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      非培養(yǎng)方法研究榨菜中酵母菌的多樣性

      2019-07-20 06:02:16燕平梅邢勇李娜趙文婧陳燕飛喬宏萍
      中國調(diào)味品 2019年7期
      關(guān)鍵詞:爽口凝膠電泳榨菜

      燕平梅,邢勇,李娜,趙文婧,陳燕飛,喬宏萍

      (1.太原師范學(xué)院 生物系,太原 030619; 2.土壤消毒活化綠色產(chǎn)業(yè)技術(shù)創(chuàng)新戰(zhàn)略聯(lián)盟,太原 030619)

      榨菜越來越多地出現(xiàn)在人們的餐桌上,它是一種以莖用芥菜為原料腌制而成的半干態(tài)非發(fā)酵性咸菜,它質(zhì)地脆嫩、風(fēng)味鮮美、營養(yǎng)豐富,具有一種特有的風(fēng)味,具有特殊的酸味和咸鮮味,富含豐富的人體所必需的蛋白質(zhì)、胡蘿卜素、膳食纖維、礦物質(zhì)等以及谷氨酸、天門冬氨酸、丙氨酸等17種游離氨基酸,可以佐餐、炒菜、做湯,深受人們喜愛。在榨菜腌制過程中,酵母菌發(fā)揮了不可或缺的作用,可以將榨菜中的物質(zhì)分解成人體易吸收的有益物質(zhì),通過研究榨菜中酵母菌的多樣性可以了解哪些種屬發(fā)揮的作用較大,然后通過人工添加相關(guān)菌種來促進(jìn)榨菜的腌制。

      本實(shí)驗(yàn)中,研究榨菜中酵母菌的多樣性采用的是非培養(yǎng)的方法即PCR-DGGE技術(shù),如今DGGE技術(shù)已經(jīng)成為研究微生物群落及親緣關(guān)系的主要分子工具之一[1,2],它具有不需要通過培養(yǎng)就可以進(jìn)行分析序列的優(yōu)點(diǎn),可以大大地縮短樣品分析的時(shí)間,減少工作量,也已經(jīng)廣泛地應(yīng)用于食品(包括腌制蔬菜)微生物的研究中[3,4]。DGGE技術(shù)是通過聚丙烯酰氨凝膠中變性劑濃度的不同,將不同序列DNA分開,之后通過凝膠成像儀得到DGGE圖譜,通過DGGE圖譜上的條帶[5,6],達(dá)到了解微生物的實(shí)驗(yàn)?zāi)康模偻ㄟ^對(duì)DGGE圖譜的分析,從而了解其種群特征及多樣性[7]。

      榨菜在我國擁有悠久的加工歷史,并且由于其本身爽口的特點(diǎn)以及方便性,越來越深受人們喜愛,通過對(duì)榨菜進(jìn)一步分析得知,不僅食材本身具有特殊性,其中微生物發(fā)酵對(duì)其口感也有影響,隨著對(duì)榨菜中微生物群落的多樣性研究越來越詳細(xì),人們對(duì)口感的改善也有了更豐富的經(jīng)驗(yàn),其中楊珺等[8]、李正國等[9]、燕平梅等[10]分別通過微生物的分離培養(yǎng)、傳統(tǒng)分離培養(yǎng)與DGGE技術(shù)結(jié)合、PCR-DGGE技術(shù),對(duì)榨菜發(fā)酵過程中的微生物種類、榨菜腌制過程中的細(xì)菌多樣性以及榨菜中的乳酸菌群落進(jìn)行了相關(guān)的研究,對(duì)細(xì)菌等微生物給出了參考。但是由于對(duì)榨菜中的真菌研究較少,故為了進(jìn)一步探索榨菜中的真菌多樣性,本文通過PCR-DGGE技術(shù)對(duì)市售的袋裝榨菜進(jìn)行了研究,進(jìn)一步了解了榨菜中的真菌(以酵母菌為研究對(duì)象)群落的多樣性[11]。

