陳 琛, 王炳彥, 鐘興文, 楊旭艷, 馬 丹, 戚 敏,孫照程, 陳 瑩, 孔凡虎, 華雪妃, 章雨竹, 陶琳麗*, 張 曦*
(1.云南農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,云南省動物營養(yǎng)與飼料重點實驗室,云南昆明 650201;2.云南省楚雄州牟定縣新橋鎮(zhèn)畜牧獸醫(yī)站,云南牟定 675501;3.大理白族自治州動物衛(wèi)生監(jiān)督所,云南大理 671000;4.云南省獸藥飼料監(jiān)測所,云南昆明 650201)
黃曲霉毒素(AFT)是黃曲霉和寄生曲霉產(chǎn)生的次生代謝產(chǎn)物,是一組有著類似結(jié)構(gòu)的化合物總稱。黃曲霉毒素B1(AFB1)是目前已知的致癌性最強的一種化學(xué)物質(zhì)(Iarc,2010),主要作用的靶器官是肝臟,對人和動物都能造成極大的損傷。玉米作為能量飼料原料供給動物,間接被人類食用,由于玉米中黃曲霉毒素污染普遍,且以AFB1為主,成為人們最關(guān)注的農(nóng)作物之一(高秀芬等,2011)。根據(jù)飼料衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn) (GB 13078-2017), 玉米中AFB1限量要求不超過50 μg/kg,但據(jù)相關(guān)文獻報道,我國飼料原料霉菌毒素污染超標(biāo)比例高達一半以上(程傳民等,2014)。因此加強對玉米中AFB1的監(jiān)測是飼料安全監(jiān)管部門每年的重點工作。
目前,國內(nèi)外檢測霉菌毒素的方法主要有酶聯(lián)免疫吸附(ELISA)法(Oplatowska-Stachowlak等,2016)、薄層色譜(TLC)法(柳其芳,2006)、毛細管電泳(CE)法(王曉琳等,2015)、氣相色譜(GC)法與氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用(GC-MS)法(馬曉宇和林英庭,2018)、高效液相色譜(HPLC)法(劉柱等,2014)與高效液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用 (HPLCMS)法 (殷秋妙等,2018),其中,ELISA 法和HPLC-MS法是檢測飼料中AFB1最常用的方法。ELISA法是一種把酶的高效催化作用與抗原抗體的特異性免疫反應(yīng)有機結(jié)合起來的檢測技術(shù),其操作快速便捷、靈敏度高、安全性高、污染少、干擾小。HPLC-MS法可同時對多種毒素進行定性和定量檢測,易于控制,定量準(zhǔn)確度高,適用于飼料中6種黃曲霉毒素的定性、定量檢測 (殷秋妙等,2018;王瑞國等,2015)。本實驗通過ELISA法和HPLC-MS法對玉米中AFB1含量進行測定比較,討論兩者之間的差異及相關(guān)性,為今后玉米中AFB1的檢測工作提供參考。
1.1 材料與試劑 玉米,從多家飼料企業(yè)送檢的玉米樣品中取樣30份,用四分法縮減取200 g,用粉碎機粉碎后過40目篩,混勻裝入自封袋中備用;甲醇、乙酸、甲酸、乙腈,均為色譜純;氯化鉀,氯化鈉、磷酸二氫鉀、十二水合磷酸氫二鈉,吐溫-20、鹽酸、氫氧化鈉,均為分析純;蒸餾水和超純水;黃曲霉毒素B1標(biāo)準(zhǔn)品,純度≥97.0%,濃度為 20 μg/mL;玻璃纖維濾紙,直徑11 cm,孔徑1.5 μm;黃曲霉毒素B1/玉米赤霉烯酮/T-2毒素三合一免疫親和柱,北京華安麥科生物技術(shù)有限公司;ELISA試劑盒,北京龍科方舟生物工程有限公司。
黃曲霉毒素B1標(biāo)準(zhǔn)中間液:根據(jù)使用需要,準(zhǔn)確吸取一定量的黃曲霉毒素B1標(biāo)準(zhǔn)溶液,用復(fù)溶液或玉米空白基質(zhì)液稀釋,分別配成濃度為1000 ng/mL的中間液1和100 ng/mL的中間液2,現(xiàn)配現(xiàn)用。
