陳林軍 韓維舉
中國人民解放軍總醫(yī)院耳鼻咽喉頭頸外科
聾病教育部重點實驗室
聾病防治北京市重點實驗室
軍事聲損傷防護實驗室(北京100853)
耳蝸Corti器的上皮細(xì)胞對于很多急慢性刺激很敏感,當(dāng)受到急性刺激如聲損傷和耳毒性藥物時,可引起耳蝸Corti器的毛細(xì)胞和與其相連的螺旋神經(jīng)元損傷從而引起聽力下降[1]。目前有研究表明,加劇聲損傷及耳毒性藥物造成的毛細(xì)胞和神經(jīng)元進一步損傷的免疫應(yīng)答中有免疫細(xì)胞產(chǎn)生的活性氧(ROS)和細(xì)胞因子的參與[2],很多針對炎癥的干預(yù)治療能有效的減輕炎癥相關(guān)的神經(jīng)性耳聾的損傷水平[3,4]。30年前Fredelius和Rask-Andersen[5]第一次報道了噪聲性耳聾存在耳蝸免疫細(xì)胞的浸潤,近10年間,免疫系統(tǒng)與先前被認(rèn)為“免疫豁免”的耳蝸之間的相互關(guān)系作為一個新興的研究領(lǐng)域,其研究不斷深入。本文重點介紹巨噬細(xì)胞浸潤與聲損傷和耳毒性藥物等急性損傷后引起聽力損失間的關(guān)系。
基于內(nèi)耳血迷路屏障阻擋免疫細(xì)胞和大分子免疫蛋白侵入作用的認(rèn)識,既往認(rèn)為內(nèi)耳是“免疫豁免”器官,但近來對內(nèi)耳免疫應(yīng)答的研究發(fā)現(xiàn)免疫系統(tǒng)能夠在內(nèi)耳中起反應(yīng)[6-8],不過研究發(fā)現(xiàn)耳毒性藥物或聲損傷引起的耳蝸炎癥不是針對病原體產(chǎn)生的,該免疫反應(yīng)稱為無菌炎癥[9]。內(nèi)耳的巨噬細(xì)胞包括駐留巨噬細(xì)胞和浸潤巨噬細(xì)胞(標(biāo)記CD163+、IBA1+和CD68+),其主要分布于耳蝸外側(cè)壁、骨螺旋板、螺旋神經(jīng)元和感覺上皮等部位[1,10-14](圖1)。目前認(rèn)為這些細(xì)胞屬于先天性免疫系統(tǒng)和適應(yīng)性免疫系統(tǒng)[15]。內(nèi)耳巨噬細(xì)胞在耳蝸生理和病理方面起著重要作用,常駐巨噬細(xì)胞通過監(jiān)視、清除有害物質(zhì)和修復(fù)受損細(xì)胞來保護內(nèi)耳,但適應(yīng)性免疫系統(tǒng)會繼發(fā)釋放破壞性炎性因子導(dǎo)致細(xì)胞破壞、死亡。內(nèi)耳免疫細(xì)胞受聲損傷、耳毒性藥物等急性刺激,誘導(dǎo)血液中的單核細(xì)胞募集到受損的內(nèi)耳螺旋神經(jīng)節(jié)、基底膜和外側(cè)壁[13,16-19]。
圖1 內(nèi)耳巨噬細(xì)胞的分布:蝸螺旋管的分區(qū),包括鼓階、前庭階及中階。藍色的符號表示內(nèi)耳巨噬細(xì)胞,其分布于螺旋神經(jīng)元、外側(cè)壁及感覺上皮等部位。Fig.1 Distribution of cochlear macrophages.The division of the cochlear which includes scala vestibuli,scala media and scala tympani.Cochlear macrophages are marked by blue star,which distributes in spiral ganglion,lateral wall and sensory epithelium.
