胡 淼,齊寶坤,謝鳳英,2,李 楊
(1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,哈爾濱 150030; 2.哈爾濱市食品產(chǎn)業(yè)研究院,哈爾濱 150028)
我國(guó)現(xiàn)行提取植物油脂的方法主要有壓榨法和溶劑浸提法,但壓榨法存在油脂提取率低的問題,溶劑浸提法存在溶劑殘留問題。水酶法是一種經(jīng)濟(jì)、綠色、安全無污染的油脂提取技術(shù)[1],同時(shí)產(chǎn)生的副產(chǎn)物——蛋白和膳食纖維具有較高的功能特性[2],但在利用水酶法提取油脂的過程中,油脂進(jìn)入水相,油料蛋白作為表面活性劑吸附在油脂表面形成穩(wěn)定的乳狀液[3],使得大量的油脂存在于乳狀液中,降低了油脂的提取率,因此研究乳狀液的穩(wěn)定性對(duì)于乳狀液的破除,提高油脂提取率至關(guān)重要。
大量研究表明乳狀液的穩(wěn)定性主要受有機(jī)溶劑、酶、溫度、鹽離子強(qiáng)度、pH等影響:遲延娜等[4]研究了水酶法提取油脂過程中由溫度和pH協(xié)同作用形成的頑固乳狀液的破除,發(fā)現(xiàn)50%的乙醇能夠明顯降低乳狀液穩(wěn)定性,使游離油的得率達(dá)到90%;Li等[5]研究了酶解對(duì)生物解離花生乳狀液穩(wěn)定性的影響,發(fā)現(xiàn)隨著酶解時(shí)間逐漸延長(zhǎng),乳狀液的界面張力增加,穩(wěn)定性逐漸降低;崔健等[6]比較了不同的環(huán)境因素(溫度、鹽離子強(qiáng)度、pH)對(duì)乳清蛋白乳狀液穩(wěn)定性的影響,結(jié)果表明pH是影響乳清蛋白乳狀液穩(wěn)定性的主要因素; Chabrand等[7]采用調(diào)節(jié)pH的方法進(jìn)行破乳,破乳率可達(dá)83%。大量的研究表明pH對(duì)于乳狀液的穩(wěn)定性有顯著的影響,但是鮮少有人進(jìn)行pH對(duì)乳狀液結(jié)構(gòu)及穩(wěn)定性機(jī)理的研究。因此,在前期對(duì)大豆乳狀液組成和相關(guān)性質(zhì)研究的基礎(chǔ)上[8],本文主要研究不同pH下乳狀液的性質(zhì)及其中蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)的變化,闡明pH影響乳狀液穩(wěn)定性的機(jī)理,為生物解離技術(shù)破除乳狀液提供理論基礎(chǔ),推進(jìn)生物解離技術(shù)的產(chǎn)業(yè)化應(yīng)用。
1.1.1 原料與試劑
大豆,東農(nóng)-42;Protex 6L 堿性蛋白酶,杰能科生物工程有限公司;十二烷基硫酸鈉(SDS)、β-巰基乙醇,美國(guó)Sigma公司;考馬斯亮藍(lán)G-250,南京生興生物技術(shù)有限公司;其他試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。
1.1.2 儀器與設(shè)備
FW100型高速萬(wàn)能粉碎機(jī),紹興科宏儀器有限公司;擠壓膨化機(jī),東北農(nóng)業(yè)大學(xué)自制;ZNCL-BS電動(dòng)磁力攪拌器;激光共聚焦顯微鏡;LGJ-1冷凍干燥機(jī);GL-21M高速冷凍離心機(jī);Mini-PROTEAN Tetra電泳儀,美國(guó)Bio-Rad Laboratories公司;TNZ1-5700傅里葉紅外光譜儀,英國(guó)Thermo Fisher公司;F2000熒光光譜儀,日本日立(Hitachi)公司;Mastersizer 2000粒度儀、Nano-ZS90Zeta電位儀,英國(guó)馬爾文儀器有限公司。
1.2.1 酶解及乳狀液分離