黃曲霉毒素B1標(biāo)準(zhǔn)工作液:分別吸取一定量的中間液2,用復(fù)溶液或玉米空白基質(zhì)液稀釋,分別配出兩組濃度為 0.5、10、25、50 ng/mL 的標(biāo)準(zhǔn)工作液,現(xiàn)配現(xiàn)用。
1.2 儀器與設(shè)備 AL104電子天平(METTLER TOLEDO);300 g搖擺式高速萬能粉碎機(溫嶺市林大機械有限公司);SHA-B恒溫振蕩器(常州智博瑞儀器制造有限公司);GENIUS 3渦旋混勻器(IKA@VORTEX);H2050R 高速冷凍離心機(Xiangyi Centrifuge Instrumen Co.,Ltd);N-EVAP111氮吹儀 (Organomation Associates,Jnc);SPE-12A 12孔固相萃取裝置 (上海啟前電子科技);TSQ QUANTIVA高效液相色譜—串聯(lián)質(zhì)譜儀(Thermo Scientific);KHB ST-360酶標(biāo)儀(上??迫A實驗系統(tǒng)有限公司)。
1.3 實驗方法
1.3.1 酶聯(lián)免疫法 ELISA法是一種把酶的高效催化作用與抗原抗體的特異性免疫反應(yīng)有機結(jié)合起來的檢測技術(shù)。在本實驗中,ELISA法是按照GB/T 17480-2008《飼料中黃曲霉毒素B1的測定酶聯(lián)免疫吸附法》來檢測,其基本原理是利用抗原和抗體先結(jié)合到某固相載體表面,將標(biāo)準(zhǔn)溶液或待測樣品(含待測抗原和抗體)和酶標(biāo)抗原或抗體按一定程序與結(jié)合在固相載體表面的抗原或抗體反應(yīng),形成免疫復(fù)合物,反應(yīng)終止時,免疫復(fù)合物與待測物中抗原或抗體的量成一定比例關(guān)系,經(jīng)洗滌反應(yīng)液之后,再加入酶反應(yīng)底物,底物即被固相載體上的酶催化為有色產(chǎn)物,最后用目測法或儀器法通過與AFB1標(biāo)準(zhǔn)溶液比較判斷或計算試樣中AFB1的含量(肖樺等,2006)。結(jié)合本實驗所選用的AFB1定量檢測試劑盒,檢測同樣基于抗原抗體反應(yīng),酶標(biāo)板微孔條上預(yù)包被AFB1抗體,加入校準(zhǔn)品/樣品,AFB1-HRP(黃曲霉毒素B1酶標(biāo)記物)后,校準(zhǔn)品/樣品中殘留的AFB1同AFB1-HRP競爭微空條上預(yù)包被抗體的抗原結(jié)合位點,因此結(jié)合在微孔條上的AFB1-HRP量與校準(zhǔn)品/樣品中殘留AFB1的濃度呈負相關(guān),經(jīng)TMB底物顯色,樣品吸光值與其殘留的AFB1的含量呈負相關(guān),與標(biāo)準(zhǔn)曲線比較即可得出樣品中AFB1的含量。
前處理:稱取(5±0.1)g粉碎后過篩的玉米樣品于離心管中,加入25 mL 70%甲醇溶液,充分振蕩提取3 min,靜置后取上清液4000 r/min離心5 min,向500 μL樣品稀釋液中加入離心后的上清液500 μL,取混勻液用試劑盒進行檢測。
檢測參數(shù)設(shè)置:樣品經(jīng)酶聯(lián)免疫試劑盒反應(yīng)后,立即用酶標(biāo)儀定量,即在450/630 nm雙波長下讀取吸光度值。