CD45最先用于識別聲損傷后浸潤耳蝸的巨噬細(xì)胞的標(biāo)記物[20],Hirose[17]結(jié)合CD45的表達和形態(tài)學(xué)特點將大多數(shù)浸潤巨噬細(xì)胞鑒定為單核細(xì)胞或巨噬細(xì)胞,隨后發(fā)現(xiàn)聲損傷后浸潤免疫細(xì)胞還包括CD45+、F4/80+、IBA1+、CD11b+和CX3CR1+巨噬細(xì)胞[13,14,20-23]。這些標(biāo)記物對于識別巨噬細(xì)胞群很重要,但并非所有浸潤巨噬細(xì)胞和常駐巨噬細(xì)胞都具有相同特征。通過細(xì)胞分選儀和流式細(xì)胞儀靈敏度的提高將進一步了解這些巨噬細(xì)胞的分子特征。目前滲透到耳蝸的特定細(xì)胞類型的鑒定仍在進行,但已了解這些細(xì)胞在聲損傷或耳毒性藥物等急性刺激后到達耳蝸的時間。
由于聲損傷與耳毒性藥物影響內(nèi)耳免疫系統(tǒng)不盡相同,因此需要了解每種損傷產(chǎn)生免疫應(yīng)答的情況,而通過檢測內(nèi)耳的細(xì)胞因子、Icam-1的表達和巨噬細(xì)胞的浸潤,很難得出內(nèi)耳產(chǎn)生整體免疫應(yīng)答的結(jié)論。目前研究發(fā)現(xiàn)在聲損傷后6h TNF-α、IL-1β、IL-6及CCL2、CCL4、CXCL12即刻表達[4,8,12,20,22,24,25]。損傷后3-4天,耳蝸中CX3CR1+和CD45+細(xì)胞的數(shù)量達到峰值[17,19]。細(xì)胞因子在聲損傷6h后開始表達,這可能是損傷即刻CX3CR1+巨噬細(xì)胞和纖維細(xì)胞活化的結(jié)果[12,19,21,26]。這些細(xì)胞因子的總體作用是誘導(dǎo)耳蝸螺旋神經(jīng)元和外側(cè)壁纖維細(xì)胞和巨噬細(xì)胞的激活,從而分泌更多的細(xì)胞因子加重炎癥。
Shi[27]發(fā)現(xiàn)在內(nèi)耳存在血管周圍常駐巨噬細(xì)胞,它具有免疫防御、組織修復(fù)及免疫監(jiān)視功能,產(chǎn)生超氧化物陰離子和炎性因子,并清除入侵的病原體、衰老壞死的細(xì)胞。楊[6]等發(fā)現(xiàn)給噪聲后CD45+免疫細(xì)胞主要出現(xiàn)在毛細(xì)胞損傷嚴(yán)重的部位,推測巨噬細(xì)胞在噪聲性耳蝸引起毛細(xì)胞的損傷后發(fā)揮免疫防御及修復(fù)功能。Okano[21]用γ射線照射殺死小鼠內(nèi)耳的骨髓造血細(xì)胞和巨噬細(xì)胞,然后用內(nèi)源性熒光標(biāo)記的骨髓細(xì)胞移植,可見內(nèi)耳的巨噬細(xì)胞重新構(gòu)建,通過巨噬細(xì)胞形態(tài)與F4/80、IBA-1、CD11b和CD68標(biāo)記染色的巨噬細(xì)胞約占80%[21,28],說明其是骨髓細(xì)胞來源的,而剩下的20%為常駐巨噬細(xì)胞,且CX3CR1標(biāo)記呈陽性。Sato[23]用GFP敲入破壞CX3CR1信號傳導(dǎo)的CX3CR1gfp/gfp小鼠模型,觀察卡那霉素治療組的耳蝸毛細(xì)胞損失隨浸潤的CD45+細(xì)胞數(shù)量增加而增加。此外將CX3CR1gfp/gfp骨髓移植到野生型小鼠中也出現(xiàn)同樣的情況,表明CX3CR1信號中斷不利于氨基糖苷類藥物暴露后的毛細(xì)胞存活。Kaur[19]發(fā)現(xiàn)用白喉毒素特異性造成毛細(xì)胞丟失的小鼠中,若沒有CX3CR1的表達則螺旋神經(jīng)元的死亡增加??傊?,這些結(jié)果表明在使用氨基糖苷類藥物后,常駐巨噬細(xì)胞的CX3CR1可能在減少巨噬細(xì)胞浸潤和毛細(xì)胞死亡方面發(fā)揮重要作用。因此,進一步研究CX3CR1+巨噬細(xì)胞對耳蝸損傷的保護作用,對于了解巨噬細(xì)胞在調(diào)節(jié)耳蝸損傷后炎癥反應(yīng)中的積極作用具有重要意義。