脫皮大豆進(jìn)行擠壓膨化預(yù)處理,按照1∶6的質(zhì)量比與蒸餾水混合均勻后,在60℃恒溫水浴鍋中加熱,2 mol/L NaOH調(diào)節(jié)pH保持在9.0左右,加入一定量的Protex 6L 堿性蛋白酶,酶解3 h,90℃下滅酶90 s,在4 500 r/min下離心20 min,離心后吸取游離油,將其余液體部分倒入分液漏斗,靜置24 h分層后,將乳狀液分離。
1.2.2 乳狀液的pH處理
酶解大豆獲得的乳狀液pH為8.25(空白)。稱取20 g原始乳狀液,分別用1 mol/L的HCl和NaOH調(diào)節(jié)原始乳狀液的pH至2、4、5、6、8、10,靜置1 h,然后在3 585g下離心10 min,分離乳狀液和水相。
1.2.3 乳狀液粒徑及電位的測(cè)定
采用Mastersizer 2000粒度儀測(cè)定乳狀液體積加權(quán)平均值(D4,3)。將乳狀液稀釋1 000倍,保持粒徑數(shù)值在測(cè)定范圍內(nèi),設(shè)定大豆油滴的折射指數(shù)(RI)為1.47,分散劑的RI為1.333,吸光值為0.001,在室溫下進(jìn)行測(cè)定。
采用Zeta電位儀測(cè)定乳狀液的Zeta電位。將乳狀液稀釋1 000倍后進(jìn)行測(cè)定,上樣體積為1 mL,測(cè)定溫度為25℃。
1.2.4 乳狀液激光共聚焦分析
大豆乳狀液樣品的激光共聚焦顯微鏡測(cè)定在室溫下進(jìn)行,采用Ar/K和He/Ne雙通道激光模式,激發(fā)光的波長(zhǎng)分別是488 nm和633 nm。分別將質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.01%的尼羅紅和質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.01%的尼羅藍(lán)溶解在異丙醇中,制成染色液。取1 mL乳狀液樣品,分別加入40 μL尼羅紅染色液和40 μL尼羅藍(lán)染色液,混合均勻后,染色20 min,取染色后的乳狀液樣品1滴放在帶凹槽的載玻片上,蓋上蓋玻片并用甘油密封。采用油鏡進(jìn)行圖像的采集,觀察的分辨率為1 024×1 024,圖像采集的范圍為5~45 μm。
1.2.5 乳狀液中蛋白質(zhì)的提取
乳狀液中蛋白提取方法采用丙酮沉淀法[9]。冰丙酮與乳狀液按照質(zhì)量體積比20 ∶1的比例混合,在-18℃下放置2 h,在4℃、12 000g下離心15 min,除去上清液,沉淀用冰丙酮洗滌至溶劑由黃色變成無色,將沉淀中溶劑揮發(fā)后凍干得到蛋白,放入4℃冰箱備用。
1.2.6 乳狀液中蛋白質(zhì)相關(guān)研究
1.2.6.1 紅外光譜的測(cè)定
利用傅里葉紅外光譜儀對(duì)乳狀液蛋白的紅外吸收光譜進(jìn)行采集。測(cè)定條件:25℃下,掃描范圍400~4 000 cm-1,分辨率為4 cm-1,掃描信號(hào)累加64次。
1.2.6.2 熒光光譜的測(cè)定
依據(jù)尹壽偉[10]的方法。將蛋白樣品分別分散于0.01 mol/L磷酸緩沖液(pH 7.0)中,配制蛋白質(zhì)量濃度為0.15 mg/mL的溶液。熒光發(fā)散光譜分析以蛋白質(zhì)分子內(nèi)部的色氨酸熒光基團(tuán)為探針,為了降低酪氨酸的貢獻(xiàn),熒光光譜的激發(fā)波長(zhǎng)為290 nm,光譜的掃描范圍為300~400 nm,激發(fā)與發(fā)射狹縫的寬度均為5 nm。
1.2.6.3 SDS-PAGE電泳分析
樣品溶于0.01 mol/L磷酸鹽緩沖溶液(pH 7.0)中,質(zhì)量濃度為15 mg/mL、20 μL的樣品溶液與10 μL上樣緩沖溶液混合均勻后,在100℃下加熱90 s,電泳上樣量為10 μL,濃縮膠和分離膠的濃度分別為5%和15%,初始電壓為80 V,待樣品進(jìn)入分離膠后將電壓調(diào)整為120 V,結(jié)束后取下膠塊,用考馬斯亮藍(lán)進(jìn)行染色,甲醇、冰乙酸進(jìn)行脫色,利用凝膠成像儀對(duì)其進(jìn)行分析。
