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    低溫和5—氮胞苷對油菜花芽分化和DNA甲基化的影響

    2019-05-29 11:08:08宋崢喻艷汪瑞清
    農(nóng)業(yè)與技術(shù) 2019年5期
    關(guān)鍵詞:低濃度花芽分化甲基化

    宋崢 喻艷 汪瑞清

    摘要:

    以中油雜11號(Brassica napus L.)為材料,采用不同時間低溫處理油菜幼苗,不同濃度5-氮胞苷(5-azaC)藥液處理油菜萌動種子,通過觀察莖尖花芽分化進程并測定莖尖DNA甲基化水平,研究了低溫和5-azaC對油菜花芽分化和莖尖DNA甲基化的影響。結(jié)果表明,6℃低溫處理幼苗6、12、18d能促進油菜花芽分化;50μmol/L 5-azaC處理萌動種子促進油菜花芽分化,且與低溫促進花芽分化的作用具有加成作用;250、500μmol/L[JP] 5-azaC處理萌動種子抑制油菜花芽分化;低溫和5-azaC處理均能降低莖尖DNA甲基化水平。說明低溫降低油菜植株莖尖DNA甲基化水平并促進花芽分化;低濃度5-azaC具有代替低溫促進油菜花芽分化的作用;甘藍型油菜為種子春化植物;幼苗比萌動種子更容易受到低溫處理的影響。

    關(guān)鍵詞:

    油菜;5-氮胞苷;低溫;花芽分化;DNA甲基化

    中圖分類號:S-3

    文獻標(biāo)識碼:A

    DOI:1019754/jnyyjs20190315011

    油菜生長發(fā)育過程中需要經(jīng)歷低溫春化才能從營養(yǎng)生長轉(zhuǎn)變到生殖生長階段[1],花芽分化是生長轉(zhuǎn)變完成的標(biāo)志。近年來,植物生長轉(zhuǎn)變研究的熱點之一是轉(zhuǎn)變過程中DNA甲基化水平的變化及其影響因素[2-5]。5-氮胞苷(5-azaC)是一種去甲基化試劑,在DNA復(fù)制過程中能取代胞嘧啶核苷加入到DNA新鏈中,由于嘧啶環(huán)上甲基結(jié)合部位被氮原子占據(jù),導(dǎo)致DNA鏈不能被甲基修飾而去甲基化。對模式植物擬南芥開花研究的結(jié)果表明,低溫、5-azaC和赤霉素都可促進其開花[6]。油菜生長發(fā)育與DNA甲基化的研究還很少。本文研究5-azaC和低溫對油菜花芽分化和莖尖DNA甲基化的影響,以期能為油菜生長轉(zhuǎn)變機理研究提供理論依據(jù)。

    1材料與方法

    11材料

    采用甘藍型油菜(Brassica napus L.)中油雜11號為試驗材料(中國農(nóng)科院油料作物研究所選育并提供)。5-azaC購自Sigma公司。試驗于2007[CD1]2008年度在華中農(nóng)業(yè)大學(xué)試驗田進行。

    12幼苗低溫處理

    10月17日大田直播。11月13日將幼苗移栽于4個苗盆(40cm×30cm×25cm)置于室內(nèi),其中3盆分別于0(當(dāng)日)、6、12d后置于6℃光照培養(yǎng)箱,室內(nèi)光照條件與培養(yǎng)箱中相同。18d后將全部幼苗移栽回大田,即低溫處理時間分別為18、12、6、0d(CK),記為T3、T2、T1、CK1。每處理種植1小區(qū),順序排列,小區(qū)面積14m2,密度11000株/667m2。

    處理結(jié)束當(dāng)日每處理取10株幼苗莖尖于-80℃冰箱保存,用于測定DNA甲基化水平。DAT(移栽后天數(shù),days after transplanted)12開始,每4d每小區(qū)取7株莖尖,解剖鏡下觀察花芽分化。

    13萌動種子5-azaC處理

    10月21日將種子均等置于室內(nèi)4個鋪有濾紙的發(fā)芽盒(12cm×12cm×5cm)中清水催芽。3d后將萌發(fā)種子置于20℃光照培養(yǎng)箱中,每2d添加1次5-azaC藥液,濃度分別為0(CK)、50、250、500μmol/L,記為CK2、C1、C2、C3。10d后用清水替代5-azaC藥液。15d后將子葉期幼苗移栽入大田。每處理種植1小區(qū),順序排列,小區(qū)面積及移栽密度同12。