一些研究表明Toll樣受體4(TLR4)激活是聲損傷、耳毒性藥物刺激后導(dǎo)致耳蝸無菌炎癥的一種途徑[26]。TLR4是一種識別多種配體的模式識別受體(PRR),可在無菌炎癥過程中激活,其下游效應(yīng)是產(chǎn)生ROS和活化NF-κB[29,30]。盡管在這些研究中激活TLR4的確切配體尚不清楚,但受這些因素影響內(nèi)耳均出現(xiàn)TLR4表達的增加[18,26,31]。反過來,TLR4激活又導(dǎo)致 NF-κB 活化和 TNF-α、IL-1β、IL-6的增加[26]。而用脂多糖處理的聲損傷、氨基糖苷類和順鉑藥物的三組小鼠,發(fā)現(xiàn)內(nèi)耳炎癥增加的同時伴聽力損失的加重,而TLR4缺乏的小鼠內(nèi)耳卻表現(xiàn)出較輕的炎癥及較少的聽力損失[18,26,31]。
目前研究用小鼠模型和藥物來識別內(nèi)耳損傷引起的特定細(xì)胞因子和信號傳導(dǎo)通路。Wakabayashi[4]用IL-6R的中和抗體阻斷聲損傷后釋放的IL-6,發(fā)現(xiàn)在聲損傷3天后CD45+和IBA1+雙陽性細(xì)胞的浸潤顯著減少,同時螺旋神經(jīng)元細(xì)胞死亡減少。此外全身給藥的抗體在聲損傷后可穿過血迷路屏障,這為生物制劑在內(nèi)耳損傷中的應(yīng)用提供了可能。Sun[28]用米諾環(huán)素減少巨噬細(xì)胞的活化,從而降低浸潤巨噬細(xì)胞對毛細(xì)胞的損傷。當(dāng)米諾環(huán)素與新霉素一起給藥時,發(fā)現(xiàn)耳蝸巨噬細(xì)胞浸潤減少的同時毛細(xì)胞死亡減少,聽力損失也減少,這說明阻斷巨噬細(xì)胞誘導(dǎo)的炎癥有利于減輕新霉素引起的聽力損失。這些結(jié)果表明通過調(diào)節(jié)免疫系統(tǒng)可保護耳蝸免受聲損傷及耳毒性藥物損害,說明TLR4受體和炎性細(xì)胞因子的早期刺激在受損后的毛細(xì)胞死亡中起作用,說明存在全身性炎癥影響內(nèi)耳炎癥免疫反應(yīng)的可能。
當(dāng)組織因非病原體刺激如聲損傷、耳毒性藥物使用,產(chǎn)生的細(xì)胞產(chǎn)物稱為損傷相關(guān)分子模式(DAMP)和模式識別受體(PRR)[32]。這種PRR激活迅速引起常駐巨噬細(xì)胞的激活,釋放促炎細(xì)胞因子和活性氧,誘導(dǎo)受損細(xì)胞凋亡和巨噬細(xì)胞的浸潤[29-33]。DAMP-PRR信號轉(zhuǎn)導(dǎo)引起的早期炎癥是控制病原體或壞死組織傳播的進化保守機制。首先對炎癥反應(yīng)的是先天性免疫系統(tǒng)的細(xì)胞,即骨髓來源的巨噬細(xì)胞和中性粒細(xì)胞,其試圖通過釋放ROS、吞噬死亡細(xì)胞來消滅死亡的細(xì)胞。其次是適應(yīng)性免疫系統(tǒng)的T細(xì)胞,其在無菌炎癥部位可識別細(xì)胞損傷產(chǎn)生的自身抗原從而清除受損細(xì)胞[34]。