1.2.6.4 表面疏水性的測(cè)定
依據(jù)Kato等[11]的方法,即ANS熒光探針法。將一定量的乳狀液蛋白溶于0.01 mol/L的磷酸鹽緩沖溶液(pH 7.0)中,室溫?cái)嚢? h,使樣品充分溶解,在10 000g下離心30 min,用Lowry法測(cè)定上清液中蛋白質(zhì)含量,梯度稀釋,使其濃度范圍在0.005~0.5 mol/L,40 μL 8 mmol/L的ANS溶液置于4 mL不同濃度的樣品中,充分混勻后靜置5 min,測(cè)定樣品的熒光強(qiáng)度(FI),激發(fā)波長(zhǎng)為370 nm,發(fā)射波長(zhǎng)為490 nm,狹縫寬度為5 nm。以熒光強(qiáng)度和蛋白質(zhì)濃度作圖,初始段的斜率即為蛋白質(zhì)分子的表面疏水性指數(shù)(S0)。
1.2.7 數(shù)據(jù)分析
為保證試驗(yàn)數(shù)據(jù)的準(zhǔn)確性,每組試驗(yàn)進(jìn)行3次重復(fù)試驗(yàn),并將試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行誤差分析。采用SPSS 19統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行單因素方差分析和差異顯著性分析,采用Origin 8.5軟件進(jìn)行繪圖。
圖1為不同pH條件下乳狀液的粒徑分布。
圖1 不同pH條件下乳狀液的粒徑分布
由圖1可知,乳狀液的粒徑主要呈雙峰粒度分布,主要集中在0.5~10 μm和10~100 μm,其中pH在2、4、5、6時(shí),乳狀液的粒徑分布主要集中在10~100 μm,而pH在8、10時(shí),乳狀液的粒徑分布比較廣,在pH 5時(shí)有最大的粒徑。Xiong等[12]探究不同pH下卵清蛋白/殼聚糖混合物在油水界面的乳液穩(wěn)定性,發(fā)現(xiàn)在pH 5.5時(shí),乳液的粒徑分布變大,乳液發(fā)生聚集。這一結(jié)論與本文的研究一致,產(chǎn)生這種現(xiàn)象可能是因?yàn)樵趐H 5左右為蛋白質(zhì)的等電點(diǎn),蛋白質(zhì)發(fā)生沉淀,使乳狀液粒徑增大[13]。
圖2為不同pH條件下乳狀液的Zeta電位。
圖2 不同pH條件下乳狀液的Zeta電位
由圖2可知,pH在8、10時(shí)的Zeta電位分別為-23.5 mV和-28.8 mV,表明乳狀液具有較強(qiáng)的穩(wěn)定性,在pH為4.5~4.7的范圍內(nèi)乳狀液的Zeta電位接近于0,說明乳狀液在pH 4.5~4.7的范圍內(nèi)穩(wěn)定性最低, Li等[14]研究了花生乳狀液的電位變化,發(fā)現(xiàn)在pH 8~9時(shí),花生乳狀液的電位為-36.60 mV,乳狀液具有較好的穩(wěn)定性,而在pH 3~5的范圍內(nèi)乳狀液的電位較低,穩(wěn)定性較差,這一結(jié)果與本文的研究一致。產(chǎn)生這種現(xiàn)象的原因可能是由于乳狀液中的蛋白質(zhì)在等電點(diǎn)附件發(fā)生聚合,導(dǎo)致蛋白質(zhì)不能包裹住油滴,使乳狀液的穩(wěn)定性降低。
圖3為不同pH條件下乳狀液的激光共聚焦圖。由圖3可知,pH的變化對(duì)乳狀液的微觀結(jié)構(gòu)具有顯著影響。隨著pH的增加乳狀液中油滴的尺寸呈現(xiàn)先增大后減小的趨勢(shì),在pH為6時(shí)油滴達(dá)到最大,蛋白質(zhì)形成的界面膜完全被破壞,油滴發(fā)生聚集。同酸性條件下的乳狀液相比,堿性條件下油滴尺寸更小,且分布均勻,呈現(xiàn)出均勻穩(wěn)定的外觀。這些結(jié)果說明在pH接近蛋白質(zhì)等電點(diǎn)時(shí),乳狀液穩(wěn)定性最差,油滴易于聚集形成大油滴。此外,堿性條件下比酸性條件下油滴尺寸更小,且分布更均勻,說明堿性條件下乳狀液的穩(wěn)定性更好。Li等[14]觀察了花生乳狀液的顯微結(jié)構(gòu),發(fā)現(xiàn)在花生蛋白的等電點(diǎn)處油滴尺寸較大,該結(jié)論與本文的結(jié)果相一致。表明乳狀液在等電點(diǎn)處出現(xiàn)失穩(wěn)現(xiàn)象。
