng)15 d后根長(zhǎng)與株高見(jiàn)圖6和圖7。由圖6可知,組分TA1在濃度為1 g·L-1時(shí),小麥種子根生長(zhǎng)最快,與IAA相比根長(zhǎng)增長(zhǎng)了25.94%,與無(wú)菌水相比根長(zhǎng)增長(zhǎng)了63.67%;組分TA2在濃度為10 μg·L-1時(shí),小麥種子根部生長(zhǎng)最快,與IAA相比根長(zhǎng)增加了0%,與無(wú)菌水相比根長(zhǎng)增加了29.96%;組分TA3在濃度為1 g·L-1時(shí),小麥種子根部生長(zhǎng)最快,與IAA相比根長(zhǎng)增加了36.31%,與無(wú)菌水相比根長(zhǎng)增加了77.15%;組分TA4在濃度為10 mg·L-1時(shí),小麥種子根部生長(zhǎng)最快,與IAA相比根長(zhǎng)增加了1.73%,與無(wú)菌水相比根長(zhǎng)增加了32.21%。
由圖7可知,組分TA1在濃度為1 g·L-1時(shí),小麥幼苗生長(zhǎng)最好,與IAA相比無(wú)明顯的促進(jìn)幼苗生長(zhǎng)的作用,與無(wú)菌水相比株高增長(zhǎng)了15.45%;組分TA2在濃度為100 mg·L-1時(shí),小麥幼苗生長(zhǎng)最好,與IAA相比無(wú)促進(jìn)幼苗生長(zhǎng)作用,與無(wú)菌水相比株高增長(zhǎng)了8.89%;組分TA3在濃度為1 g·L-1時(shí),小麥幼苗生長(zhǎng)最好,與IAA相比株高增長(zhǎng)了5.26%,與無(wú)菌水相比株高增長(zhǎng)了31.09%;組分TA4在濃度為100 μg·L-1時(shí),小麥幼苗生長(zhǎng)最好,與IAA相比無(wú)促進(jìn)幼苗生長(zhǎng)作用,與無(wú)菌水相比根部長(zhǎng)度增長(zhǎng)了8.48%。
小麥種子用各組分不同濃度的溶液培養(yǎng)的發(fā)芽率見(jiàn)圖8和圖9。種子培養(yǎng)24 h時(shí),無(wú)菌水處理的小麥種子發(fā)芽率為65%。由圖8可知,TA1在濃度為1 μg·L-1時(shí)發(fā)芽率為75%,發(fā)芽率最高,與IAA相比發(fā)芽率相同,與無(wú)菌水相比提高了10%;TA2在濃度為1 g·L-1,100 mg·L-1時(shí)發(fā)芽率為65%,發(fā)芽率最高,與IAA相比發(fā)芽率較低,與無(wú)菌水發(fā)芽率相同;TA3在濃度為1 μg·L-1 時(shí)發(fā)芽率為80%,發(fā)芽率最高,與IAA相比發(fā)芽率提高5%,與無(wú)菌水相比發(fā)芽率提高15%,TA4在濃度為1 mg·L-1,1 μg·L-1時(shí),發(fā)芽率最高,小麥種子發(fā)芽率達(dá)到80%,與IAA相比發(fā)芽率提高5%,與無(wú)菌水相比發(fā)芽率提高15%。
種子培養(yǎng)48 h時(shí),無(wú)菌水處理的小麥種子發(fā)芽率為65%。由圖9可知,TA1在濃度為1μg·L-1時(shí)發(fā)芽率為85%,發(fā)芽率最高,與IAA相比發(fā)芽率較低,與無(wú)菌水相比提高了20%;TA2在濃度為1 μg·L-1時(shí)發(fā)芽率為75%,發(fā)芽率最高,與IAA相比發(fā)芽率較低,與無(wú)菌水發(fā)芽率相同提高了10%;TA3在濃度為1 μg·L-1 時(shí)發(fā)芽率為95%,發(fā)芽率最高,與IAA相比發(fā)芽率提高5%,與無(wú)菌水相比發(fā)芽率提高30%,TA4在濃度為100 mg·L-1時(shí),發(fā)芽率最高,與IAA的發(fā)芽率相同,與無(wú)菌水相比發(fā)芽率提高25%。
3 結(jié)論與討論
本研究初步確定了棘孢木霉代謝產(chǎn)物中具有抑制尖孢鐮刀菌MC-1與CS-5的活性物質(zhì),但本試驗(yàn)中獲得的4個(gè)組分對(duì)兩種病原菌均無(wú)明顯抑制作用,表明現(xiàn)階段暫時(shí)未追蹤到能夠抑制MC-1和CS-5生長(zhǎng)的活性物質(zhì),接下來(lái)的工作中還將繼續(xù)進(jìn)行追蹤,并采用更多的病原菌進(jìn)行物質(zhì)的抑菌活性分析。
雖然本研究未得到對(duì)病原菌MC-1和CS-5具有抑菌活性的物質(zhì),但在本研究中初步獲得的4個(gè)組分TA1,TA2,TA3,TA4均對(duì)小麥幼苗具有不同程度的促生長(zhǎng)作用,其中TA3在濃度為1 g·L-1時(shí)的促生長(zhǎng)作用最為顯著,對(duì)小麥根部生長(zhǎng)的促進(jìn)作用與IAA相比提高了36.31%,與無(wú)菌水相比提高了77.15%;對(duì)小麥幼苗株高的促生長(zhǎng)作用與IAA相比增加了5.26%,與無(wú)菌水相比提高了31.09%;培養(yǎng)第48 h后,1 μg·L-1的TA3處理后小麥種子發(fā)芽率達(dá)到了95%,與IAA相比提高了5%,與無(wú)菌水相比提高了30%。表明組分TA3能夠促進(jìn)小麥幼苗生長(zhǎng)。
本研究只采用薄層層析和一種展開(kāi)劑比例分離得到了4個(gè)組分,并且僅分析了棘孢木霉對(duì)尖孢鐮刀菌的抑制作用以及對(duì)小麥根長(zhǎng)、株高和發(fā)芽率的影響。后續(xù)研究將進(jìn)一步應(yīng)用高效液相色譜分析、質(zhì)譜分析和盆栽試驗(yàn)等對(duì)棘孢木霉活性代謝產(chǎn)物進(jìn)行分離和功能分析,為棘孢木霉CBS 433.97的進(jìn)一步應(yīng)用奠定基礎(chǔ)和提供理論依據(jù)。
參考文獻(xiàn):