      1 材料和方法

      1.1 材料

      1.1.1 原材料

      爽口榨菜400 g,用SZ表示,其成分為:榨菜、食用鹽、辣椒、香辛料、食品添加劑(苯甲酸鈉、檸檬黃);

      烏江榨菜70 g,用WZ表示,其成分為:榨菜、食用鹽、植物油、食品添加劑(谷氨酸鈉、5-呈味核苷酸二鈉、安賽蜜、乙二胺四乙酸二鈉、檸檬酸鈉)、辣椒、發(fā)酵醬油粉(釀造醬油、麥芽糊精、食用鹽)。

      1.1.2 主要試劑及儀器

      試劑:血液/細(xì)胞/組織基因組DNA提取試劑盒(離心柱型)、TAE緩沖液、 溴化乙錠、NLI-GC(引物)、 LS2(引物)、瓊脂糖(生化試劑)、無菌水、PCR Master Mix、丙烯酰胺、TAE buffer、TEMED、去離子甲酰胺、過硫酸銨、尿素、凝膠加樣緩沖液、氫氧化鈉、甲醛、冰醋酸、無水乙醇、硝酸銀。

      儀器:離心機(jī)、超凈工作臺(tái)、PCR儀、凝膠成像系統(tǒng)、DYY-6C型電泳儀、電泳槽、紫外分光光度計(jì) 美國Bio-Rad公司;無菌手術(shù)刀、YXQ-LS-30SⅡ型立式壓力蒸汽滅菌器、水浴鍋。

      1.2 榨菜中微生物的DNA提取

      從兩種榨菜中各取榨菜汁18 mL于8000 r/min離心5 min,倒掉上清液,將菌種收集到離心管中,然后根據(jù)血液/細(xì)胞/組織基因組DNA提取試劑盒(離心柱型)的說明步驟提取DNA,最后通過瓊脂糖凝膠電泳觀察提取結(jié)果。

      1.3 酵母菌的PCR擴(kuò)增

      以酵母菌的DNA為模板,引物為酵母菌的DNA擴(kuò)增的通用引物(由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成):

      NL1-GC:cgc ccg ccg cgc ggc ggg cgg ggc ggg ggc gcg ata tca ata agc gga gga aaa g;

      LS2:att ccc aaa caa ctc gac tc;

      PCR的反應(yīng)體系為:PCR Master Mix 12.5 μL,NL1-GC 1 μL,LS2 1 μL,無菌水9 μL,樣品DNA 1.5 μL。

      PCR的反應(yīng)程序?yàn)椋?4 ℃ 5 min,94 ℃ 30 s,46 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,72 ℃ 5 min,設(shè)置30個(gè)循環(huán)。

      PCR結(jié)束后,取PCR產(chǎn)物5 μL,通過瓊脂糖凝膠電泳,觀察DNA電泳結(jié)果。

      1.4 酵母菌PCR產(chǎn)物變性梯度凝膠電泳(DGGE)

      變性梯度凝膠的配方見表1。

      表1 變性梯度凝膠的配方Table 1 The formula of denatured gradient gel

      DGGE電泳后凝膠于Bio-Rad公司的凝膠成像系統(tǒng)分析、拍照。將每條可看到的電泳帶切割回收,溶膠后作為模板通過PCR反應(yīng)擴(kuò)增16S rDNA V7-V8片段,純化后與pGM-T Vector進(jìn)行連接, 轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)胞。將檢測(cè)陽性克隆的送至華大基因公司進(jìn)行基因序列測(cè)定。

      1.5 DGGE圖譜分析

      將DGGE電泳片段放入凝膠成像系統(tǒng)中觀察并讀取圖譜,用Quantity One Software 對(duì)DGGE圖譜中條帶的亮度、位置、面積等數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,并對(duì)分析結(jié)果的數(shù)據(jù)進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化處理,然后根據(jù)Microsoft Excel軟件計(jì)算多樣性指數(shù)(H)、均勻度指數(shù)(E)及豐富度指數(shù)(R)。