    處理結(jié)束當(dāng)日每處理取10株子葉期幼苗莖尖于-80℃冰箱中保存,用于測定DNA甲基化水平。DAT35開始每4d每小區(qū)取7株莖尖,解剖鏡下觀察花芽分化。[JP]

    14萌動種子5-azaC加低溫處理

    10月21日將種子均等置于室內(nèi)4個鋪有濾紙的發(fā)芽盒(12cm×12cm×5cm)中清水催芽。3d后將萌發(fā)種子置于6℃光照培養(yǎng)箱中,每2d添加1次5-azaC藥液,濃度分別為0(CK)、50、250、500μmol/L,記為CK3、C4、C5、C6。10d后將發(fā)芽盒轉(zhuǎn)移至20℃光照培養(yǎng)箱,用清水替代5-azaC藥液。15d后將子葉期幼苗移栽入大田。每處理種植1小區(qū),順序排列,小區(qū)面積及移栽密度同12。

    取樣方法同13。

    15花芽分化進程

    通過解剖鏡觀察并參照劉后利[7]油菜花芽分化的分級標(biāo)準(zhǔn)確定花芽分化級別。采用公式1計算花芽分化指數(shù)以確定花芽分化進程。

    花芽分化指數(shù)=∑cfn公式1

    注:c-分化級別(1級:生長點膨大,無花原基;2級:具1-5個花原基;3級:花原基進一步增多;4級:花原基伸長;5級:花萼原基分化);f-每級別分化株數(shù);n-觀察總株數(shù)

    16莖尖DNA甲基化水平測定

    DNA提?。簠⒄绽詈仙鶾8]CTAB法提取莖尖DNA。

    DNA濃度和純度檢測:采用紫外分光光度法比色檢測DNA的濃度和純度。

    DNA水解:參照吳筱丹[9]的方法水解DNA。

    DNA甲基化水平測定:參照吳筱丹[9]高效液相色譜法(HPLC)測定DNA甲基化水平,并作部分修改。色譜柱:Varian C18柱;流動相:甲醇-5mmol/L庚烷磺酸鈉-三乙胺(10∶90∶02,v/v),pH=40,流速為07ml/min;檢測器波長:273nm。

    2結(jié)果與分析

    21低溫處理幼苗對油菜花芽分化的影響

    DAT12所有處理花芽分化指數(shù)均為100,花芽分化未開始(圖1)。DAT16 T3花芽分化開始。DAT20 T2花芽分化開始。DAT24所有處理都已經(jīng)開始花芽分化,此時花芽分化指數(shù)T3>T2>T1>CK1。DAT28各處理花芽分化指數(shù)比較結(jié)果同DAT24。

    各處理中T3分化進程最快,其次是T2、T1,CK1分化進程最慢。說明本試驗范圍內(nèi),低溫處理油菜幼苗能促進莖尖花芽分化,且低溫處理時間越長,促進效果越好。

    22 5-azaC處理萌動種子對油菜花芽分化的影響

    DAT35所有處理花芽分化均未開始(圖2)。DAT39 C1花芽分化開始。DAT43所有處理都已經(jīng)開始花芽分化,此時花芽分化指數(shù)C1>CK2>C2>C3。DAT47、DAT51各處理花芽分化指數(shù)比較結(jié)果同DAT43。

    各處理中C1分化進程最快,其次是CK2、C2,C3分化進程最慢。說明本試驗范圍內(nèi),低濃度5-azaC處理油菜萌動種子能促進莖尖花芽分化,而中高濃度5-azaC處理則抑制了莖尖花芽分化,且濃度越高,抑制效果越明顯。

    23 5-azaC加低溫處理萌動種子對油菜花芽分化的影響

    DAT35所有處理花芽分化均未開始(圖3)。DAT39所有處理都已經(jīng)開始花芽分化,此時花芽分化指數(shù)C4>CK3>C5>C6。DAT43、DAT47各處理花芽分化指數(shù)比較結(jié)果同DAT39。

    各處理中C4分化進程最快,其次是CK3、C5,C6分化進程最慢。說明本試驗范圍內(nèi),低濃度5-azaC加低溫處理油菜萌動種子能促進莖尖花芽分化,而中高濃度5-azaC加低溫處理則抑制了莖尖花芽分化,且濃度越高,抑制效果越明顯。

    對比DAT39~DAT51期間C1和C4處理結(jié)果,C4處理花芽分化指數(shù)均高于同一時期C1處理。說明本試驗范圍內(nèi),低濃度5-azaC與低溫處理對促進莖尖花芽分化有加成作用。

    對比39~51 DAT期間CK2和CK3處理結(jié)果,CK3處理花芽分化指數(shù)均高于同一時期CK2處理。說明本試驗范圍內(nèi),低溫處理油菜萌動種子也能促進莖尖花芽分化。