[1]NKMAKCI R, ERAT M, ERDOGAN, et al. The influence of plant growth promoting rhizobacteria on growth and enzyme activities in wheat and spinach plants[J]. Journal of plant nutrition and soil science, 2007, 170(2): 288-295.
[2]El-HASAN A, SCHONE J, HOGLINGER B, et al. Assessment of the antifungal activity of selected biocontrol agents and their secondary metabolites against Fusarium graminearum[J]. European journal of plant pathology, 2018, 150(1): 91-103.
[3]胡云平. 微生物農(nóng)業(yè)產(chǎn)業(yè)技術(shù)研究進(jìn)展及發(fā)展前景[J]. 河南農(nóng)業(yè), 2018, 467(15): 49-50.
[4]趙嘉寧. 農(nóng)業(yè)微生物資源在國(guó)家經(jīng)濟(jì)及生態(tài)環(huán)境建設(shè)中的重要作用[J]. 江西農(nóng)業(yè), 2018(12):87.
[5]FIEDLER H P, BRUNTNER C, BULL A T, et al. Marine actinomycetes as a source of novel secondary metabolites[J]. Antonie van leeuwenhoek, 2005, 87(1): 37-42.
[6]郝澤婷, 郝曉慧, 閻婧, 等. 淡紫擬青霉次級(jí)代謝產(chǎn)物的研究進(jìn)展[J]. 生物技術(shù)通報(bào), 2018, 34(10): 11-17.
[7]HWANG K S, KIM H U, CHARUANTI P, et al. Systems biology and biotechnology of Streptomyces species for the production of secondary metabolites[J]. Biotechnology advances, 2014, 32(2): 255-268.
[8]VINALE F, SIVASITHAMPARAM K, GHISALBERTI E L, et al. Trichoderma secondary metabolites active on plants and fungal pathogens[J]. The open mycology journal , 2014, 8(1): 127-139.
[9]CONTRERAS-CORNEJO H A, MACIAS-RODRIGUEZ L, DEL-VAL E, et al. Ecological functions of Trichoderma spp. and their secondary metabolites in the rhizosphere-interactions with plants[J]. FEMS microbiology ecology, 2016, 92(4): 36.
[10]JOSHI D, SINGH P, SINGH A K, et al. Antifungal potential of metabolites from Trichoderma sp. against Colletotrichum falcatum Went causing red rot of sugarcanes[J]. Sugar tech, 2016, 18(5): 529-536.
[11]CHEN S C, ZHAO H J, WANG Z H, et al. Trichoderma harzianum-induced resistance against Fusarium oxysporum involves regulation of nuclear DNA content, cell viability and cell cycle-related genes expression in cucumber roots[J]. European journal of plant pathology, 2016, 147(1): 43-53.
[12]VINALE F, FLEMATTI G, SIVASITHAMPARAM K, et al. Harzianic acid, an antifungal and plant growth promoting metabolite from Trichoderma[J]. Journal of natural products, 2009, 72 (11): 2032-2035.
[13]KESWANI C, MISHRA S, SARMA B K, et al. Unraveling the efficient applications of secondary metabolites of various Trichoderma spp[J]. Applied microbiology and biotechnology, 2014, 98(2): 533-544.
[14]崔振玲, 王潔, 胡忠義. 液體培養(yǎng)基比色法快速檢測(cè)結(jié)核分枝桿菌耐藥性[J]. 中國(guó)抗生素雜志, 2006, 31(9): 555-558.
[15]張量. 防治辣椒疫病的木霉拮抗化合物篩選及其生防制劑制備[D]. 杭州: 浙江大學(xué), 2015.