1.3.2 高效液相色譜—質(zhì)譜聯(lián)用法 HPLC-MS法是按照NY/T 2071-2011《飼料中黃曲霉毒素、玉米赤霉烯酮和T-2毒素的測定 液相色譜--串聯(lián)質(zhì)譜法》進行測定,采用色譜保留時間和質(zhì)譜碎片及其離子豐度比定性,外標(biāo)法定量。但在質(zhì)譜檢測中,必然存在干擾待測物質(zhì)離子化的物質(zhì),也就是除了待測物本身其他存在的物質(zhì)都可能間接或直接引起待測物響應(yīng),引發(fā)待測信號抑制或增強的現(xiàn)象,由此產(chǎn)生基質(zhì)效應(yīng)。引發(fā)基質(zhì)效應(yīng)的物質(zhì)包含生物樣品中的內(nèi)源性成分和樣品前處理過程中引入的外源性成分,意味著樣品本身、樣品基質(zhì)、樣品前處理過程,色譜條件和不同離子化模式都可能對檢測結(jié)果產(chǎn)生影響,這些影響是個十分復(fù)雜的過程(Matuszewski等,2003)。因此本實驗設(shè)計兩組用于外標(biāo)定量的標(biāo)準(zhǔn)曲線,一組選用和待測樣品同源的玉米做空白基質(zhì)加標(biāo),過程相對復(fù)雜,成本較高;另一組直接采用復(fù)溶液加標(biāo)為純標(biāo),相對簡單省時,成本較低;樣品按照農(nóng)業(yè)農(nóng)村部標(biāo)準(zhǔn)和免疫親和柱操作步驟進行前處理,分別使用兩條標(biāo)準(zhǔn)曲線外標(biāo)計算結(jié)果,與酶聯(lián)免疫法測出的結(jié)果相比較,討論幾者之間的差異及相關(guān)性,為今后玉米中AFB1的檢測工作提供參考。
前處理:稱取(5±0.1)g粉碎后過篩的玉米樣品于離心管中,加入25 mL提取液(80%乙腈-水溶液)提取,在恒溫振蕩器(200~300 r/min)上劇烈振蕩20 min,用高速離心機(400 r/min)離心5 min,取5 mL離心后的上清液加入35 mL稀釋液稀釋,混勻,用玻璃纖維濾紙過濾至澄清,取20 mL濾液過柱。取出接近室溫的免疫親和柱,完成親和柱與固相萃取裝置的連接,在親和柱上方連接裝有20 mL濾液的注射器針筒,調(diào)節(jié)固相萃取開關(guān),使濾液以1~2滴/s的速度流出,待液體排干后,先用10 mL洗滌液洗滌一次,再用10 mL超純水洗滌一次,流速為2~3滴/s;待液體排干后,調(diào)節(jié)裝置開關(guān)關(guān)閉,在親和柱內(nèi)加入2 mL洗脫液,靜置3 min,然后以1滴/s速度洗脫,收集洗脫液,在50℃的氮氣下吹干洗脫液,用1 mL甲酸乙腈溶液復(fù)溶,過0.22 μm有機濾膜,裝瓶上機。
檢測參數(shù)設(shè)置:色譜柱:C18柱(長度50 mm,內(nèi)徑 1.9 μm);流動相:0.1%的甲酸溶液和 1∶1 的甲醇乙腈溶液;流速:0.3 mL/min;柱溫:33 ℃;進樣量:5 μL;質(zhì)譜檢測器。
1.4 統(tǒng)計與分析
1.4.1 ELISA法數(shù)據(jù)處理 所有數(shù)據(jù)采用Microsoft Excel軟件進行整理,根據(jù)公式計算樣品的百分吸光率,以校準(zhǔn)品的百分吸光率為縱坐標(biāo),以AFB1校準(zhǔn)品含量(μg/kg)的對數(shù)為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線圖。將樣品的百分吸光率帶入標(biāo)準(zhǔn)曲線,從標(biāo)準(zhǔn)曲線上讀出所對應(yīng)的樣品含量。根據(jù)選用的試劑盒說明書,結(jié)果判定為:若檢測結(jié)果小于2 ppb應(yīng)報告為小于2 ppb,若結(jié)果大于2 ppb小于50 ppb則報告實際定量結(jié)果,若檢測結(jié)果大于50 ppb即報告大于50 ppb。
式中:B為校準(zhǔn)品或樣品的平均吸光度值;B0為0 μg/mL標(biāo)準(zhǔn)溶液的平均吸光度值。