      其中相關(guān)生態(tài)指數(shù)計(jì)算公式為:

      H=-∑Pilog2Pi;

      E=1-∑Pi2;

      R=S-1/InN。

      式中:Pi為Relative Qty值/100,N為某一泳道所有峰面積,S為某一泳道的總條帶數(shù)。

      2 結(jié)果和分析

      2.1 榨菜中微生物DNA提取結(jié)果

      圖1 榨菜中微生物DNA瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果 Fig.1 The result of microbial DNA in pickles by agar gel electrophoresis

      注:圖中1,2 表示爽口榨菜,3,4表示烏江榨菜。

      DNA瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果中,條帶表示是否具有DNA,亮度表示其含量的多少。由圖1可知,在4個(gè)泳道中都有亮點(diǎn),說明提取到了DNA,但是由于亮度較暗,說明DNA含量較少。

      2.2 酵母菌PCR擴(kuò)增結(jié)果

      圖2中左邊第一條條帶為marker,其后4條條帶為酵母菌DNA,從左往右依次為SZ、SZ、WZ、WZ,根據(jù)Marker可知擴(kuò)增后酵母菌DNA分子量為400 bp,可以進(jìn)行DGGE分析。

      圖2 酵母菌DNA PCR擴(kuò)增電泳圖Fig.2 PCR amplification electrophoresis figure of Saccharomycetes DNA

      2.3 酵母菌PCR產(chǎn)物變性梯度凝膠電泳

      榨菜酵母菌的DGGE電泳圖見圖3。

      圖3 DGGE電泳圖譜Fig.3 DGGE electrophoresis

      圖3中SZ為爽口榨菜,WZ為烏江榨菜,圖中條帶的多少說明酵母菌種群的多樣性,不同位置的條帶說明酵母菌種屬不同,條帶的亮度表明酵母菌的豐富度[12,13]。爽口榨菜有兩條不同變性濃度的條帶,說明爽口榨菜中有兩種不同的酵母菌,烏江榨菜中也有兩種不同的酵母菌,但是爽口榨菜(SZ)中的第一條條帶與烏江榨菜(WZ)中的第一條條帶的變性濃度相同,說明這兩條條帶為同一種酵母菌。

      2.4 DGGE圖譜結(jié)構(gòu)多樣性分析

      表1 榨菜中酵母菌多樣性分析Table 1 Analysis of the diversity of Saccharomycetes in pickles

      由表1可知,樣品SZ(即爽口榨菜)中的酵母菌多樣性指數(shù)與豐富度都比樣品WZ(即烏江榨菜)中的數(shù)值大,均勻度卻比樣品WZ小。

      2.5 聚類分析結(jié)果

      圖4 樣本聚類分析結(jié)果Fig.4 Sample cluster analysis results

      圖4中#1代表SZ,#2代表WZ,#3為空白位置,不帶有任何序列,根據(jù)聚類分析結(jié)果可知,SZ與WZ的相似性為0.60,說明在兩種榨菜中,酵母菌的相似性較大。

      2.6 基因測(cè)序分析結(jié)果

      表2 DGGE序列測(cè)序分析結(jié)果Table 2 Sequencing analysis results of DGGE sequences

      編號(hào)SZ1代表爽口榨菜(SZ)DGGE圖譜中的第一條條帶,SZ2代表SZ中的第二條條帶,WZ2代表烏江榨菜(WZ)中的第二條條帶,由DGGE圖譜可知WZ中的第一條條帶與SZ1的變性濃度相同,可知為同一種酵母菌。由表2可以得出在NCBI中具有最高同源性的菌株,這有助于進(jìn)一步準(zhǔn)確確定其序列所屬的菌種,將測(cè)序結(jié)果使用MEGA 6.0軟件進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育樹的構(gòu)建,見圖5。

