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    花花柴脂肪酸合成相關(guān)基因KcFabZ的克隆及分析

    2019-08-05 01:41:56王彥芹
    關(guān)鍵詞:花花結(jié)構(gòu)域克隆

    王 磊 王彥芹

    (塔里木大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,新疆阿拉爾843300)

    脂肪酸作為生物體基本組成成分之一,不僅是細(xì)胞膜脂的主要成分,還是重要的能源物質(zhì)。植物脂肪酸生物合成的過程復(fù)雜,需要多種酶共同協(xié)調(diào)作用來完成,植物脂肪酸合成酶FAS屬于Ⅱ脂肪酸合成酶系[1],由β-酮脂酰-ACP合酶(FabH)、β-酮脂酰-ACP還原酶(FabG)、β-羥脂酰-ACP脫水酶(FabZ)、烯脂酰-ACP還原酶(FabI)構(gòu)成。FabZ是植物脂肪酸生物合成途徑中碳鏈延伸循環(huán)步驟的主要脫水酶[2],能有效地催化短鏈β-羥基?;?ACP和長鏈飽和及不飽和β-羥基?;?ACP脫水,對于底物的催化活性隨著鏈的增長,催化活性降低,催化活性與鏈長成反比[3];最早在幽門螺桿菌(Helicobacter pylori)菌株SS1(HpfabZ)中克隆了fabZ基因,并通過插入擴(kuò)增的fabZ片段產(chǎn)生重組表達(dá)質(zhì)粒,純化后的HpFabZ在40℃下顯示出最高的酶活性,在90℃時,HpFabZ仍然表現(xiàn)出近50%的活性,推測HpFabZ六聚體的形成使與其熱穩(wěn)定性相關(guān)[4];劉麗等[5]克隆了陸地棉(Gossypium hirsutum Linn)脂肪酸碳鏈延長酶β-酮脂酰-ACP還原酶(FabG)并構(gòu)建了超表達(dá)載體轉(zhuǎn)化棉花,對其抗寒性進(jìn)行研究,結(jié)果表明,轉(zhuǎn)基因株系的相對電導(dǎo)率和脯氨酸含量積累明顯高于對照,而丙二醛含量低于對照,在不同脅迫時間與對照表現(xiàn)出顯著或極顯著差異,過表達(dá)的轉(zhuǎn)基因株系的抗寒性有所提高。溫度脅迫已是全球植物環(huán)境限制因素之一,也是造成植物細(xì)胞損傷的重要原因之一[6]。高溫脅迫會導(dǎo)致植物葉片和幼莖的焦化、葉片脫落和衰老,更嚴(yán)重的還會引起根系生長受到抑制、果實(shí)發(fā)育停止、脫落等現(xiàn)象[7],甚至造成植株死亡[8]。在植物生長和繁殖期間,溫度的極端變化會破壞適當(dāng)生長所需的分子間相互作用,尤其對夏季開花植物,高溫還會導(dǎo)致植物散粉受阻、無法受精等,從而影響種子發(fā)育和結(jié)實(shí)[9]。

    花花柴(Karelinia capsia)屬菊科(Asteraceae)、花花柴屬(Karelinia),多年生草本植物,廣泛生長在我國新疆、甘肅、青海等地,在新疆南疆沙漠區(qū)廣泛分布?;ɑú袢~片肉質(zhì)化[10],根系龐大,枝葉節(jié)點(diǎn)可再生,對環(huán)境有極強(qiáng)的適應(yīng)性,具有廣譜抗逆性[11]?;ɑú裼酌缭诟邷?0℃處理后,其葉片的相對電導(dǎo)率和MDA含量隨著脅迫時間延長呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢,保護(hù)酶系統(tǒng)的活性也隨著處理時間的延長而逐漸升高[12],但花花柴對高溫的響應(yīng)機(jī)制尚不明確?;诒緦?shí)驗(yàn)室前期對花花柴高溫處理下的轉(zhuǎn)錄組測序結(jié)果的研究,發(fā)現(xiàn)脂肪酸生物合成途徑FabZ基因差異表達(dá)。本研究通過PCR技術(shù)克隆了花花柴的FabZ基因,并分析在高溫處理下的基因表達(dá)模式,將有助于進(jìn)一步探索FabZ基因的調(diào)控作用,以及深入理解花花柴的抗逆機(jī)理。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    實(shí)驗(yàn)材料來源于塔克拉瑪干沙漠,鑒定人:塔里木大學(xué)植物學(xué)教師張玲。