1.4.2 HPLC-MS法數(shù)據(jù)處理 所有數(shù)據(jù)采用Microsoft Excel軟件進行整理,基質(zhì)加標(biāo)組標(biāo)準(zhǔn)曲線用玉米基質(zhì)液 (空白玉米經(jīng)前處理復(fù)溶所得)稀釋AFB1標(biāo)準(zhǔn)品配制上機標(biāo)準(zhǔn)點,以上機標(biāo)準(zhǔn)點濃度為橫坐標(biāo),上機測出的峰面積為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)樣品上機后的相對離子豐度比是否在最大允許偏差范圍內(nèi),定性判定樣品中是否存在AFB1,如不存在,則判定為未檢出,如存在,則將該峰的峰面積帶入標(biāo)準(zhǔn)曲線計算得出樣品上機濃度(ng/mL),根據(jù)前處理的稀釋過程,計算玉米中AFB1的含量;純標(biāo)組標(biāo)準(zhǔn)曲線用復(fù)溶液直接稀釋AFB1標(biāo)準(zhǔn)品配制上機標(biāo)準(zhǔn)點,其余處理同基質(zhì)加標(biāo)組。樣品中黃曲霉毒素B1的含量(Xi)以質(zhì)量分數(shù)表示(μg/kg),用下列公式計算:
式中:Ci為樣品上機濃度,ng/mL;V1為提取液體積,mL;V2為待稀釋濾液加稀釋液之后的體積,mL;V3為復(fù)溶體積,mL;V4為待稀釋的濾液體積,mL;V5為待上樣檢測的濾液體積,mL;m 為樣品質(zhì)量,g。
2.1 HPLC-MS兩組標(biāo)準(zhǔn)曲線的結(jié)果 如圖1所示,當(dāng)AFB1上機濃度為30.89 ng/mL,即樣品含量為61.78 μg/kg時,兩條曲線峰面積相等。當(dāng)AFB1上機濃度<30.89 ng/mL, 即樣品含量<61.78 μg/kg時,在同一上機濃度下,純標(biāo)組的峰面積>基質(zhì)加標(biāo)組的峰面積;當(dāng)上機濃度>30.89 ng/mL,即樣品含量>61.78 μg/kg時,純標(biāo)組的峰面積<基質(zhì)加標(biāo)組的峰面積。
圖1 玉米黃曲霉毒素B1標(biāo)準(zhǔn)曲線
2.2 玉米中黃曲霉毒素B1含量的測定結(jié)果 由表1可以看出,使用ELISA和HPLC-MS檢測同一份樣品,1~12號樣品的AFB1含量均低于酶聯(lián)檢出限(<2 μg/kg),使用 HPLC-MS 同樣未檢出(<1 μg/kg)。 13 號玉米使用 HPLC-MS 未檢出 AFB1,ELISA檢出含量為2.2 μg/kg,十分接近酶聯(lián)檢出限(2 μg/kg)。而14~17號玉米檢測結(jié)果具有相同特征,用ELISA檢測都低于酶聯(lián)檢出限(<2 μg/kg),14、16、17號玉米用HPLC-MS檢測,在純標(biāo)組曲線上得到的結(jié)果均低于液質(zhì)聯(lián)用檢出限(<1 μg/kg),但都能出峰,且樣品中AFB1保留時間與標(biāo)準(zhǔn)溶液保留時間的偏差不超過標(biāo)準(zhǔn)溶液保留時間的2.5%,定性離子豐度比與濃度接近的標(biāo)準(zhǔn)溶液中對應(yīng)的定性離子豐度比偏差亦在允許范圍內(nèi),可定性判斷出峰物質(zhì)為AFB1,但兩組曲線下的HPLC-MS檢測結(jié)果又具有差異,在純標(biāo)組標(biāo)準(zhǔn)曲線上得到的結(jié)果基本小于2 μg/kg,與酶聯(lián)檢出結(jié)果十分符合,而在基質(zhì)液加標(biāo)組標(biāo)準(zhǔn)曲線上得到的結(jié)果為4.87~5.72 μg/kg,高于酶聯(lián)檢測結(jié)果的4~13倍。18、19號玉米用ELISA檢出的結(jié)果高于酶聯(lián)檢出限1 μg/kg左右,但兩組曲線下的HPLCMS檢測結(jié)果特征與14~17號玉米結(jié)果類似。