注:a.pH 2;b.pH 4;c.pH 5;d.pH 6;e.pH 8;f.pH 10。
圖3 不同pH條件下乳狀液的激光共聚焦圖
2.3.1 表面疏水性
圖4為不同pH條件下乳狀液中蛋白質(zhì)的表面疏水性。
圖4 不同pH條件下乳狀液中蛋白質(zhì)的表面疏水性
由圖4可知,不同pH條件下乳狀液中蛋白質(zhì)的表面疏水性具有顯著差異,pH為5的乳狀液中蛋白質(zhì)的表面疏水性最低,當(dāng)pH遠(yuǎn)離蛋白質(zhì)等電點(diǎn)時(shí),表面疏水性逐漸增加,這是由于pH遠(yuǎn)離等電點(diǎn)會(huì)增加蛋白質(zhì)表面相同的電荷,使分子間靜電排斥作用增強(qiáng),引起蛋白質(zhì)分子結(jié)構(gòu)展開,暴露出更多分子內(nèi)部的疏水基團(tuán),導(dǎo)致表面疏水性增加[15]。在堿性條件下的乳狀液中蛋白質(zhì)的表面疏水性大于酸性條件下的,這可能是由于在堿性條件下,大豆蛋白中少量的植酸發(fā)生解離[16],這會(huì)使蛋白質(zhì)具有更高的電負(fù)性,增加了分子間的排斥力,使蛋白質(zhì)分子展開程度增大,暴露出更多的疏水殘基,導(dǎo)致堿性條件下具有更高的表面疏水性。表面疏水性的增加可以使更多的疏水基團(tuán)暴露,蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)舒展,使得蛋白質(zhì)更容易吸附在油滴的表面增加乳狀液的穩(wěn)定性。
2.3.2 SDS-PAGE
圖5為不同pH條件下乳狀液中蛋白質(zhì)的SDS-PAGE電泳圖。
注:泳道M表示蛋白質(zhì)標(biāo)樣Marker;泳道1~6分別表示pH為2、4、5、6、8、10的乳狀液蛋白。
圖5 不同pH條件下乳狀液中蛋白質(zhì)的SDS-PAGE電泳圖
由圖5可知,乳狀液中蛋白質(zhì)亞基相對(duì)分子質(zhì)量主要分布在11~63 kDa范圍內(nèi),此外還有一部分亞基分布在相對(duì)分子質(zhì)量小于11 kDa處。pH為2的乳狀液蛋白質(zhì)亞基相對(duì)分子質(zhì)量主要分布在11 kDa以下、11 kDa處和35 kDa處;當(dāng)pH為4、5、6時(shí),乳狀液蛋白質(zhì)電泳圖中所有條帶的顏色均加深,且分布在11 kDa和35 kDa處的亞基顯著增加,這可能是由于在乳狀液蛋白質(zhì)等電點(diǎn)附近,蛋白質(zhì)靜電荷趨于0,使蛋白質(zhì)產(chǎn)生聚集,導(dǎo)致相對(duì)分子質(zhì)量增加[17]。pH為8和10的乳狀液蛋白的電泳條帶具有相似的變化趨勢(shì),所有的條帶均變淺,且相對(duì)分子質(zhì)量分布與pH為2的乳狀液蛋白相近。以上結(jié)果表明,在pH接近乳狀液蛋白質(zhì)等電點(diǎn)時(shí),由于界面蛋白質(zhì)的靜電荷趨于0,靜電排斥作用較小,使蛋白質(zhì)易于聚集,導(dǎo)致相對(duì)分子質(zhì)量增加。
2.3.3 傅里葉變換紅外光譜
圖6為不同pH條件下乳狀液中蛋白質(zhì)的紅外光譜圖。
圖6 不同pH條件下乳狀液中蛋白質(zhì)的紅外光譜圖
通過對(duì)不同pH條件下的乳狀液中蛋白質(zhì)的二級(jí)結(jié)構(gòu)含量進(jìn)行計(jì)算,結(jié)果發(fā)現(xiàn)不同pH處理對(duì)乳狀液中蛋白質(zhì)的二級(jí)結(jié)構(gòu)含量具有顯著影響(P<0.05)(見表1)。