      2.7 構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹

      圖5 DNA序列系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.5 DNA sequence phylogenetic tree

      由圖5可知,條帶SZ2與條帶WZ2有較近的親緣關(guān)系,相似度為93%;SZ2的相似菌種Candidatropicalis與WZ2的相似菌種Saturnisporamendonce的親緣關(guān)系較近,相似度高達(dá)98%;條帶生長(zhǎng)SZ2與條帶SZ1親緣關(guān)系較差,相似度只有57%,由系統(tǒng)發(fā)育樹可知,兩種榨菜樣品中含有的酵母菌可能與Candidatropicalis,Pichiafermentans,Saturnisporamendonce這3種菌有較高的相似性。

      3 討論

      榨菜作為一種非發(fā)酵腌制食品,其中微生物種類豐富,越來越多的學(xué)者對(duì)其進(jìn)行了深入研究,楊珺等在《四川榨菜后熟時(shí)期微生物區(qū)系的研究》中探索了其中細(xì)菌及真菌的優(yōu)勢(shì)種類,得出酵母菌有5個(gè)屬,具體確定到種時(shí)為3種酵母菌,但是采用的方法為培養(yǎng)的方法,相對(duì)于本實(shí)驗(yàn)采用的PCR-DGGE非培養(yǎng)方法較為麻煩,本實(shí)驗(yàn)通過PCR-DGGE技術(shù)分析序列直接得知樣品中酵母菌的種類。隨后學(xué)者李正國對(duì)于研究榨菜中微生物多樣性的方法進(jìn)行了前沿性探索,實(shí)驗(yàn)采用培養(yǎng)方式及PCR-DGGE技術(shù)相結(jié)合的方法,得到了榨菜發(fā)酵中的優(yōu)勢(shì)細(xì)菌為明串珠菌屬,其次為乳酸菌,雖然研究方法有了突破,但是研究的只是榨菜中細(xì)菌種類的多樣性,沒有涉及到真菌的研究,本文在其基礎(chǔ)上發(fā)展到對(duì)真菌的研究,在方法上只采用非培養(yǎng)PCR-DGGE技術(shù)進(jìn)行研究[14],本文以兩種市售榨菜為研究對(duì)象,對(duì)榨菜中的酵母菌多樣性進(jìn)行了探索,由DGGE圖譜分析可知,酵母菌的種類含量較多,對(duì)于榨菜具有舉足輕重的作用。而DGGE技術(shù)檢測(cè)極限低,并且可以同時(shí)快速分析多個(gè)樣品,能清楚、準(zhǔn)確地反映樣品間微生物群落的差異性及其多樣性,并且可以將條帶切割下來測(cè)序,可以說這是分析微生物群落多樣性及其差異性最為廣泛的工具之一[15]。本文得出的酵母菌種類與楊珺等人分析得出的酵母菌種類不同,不僅由于其樣本不同,可能還與DGGE分析有關(guān),根據(jù)DGGE技術(shù)的原理可知,在同一位置上DNA序列是相同的,但是,由于異源雙鏈體[16]、嵌合體、共遷移等會(huì)導(dǎo)致結(jié)果產(chǎn)生偏差。在實(shí)驗(yàn)操作中還應(yīng)認(rèn)真仔細(xì),減少其不必要的誤差,如:DGGE電泳過程中的染色,應(yīng)采用效果好且不與其他物質(zhì)相影響的染色劑;還有在使用Quantity One軟件時(shí)應(yīng)盡量減少偏差的出現(xiàn),使其可以準(zhǔn)確地體現(xiàn)出條帶的信息,這樣做出的實(shí)驗(yàn)及得出的結(jié)論才可以有更高的精確性及說服力。所以可以采用其他方法,如原位雜交、克隆、分離培養(yǎng)等技術(shù)相結(jié)合使用進(jìn)行分析,這樣可以提高實(shí)驗(yàn)的準(zhǔn)確性[17]。

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