    選取飽滿的花花柴種子種于營養(yǎng)土:蛭石(2:1)的花盆中,在25℃、相對濕度50%,光周期為16 h光照/8 h黑暗條件下生長,待長至18~20片葉片時轉(zhuǎn)入恒溫培養(yǎng)箱中,分別在40 ℃高溫處理0 h、0.5 h、2 h、4 h、8 h、16 h、24 h時取樣,于-80 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

    植物總RNA提取試劑盒TransZol Plant購自北京全式金科技有限公司;第一鏈合成試劑盒Prime-Script RT reagent Kit with gDNA Eraser(Perfect Real Time)購自TAKARA公司。引物合成及常規(guī)測序由北京六合華大基因科技股份有限公司完成。

    1.2 方法

    1.2.1 RNA提取及cDNA合成

    利用TransZol Plant(全式金)試劑盒提取樣品葉片總RNA,并用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測RNA的完整性,利用紫外分光光度計(jì)檢測RNA的質(zhì)量和濃度,反轉(zhuǎn)錄參照PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser(Perfect Real Time)(TAKARA)試劑盒,熒光定量PCR參照Bestar SybrGreen qPCR Mastermix(DBI)試劑盒。

    1.2.3 花花柴FabZ基因的克隆

    根據(jù)花花柴轉(zhuǎn)錄組測序結(jié)果中功能注釋為FabZ的序列設(shè)計(jì)引物(見表1),以0 h處理花花柴cDNA為模板,利用RT-PCR法進(jìn)行基因克隆。反應(yīng)體系采用Super Mix(恒朝)取1 μLcDNA反應(yīng)液作為模板,PCR反應(yīng)程序如下:94 ℃ 4 min,94 ℃ 30 s,58 ℃ 30 s,72℃ 1 min,72℃ 8 min,30 cycle。膠回收參照(全式金)連接載體pMD19-T(TAKARA),轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α感受態(tài),藍(lán)白斑篩選后,挑取單菌落進(jìn)行擴(kuò)大培養(yǎng),對PCR檢測為陽性的克隆送樣由廣州艾基生物技術(shù)有限公司進(jìn)行測序。

    1.2.4 花花柴FabZ蛋白質(zhì)的生物信息學(xué)分析

    基因編碼蛋白的生物信息學(xué)分析,利用MEGA6.0構(gòu)建基因的系統(tǒng)進(jìn)化樹,分析其近緣物種件的同源性,獲得相關(guān)的進(jìn)化信息;運(yùn)用clustal X多序列比對軟件進(jìn)行比對;借助在線分析軟件ProtParam(http://web.expasy.rog/protparam/)對基因編碼蛋白進(jìn)行理化性質(zhì)分析;利用TMred(http://ch.embnet.org/software/TMPRED_form/htm)和 ProtScale工具(http://web.expasy.org)分析基因的跨膜區(qū)域及疏水結(jié)構(gòu)域;通過NCBI的CDD(Conserved domain database)數(shù)據(jù)庫對基因的功能結(jié)構(gòu)域進(jìn)行分析鑒定;登錄在線軟件SOPMA對基因的二級結(jié)構(gòu)進(jìn)行預(yù)測;利用在線分析軟件Phyre2(http://www.sbg.bio.ic.ac.uk/phyre2/html/page)和SWISS-MODEL進(jìn)行基因的三級結(jié)構(gòu)分析并進(jìn)行建模;利用MEME在線分析軟件對基因的Motif進(jìn)行預(yù)測,利用Cell-PLoc 2.0進(jìn)行亞細(xì)胞定位。

    1.2.5 FabZ表達(dá)模式分析

    利用Bestar SybrGreen qPCR Mastermix(DBI)試劑盒,根據(jù)操作指南操作配置,以處理0 h、0.5 h、2 h、4 h、8 h、16 h、24 h 處理的花花柴cDNA為模板,PCR反應(yīng)和熒光信號檢測在(伯樂CFX96)熒光定量PCR儀上進(jìn)行,程序:95 ℃ 5 min,95 ℃ 10 s,60 ℃ 30 s,72℃30 s,30 cycle,每個樣設(shè)置3個平行,重復(fù)2次試驗(yàn),以18s為內(nèi)參基因?qū)δ康幕蜻M(jìn)行定量分析,引物參照(表1)。