由表1可見,隨著pH的增加(pH 2~8),α-螺旋和β-轉(zhuǎn)角含量呈先降低后增加的趨勢(shì),而β-折疊和無規(guī)卷曲含量呈先增加后降低的趨勢(shì)。pH為5時(shí)α-螺旋結(jié)構(gòu)的含量最低,為(10.7±0.11)%,無規(guī)卷曲結(jié)構(gòu)的含量最高,為(28.6±0.15)%。這說明在蛋白質(zhì)等電點(diǎn)附近蛋白質(zhì)發(fā)生變性,蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)部分或全部展開,導(dǎo)致有序結(jié)構(gòu)含量降低,無序結(jié)構(gòu)含量增加;β-轉(zhuǎn)角含量降低表明蛋白質(zhì)的疏水區(qū)域暴露,導(dǎo)致表面疏水性增加[20],與圖4的研究結(jié)果一致,表明在蛋白質(zhì)等電點(diǎn)附近乳狀液的穩(wěn)定性較差。
表1 不同pH條件下乳狀液中蛋白質(zhì)的二級(jí)結(jié)構(gòu)含量 %
注:表中不同字母表示同一列數(shù)值存在顯著差異(P<0.05)。
2.3.4 乳狀液中蛋白質(zhì)色氨酸內(nèi)源熒光光譜分析
圖7為不同pH條件下乳狀液中蛋白質(zhì)的熒光強(qiáng)度及最大吸收波長(zhǎng)。
圖7 不同pH條件下乳狀液中蛋白質(zhì)的熒光強(qiáng)度及最大吸收波長(zhǎng)
由圖7可知,在pH為5時(shí),乳狀液中蛋白質(zhì)的熒光強(qiáng)度最低,這可能與pH 5在蛋白質(zhì)等電點(diǎn)附近有關(guān)。由pH 5為起始,無論pH向酸性還是堿性偏移,熒光強(qiáng)度均增加,最大吸收波長(zhǎng)(λmax)與熒光強(qiáng)度的變化趨勢(shì)相似,當(dāng)pH為2~5時(shí),λmax由(345.5±0.15)nm降低到(341.6±0.29)nm,當(dāng)pH為5~10時(shí),λmax由(341.6±0.29)nm增加到(348.0±0.37)nm,說明pH為5的乳狀液中蛋白質(zhì)的λmax最低,而當(dāng)pH遠(yuǎn)離蛋白質(zhì)等電點(diǎn)時(shí),λmax發(fā)生了紅移,這表明蛋白質(zhì)三級(jí)結(jié)構(gòu)變得更加松散,可能是當(dāng)pH遠(yuǎn)離蛋白質(zhì)等電點(diǎn)時(shí),蛋白質(zhì)肽鏈結(jié)構(gòu)適當(dāng)展開,蛋白質(zhì)的分子柔性增加,使原本包埋在蛋白質(zhì)內(nèi)部的疏水殘基暴露到極性環(huán)境中導(dǎo)致的[21],這在本文pH遠(yuǎn)離蛋白質(zhì)等電點(diǎn)使蛋白質(zhì)表面疏水性增加的結(jié)果中也可以得到證實(shí)。
通過考察不同pH下乳狀液的粒徑、Zeta電位、微觀結(jié)構(gòu)及其中蛋白質(zhì)性質(zhì),研究pH對(duì)乳狀液穩(wěn)定性的影響機(jī)理。結(jié)果發(fā)現(xiàn),pH主要是通過改變?nèi)闋钜褐械鞍踪|(zhì)結(jié)構(gòu)及性質(zhì)改變?nèi)闋钜旱姆€(wěn)定性。在蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)附近,乳狀液粒徑增大,Zeta電位接近0,乳狀液中蛋白質(zhì)的二級(jí)結(jié)構(gòu)發(fā)生變化,表面疏水性降低,從而使蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)松散,不足以穩(wěn)定乳狀液,使乳狀液穩(wěn)定性降低。