20~25號玉米的檢測結(jié)果雖有差異,但總體特征相符,具體表現(xiàn)為用ELISA檢測出的AFB1含量與HPLC-MS(純標(biāo)組)檢測結(jié)果的偏差很小,平均偏差 為 0.93 μg/kg, 最 小 偏 差 為 0.42 μg/kg; 用HPLC-MS(玉米基質(zhì)液加標(biāo)組)檢出的AFB1含量平均高于用ELISA或HPLC-MS(純標(biāo)組)檢出結(jié)果的2.2倍。26號和27號玉米在兩種HPLC-MS檢測曲線下的結(jié)果比較接近,偏差為1~3 μg/kg,高于用ELISA檢出結(jié)果的2~2.5倍。28~30號玉米樣品不論使用ELISA還是HPLC-MS檢出的結(jié)果都高于曲線范圍,且都超過飼料衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn)中AFB1的限量要求,均為AFB1超標(biāo)樣品。
表1玉米中AFB1檢測結(jié)果對比表 μg/kg
總體來說,30份樣品用ELISA檢測或HPLC-MS檢測都能判定玉米中AFB1含量是否超標(biāo),且判定結(jié)果一致,但具體檢出量存在差異。樣品中AFB1含量低于ELISA檢出限的,基本也低于HPLC-MS檢出限;低于HPLC-MS檢出限但能出峰,且峰定性判定為AFB1的,AFB1測定結(jié)果ELISA≈HPLC-MS(純標(biāo)組)。當(dāng)樣品中AFB1含量為2~6 μg/kg時,測定結(jié)果 HPLCMS(純標(biāo)組)<ELISA<HPLC-MS(玉米基質(zhì)液加標(biāo)組),且HPLC-MS(玉米基質(zhì)液加標(biāo)組)測定值約為ELISA和HPLC-MS(純標(biāo)組)的2~13倍;當(dāng)樣品中 AFB1含量>11 μg/kg時,測定結(jié)果ELISA<HPLC-MS(純標(biāo)組)≈HPLC-MS(玉米基質(zhì)液加標(biāo)組)。當(dāng)樣品中AFB1含量用ELISA檢測高于限量要求的,用HPLC-MS檢測也同樣超出限量要求,且HPLC-MS(純標(biāo)組)的測定結(jié)果均最大。
本實驗中30份玉米樣品,用ELISA檢測AFB1的檢出率為 40%,HPLC-MS的檢出率為57%,兩種方法檢測AFB1超標(biāo)率均為10%,相較謝文梅等(2017)測得2017年1~6月全國各地玉米AFB1檢出率88.89%,此次檢測的玉米樣品受AFB1污染較輕,只有個別玉米含量超標(biāo),與黃俊恒和黃廣明 (2018)2017年檢出華中地區(qū)玉米樣品AFB1超標(biāo)率10.5%相吻合,說明近年來玉米相較其他谷物受黃曲霉毒素B1污染趨勢有所下降,但仍然屬于易被污染范疇(謝文梅等,2017)。當(dāng)AFB1測定結(jié)果在限量要求內(nèi)時(<50 μg/kg),用 ELISA檢測的結(jié)果均小于HPLC-MS(玉米基質(zhì)液加標(biāo)組)測定結(jié)果,HPLC-MS(純標(biāo)組)測定結(jié)果也均小于HPLC-MS(玉米基質(zhì)液加標(biāo)組)測定結(jié)果;當(dāng)HPLC-MS測定值在AFB1限量要求范圍內(nèi)時(<50 μg/kg),在同一上機濃度下,基質(zhì)加標(biāo)組的峰面積均小于純標(biāo)組的峰面積,因此基質(zhì)的存在可能導(dǎo)致離子減弱效應(yīng),引起較低的響應(yīng)信號,表現(xiàn)為峰面積較小 (徐炎炎等,2017)。所以在本實驗中,當(dāng)玉米中AFB1含量未超過61.78 μg/kg時,可對比得出玉米基質(zhì)對AFB1出峰面積的影響為基質(zhì)減弱效應(yīng),但在基質(zhì)加標(biāo)曲線上外標(biāo)定量得出的樣品含量平均高于純標(biāo)曲線的3.6 μg/kg左右,這可能由于基質(zhì)玉米本底含有少量的待測物所致;反之,當(dāng)玉米中AFB1含量超過61.78 μg/kg時,則表現(xiàn)為基質(zhì)增強效應(yīng)。