    表1 引物序列

    2 結(jié)果與分析

    2.1 花花柴FabZ基因克隆及序列分析

    利用設(shè)計(jì)的FabZ引物,以花花柴的全長cDNA為模板,擴(kuò)增基因長度為699 bp的序列,包括完整的CDS,編碼232個氨基酸(圖1),將基因命名為KcFabZ。在對KcFabZ的開放閱讀框理化分析中發(fā)現(xiàn),KcFabZ的正電荷殘基數(shù)20,負(fù)電荷殘基數(shù)23,理論pI為9.00,該蛋白呈堿性,其分子量為25 474.65 D,總平均親水值為0.139,脂質(zhì)指數(shù)為89.87。

    圖1 KcFabZ基因的全長序列以及翻譯出的氨基酸序列

    2.2 FabZ蛋白質(zhì)生物信息學(xué)分析

    對KcFabZ蛋白做進(jìn)一步分析。根據(jù)對KcFabZ基因編碼蛋白進(jìn)行跨膜區(qū)域和疏水性分析可知,Kc-FabZ基因編碼蛋白不存在跨膜區(qū)域。利用SWISS軟件對該蛋白質(zhì)進(jìn)行二級結(jié)構(gòu)預(yù)測,結(jié)果顯示,KcFabZ蛋白主要以β折疊(25.86%)、無規(guī)則卷曲(50.00%)為主,占75.86%。通過Phyre2軟件和SWISS-Modle對KcFabZ蛋白3D結(jié)構(gòu)進(jìn)行預(yù)測 (圖2a、圖2b),KcFabZ蛋白在結(jié)構(gòu)上具有典型的α+β‘hot_dog'折疊模式。在對各物種FabZ基因100條序列的Motif分析中可以看出,KcFabZ蛋白在大部分氨基酸位都高度保守(圖2c)。

    圖2 KcFabZ保守結(jié)構(gòu)域3D結(jié)構(gòu)和Motif注:aKcFabZ單體結(jié)構(gòu)圖;bKcFabZ六聚體結(jié)構(gòu)圖;cKcFabZMotif

    用MEGA6等多序列比對軟件對花花柴及一些其他物種的FabZ基因編碼蛋白序列進(jìn)行比對(圖4a),并構(gòu)建進(jìn)化樹(圖3),KcFabZ基因進(jìn)化樹分析結(jié)果顯示,花花柴與萵苣親緣關(guān)系較近。利用NCBICDD分析基因蛋白質(zhì)的保守結(jié)構(gòu)域,KcFabZ基因具有典型的α+β‘hot_dog'折疊結(jié)構(gòu),為表現(xiàn)為hot_dog超家族功能基因,有催化活性、代謝等功能(圖4b),KcFabZ基因亞細(xì)胞定位在葉綠體中。

    圖3 KcFabZ與其他植物同源氨基酸的系統(tǒng)進(jìn)化樹

    圖4 KcFabZ的保守結(jié)構(gòu)域和功能域分析注:aKcFabZ保守結(jié)構(gòu)域;bKcFabZ功能域

    2.3 熒光定量PCR分析

    熒光定量PCR分析表明,KcFabZ在高溫脅迫的各個時間段均有表達(dá)(圖5),KcFabZ在高溫脅迫下處于上升趨勢,在8 h時表達(dá)量約是對照的20倍,在16 h后,表達(dá)量下降。說明高溫脅迫能夠誘導(dǎo)KcFabZ基因的表達(dá)。

    圖5 KcFabZ基因在不同時間高溫處理下葉片中的表達(dá)分析

    3 結(jié)論與討論

    本研究首次在花花柴中克隆出KcFabZ基因,通過序列分析發(fā)現(xiàn)該基因具有典型FabZ功能結(jié)構(gòu)域和α+β‘hot_dog'折疊,為六聚體,通過Motif分析發(fā)現(xiàn)KcFabZ在大部分氨基酸都具有高度保守,這在酶結(jié)構(gòu)穩(wěn)定化中起重要作用,在幽門螺桿菌中用圓二色光譜測量的酶表征和熱誘導(dǎo)解折疊證明了HpFabZ在高溫(90℃)下非常穩(wěn)定,源于HpFabZ六聚體之間的強(qiáng)H-鍵和疏水相互作用,更好地闡明了HpFabZ結(jié)構(gòu)的高穩(wěn)定性[4]。在同源比對中發(fā)現(xiàn),KcFabZ與萵苣(Lactuca sativaLinn)、向日葵(Helianthus annuus)、青蒿(Artemisia annua)等物種的β-羥?;?ACP脫水酶同源性均達(dá)到75%以上,且與萵苣親緣關(guān)系最近,可能由于花花柴與萵苣同屬于菊科,具有物種同源性。