    24低溫處理幼苗對莖尖DNA甲基化的影響

    油菜幼苗經(jīng)不同時間低溫處理后,莖尖DNA甲基化水平均低于未處理的對照(表1),T1、T2、T3較對照分別下降了1868%、2173%和2668%。各處理與對照差異顯著,其中T3與對照差異極顯著。說明本試驗范圍內(nèi),低溫處理油菜幼苗能降低莖尖DNA甲基化水平,且處理時間越長,下降幅度越大。

    25 5-azaC處理萌動種子對莖尖DNA甲基化的影響

    DNA甲基化水平均低于未處理的對照(表1),C1、C2、C3較對照分別下降了3094%、2818%和2405%。C1、C2與對照差異顯著,C3與對照差異不顯著。說明本試驗范圍內(nèi),5-azaC處理油菜萌動種子能降低莖尖DNA甲基化水平,低濃度處理下降幅度大于中高濃度處理。

    [BT(2+1]265-azaC加低溫處理萌動種子對莖尖DNA甲基化的影響[BT)]

    油菜萌動種子經(jīng)不同濃度5-azaC加低溫處理后,莖尖DNA甲基化水平均低于未處理的對照(表1),C4、C5、C6較對照分別下降了4038%、3492%和3129%。各處理與對照差異顯著。處理之間差異不顯著。說明本試驗范圍內(nèi),5-azaC加低溫處理油菜萌動種子能降低莖尖DNA甲基化水平,低濃度處理下降幅度大于中高濃度處理。

    對比C1~C6同濃度處理結(jié)果,莖尖DNA甲基化水平C4

    對比CK2和CK3處理結(jié)果,莖尖DNA甲基化水平CK3

    對比T1和CK3處理結(jié)果,油菜幼苗經(jīng)過6d低溫處理后莖尖DNA甲基化水平為3425%,萌動種子經(jīng)過10d低溫處理后甲基化水平為3773%。說明油菜幼苗比萌動種子更容易受到低溫處理的影響。

    3小結(jié)與討論

    31低溫降低DNA甲基化水平

    本試驗表明低溫處理萌動種子或莖尖降低油菜植株莖尖DNA甲基化水平并促進花芽分化,與李梅蘭等[10]在白菜上研究結(jié)果相同。低溫降低DNA甲基化水平致使花芽分化控制基因去甲基化后得到表達,促進花芽分化,或者通過提高植株內(nèi)源赤霉素含量誘導(dǎo)植株提前抽薹,花芽分化提前[11],也可能低溫與赤霉素對花芽分化調(diào)控是兩條獨立途徑[12]。

    32花芽分化與DNA甲基化水平

    本試驗表明低濃度5-azaC能代替低溫促進油菜花芽分化,且與低溫處理有加成作用。與李梅蘭等[6]、汪炳良等[13]在白菜、蘿卜上研究結(jié)果相同。5-azaC降低植株DNA甲基化水平進而促進花芽分化,與低溫處理的加成作用可能正是因為兩者具有相同的作用途徑。甲基化水平下降可以促進花芽分化,但也會對植株產(chǎn)生其它影響,中高濃度5-azaC對植株產(chǎn)生了一定的毒害作用,造成植株體內(nèi)代謝紊亂,從而抑制了花芽分化。

    33甘藍型油菜春化類型

    本試驗表明6℃低溫處理中油雜11號萌動種子10d后植株花芽分化進程較未經(jīng)低溫處理的植株提前,說明萌動種子也能接受低溫誘導(dǎo)從而導(dǎo)致植株提前花芽分化,證明甘藍型油菜為種子春化植物,與冬小麥、蘿卜、白菜等[14]相同,與綠體春花植物甘藍[14]不同。

    34低溫處理與植株大小

    本試驗表明油菜幼苗經(jīng)過6℃低溫處理6d后DNA甲基化水平相比萌動種子經(jīng)過6℃低溫處理10d后更低。說明油菜幼苗比萌動種子更容易受到低溫處理的影響。植株幼苗各種生理代謝活動比萌動種子活躍,接受外界刺激的應(yīng)激反應(yīng)也更強烈,因而更容易受低溫處理影響。

    參考文獻

    [1]

    丁秀綺.白菜型春油菜花芽分化研究[J].作物學(xué)報,1990,16(1):83-90.

    [2] Finnegan E J, Peacock W J, Dennis E. DNA methylation, a key regulation of plant development and other processes[J]. Cur Opion in Genet and Develop, 2000(10): 217-223.

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