在本實驗中,玉米AFB1含量在限量范圍內(nèi)時,ELISA陽性判定結(jié)果與HPLC-MS(純標(biāo)組)基本一致,假陽性為0,因此即當(dāng)檢測樣品數(shù)量眾多,涉及范圍或地域廣時,可用ELISA進行初篩,節(jié)約時間和成本,再用HPLC-MS對陽性樣品和超標(biāo)樣品進行復(fù)檢,或者用HPLC-MS對不同樣品含量分布范圍內(nèi)的樣品進行抽檢,驗證ELISA測定結(jié)果;但ELISA作為一種快速篩選手段,行標(biāo)或者國標(biāo)很少,因此給判定結(jié)果帶來不確定性,往往在檢測過程中易出現(xiàn)假陽性,若要降低假陽性,除了可適當(dāng)增大稀釋倍數(shù)以外,使用其他檢測手段復(fù)檢也必不可少(賈衛(wèi)昌和朱寅,2015;何方洋等,2015)。使用HPLC-MS法定性定量檢測玉米AFB1更加準(zhǔn)確,把色譜的高分離度、高靈敏性和質(zhì)譜檢測器的高選擇性、高靈敏性相結(jié)合(張明等,2018),可對ELISA檢測結(jié)果進行驗證和復(fù)檢。當(dāng)ELISA測定結(jié)果<2 μg/kg時,HPLC-MS可選用純標(biāo)曲線進行驗證;當(dāng) ELISA測定結(jié)果為 2~6 μg/kg時,HPLC-MS選用純標(biāo)曲線得出的結(jié)果十分接近ELISA,選用基質(zhì)液加標(biāo)曲線得出的結(jié)果是前兩者的2~13倍;當(dāng)ELISA測定結(jié)果>11 μg/kg時,HPLC-MS選用純標(biāo)曲線或基質(zhì)液加標(biāo)曲線都可以,兩者都是ELISA測定結(jié)果的1~2倍。在樣品中AFB1含量<61.78 μg/kg時,若考慮待測樣品量多,節(jié)約成本,縮短前處理時間等因素,運用HPLC-MS法可實際選用配制純標(biāo)曲線,定量得出的結(jié)果加上3.6 μg/kg即可大致相關(guān)為基質(zhì)加標(biāo)曲線得出的樣品含量。
目前,ELISA法和HPLC-MS法都是檢測樣品中AFB1含量的常用方法。ELISA法基于抗原抗體特異性反應(yīng),操作簡便快速,特異性強,與HPLCMS法相比,簡化了樣品前處理和上機過程,非常適用于玉米樣品中黃曲霉毒素B1的大量初篩。HPLC-MS法采用免疫親和柱純化,同樣基于抗原抗體的特異性結(jié)合,雖檢測靈敏度高,準(zhǔn)確性好,但前處理較為復(fù)雜,檢測時間較長,經(jīng)濟成本較高,親和柱有可能出現(xiàn)洗脫不完全的情況,且黃曲霉毒素質(zhì)量極輕,復(fù)溶后使用氮氣吹干時容易把毒素吹飛,操作者對氮氣吹干程度的把控也存在差異,因此HPLC-MS法適用于對ELISA的驗證和復(fù)檢。
本研究利用酶聯(lián)免疫(ELISA)法和高效液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用(HPLC-MS)法測定玉米樣品中AFB1含量,得到兩種方法在檢測玉米中AFB1含量為0~50 μg/kg和大于 50 μg/kg之間的相關(guān)性,ELISA對AFB1的檢出判定和HPLC-MS基本一致。當(dāng)配制HPLC-MS標(biāo)準(zhǔn)曲線時,可根據(jù)情況選用純標(biāo)曲線或基質(zhì)液加標(biāo)曲線外標(biāo)定量。在實際工作中,如果掌握了兩種方法之間的差異性和相關(guān)性,就可互補兩者之間的檢測判定,提升檢測效率和準(zhǔn)確率,同時為準(zhǔn)確定量玉米中黃曲霉毒素B1含量提供數(shù)據(jù)參考。