    FabZ作為脂肪酸合成酶的一種,是脂肪酸碳鏈延長的關(guān)鍵酶,與FabI、FabG構(gòu)成了脂肪酸碳鏈延伸的循環(huán)體系,在脂肪酸合成途徑中發(fā)揮重要作用,如Bourgis[13]的研 究中高 油 分含量 的油桐(Vernicia fordii)中β-羥酰基-ACP脫水酶的表達(dá)量是椰棗(Phoenix dactylifera)中的8倍;在Tai[14]等的研究中就發(fā)現(xiàn)在云杉(Picea asperata Mast)脂肪酸從頭合成的脂肪酸合成酶中的FabZ的mRNA第一個內(nèi)含子存在可變剪接并且隨著溫度的降低再增加,表明β-羥?;?ACP脫水酶不僅在脂肪酸合成中發(fā)揮重要作用,對溫度還具有很高的敏感度。本研究通過qRT-PCR技術(shù),以40℃高溫處理不同時間的花花柴培養(yǎng)植株為材料,發(fā)現(xiàn)在高溫處理下基因的表達(dá)模式均不同于常溫條件,表現(xiàn)出先增高后降低的變化趨勢,推測可能與高溫逆境處理相關(guān)。

    研究表明,植物葉片表皮蠟質(zhì)在逆境脅迫響應(yīng)中起到重要作用,Zhu等[15]的研究中發(fā)現(xiàn)在干旱下誘導(dǎo)蠟質(zhì)積累的基因(DWA1)的突變體與野生材料相比對干旱脅迫高度敏感,可以通過調(diào)節(jié)水稻干旱誘導(dǎo)的表皮蠟沉積來控制抗旱性;吳洪啟等[16]發(fā)現(xiàn)干旱脅迫能夠誘導(dǎo)蠟質(zhì)合成相關(guān)基因β-酮脂酰-輔酶A合成酶表達(dá)量上調(diào)?;ɑú褡鳛橐环N荒漠植物,葉片較厚,表面附著一層厚厚的蠟質(zhì),經(jīng)預(yù)測KcFabZ基因定位于花花柴葉器官的葉綠體中,葉綠體是質(zhì)體的一種,蠟質(zhì)合成的第一步是在質(zhì)體中合成長度為C16~C18的脂肪酸,第二步在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中長鏈脂肪酸進(jìn)行碳鏈的延伸,第三部超長鏈脂肪酸在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的修飾下形成醇類、酯類和烷烴等,故推測該基因與其葉表面蠟質(zhì)積累有關(guān)。到目前為止,針對脂肪酸基因抗逆性的研究重點(diǎn)在不飽和脂肪酸的去飽和酶上,對脂肪酸合成酶的碳鏈延長酶基因與植物抗逆性關(guān)系的研究報(bào)道較少。例如,在Wolter等[17]的研究中,將擬南芥(Arabidopsis thaliana)GPAT過表達(dá)會引起不飽和脂肪酸含量的增加,從而更適應(yīng)在低溫下生長,也有文獻(xiàn)表明,在擬南芥中膜脂肪酸的不飽和度與生長溫度成反比[18],在低溫條件下小麥(Triticum aestivum L)中脂肪酸中α-亞麻酸(18:3)比例由于ω-3去飽和酶TaFAD3基因的作用隨著溫度的降低而增加[19]。Murakami等[20]克隆了編碼葉綠體ω-3脂肪酸去飽和酶的基因(其合成三烯脂肪酸),并在轉(zhuǎn)基因煙草(Nicotianatabacum)中沉默,研究發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)基因材料更能適應(yīng)高溫環(huán)境。而關(guān)于FabZ基因的研究大部分在原核菌類上,在植物中鮮有報(bào)道,本研究通過RNA-seq分析對花花柴脂肪酸生物合成差異表達(dá)基因FabZ進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育預(yù)測,發(fā)現(xiàn)該基因在脂肪酸合成路徑中發(fā)揮重要作用并能對高溫處理有一定的響應(yīng),將為探索花花柴耐高溫機(jī)制和研發(fā)耐高溫轉(zhuǎn)基因作物奠定了一定的理論基礎(chǔ)。

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