Herranen[35]研究受噪聲刺激的小鼠,發(fā)現(xiàn)其耳蝸外側(cè)壁的應(yīng)激相關(guān)通路如JNK/c-Jun、ERK和NF-κB被激活,造成外毛細(xì)胞的損傷??梢娛茉肼暬蚨拘运幬锎碳ず螽a(chǎn)生的炎癥信號在毛細(xì)胞死亡中起作用。目前大多數(shù)研究主要集中在預(yù)防炎癥的早期階段,而忽視了免疫系統(tǒng)在炎癥中后期發(fā)揮的調(diào)節(jié)炎癥和促進傷口愈合的作用[36-39]。
目前研究已從聲損傷后的病理生理變化深入到基因調(diào)控水平,而通過RNA轉(zhuǎn)錄組測序可了解耳蝸整體如何應(yīng)對聲損傷[40]。Gratton較早比較噪聲對易受聲損傷和抗聲損傷的小鼠耳蝸外側(cè)壁和Corti器的影響[41],發(fā)現(xiàn)在噪聲后易受聲損傷組表達的免疫相關(guān)的基因比抗聲損傷組表達的更多。另外Yang[11]利用RNA測序來比較噪聲后1天的小鼠和大鼠感覺神經(jīng)上皮的基因表達,發(fā)現(xiàn)聲損傷后兩者均表現(xiàn)出免疫應(yīng)答基因的上調(diào),表明這種基因表達在哺乳動物物種中是保守的。Tan[12]進一步研究聲損傷后多個時間點的免疫應(yīng)答基因和蛋白表達,發(fā)現(xiàn)早在損傷后6h,編碼TNF-a、IL-1β和Icam-1的基因表達增加,且Icam-1蛋白在聲損傷后14天仍高表達。此外盡管這些研究使用了不同的鼠,但幾種參與炎癥反應(yīng)的免疫基因在聲損傷后均有表達[11,12,41],如 Fos、Socs3、Gpb2、Icam-1 和 CCR2。Socs3可表達降解信號分子來抑制JAK/STAT依賴性細(xì)胞因子信號傳導(dǎo)[42],調(diào)節(jié)浸潤巨噬細(xì)胞的吸附和常駐巨噬細(xì)胞的活化。Icam-1在TNF-α引起NF-κB活化后表達,通過與淋巴細(xì)胞功能相關(guān)抗原的相互作用促進血液中的細(xì)胞外滲,使巨噬細(xì)胞進入耳蝸[43]。Fos和Gbp2在聲損傷后由干擾素誘導(dǎo)激活STAT通路[44-45]。CCR2缺乏的小鼠表現(xiàn)出極大的聲損傷易感性,聲損傷后伴毛細(xì)胞的大量死亡[46]。盡管聲損傷后在耳蝸中可檢測到相關(guān)免疫基因的大量表達,但可能只是一部分細(xì)胞類型上調(diào)了這些基因。因此識別這些細(xì)胞類型將能夠特異性地了解它們對毛細(xì)胞的損傷機理。
現(xiàn)在已認(rèn)識到耳蝸內(nèi)存在著免疫細(xì)胞,但對其在維持耳蝸內(nèi)穩(wěn)態(tài)和參與炎癥調(diào)控中的作用機制的認(rèn)知仍不足。當(dāng)前對內(nèi)耳免疫系統(tǒng)的研究主要集中于聲損傷、耳毒性藥物刺激后內(nèi)耳TLR4激活、促炎細(xì)胞因子和趨化因子的釋放以及浸潤巨噬細(xì)胞的聚集,也已經(jīng)發(fā)現(xiàn)通過調(diào)節(jié)免疫系統(tǒng)可減輕內(nèi)耳炎癥產(chǎn)生的損傷。因此目前應(yīng)通過以下幾方面更多地了解聲損傷和耳毒性藥物損傷后內(nèi)耳的免疫應(yīng)答的機理。首先,識別所有進入耳蝸的免疫細(xì)胞類型。其次,探索其特定功能,以了解其分泌產(chǎn)物和細(xì)胞間的相互作用是如何引起內(nèi)耳的炎癥反應(yīng)。最后,研究每個PRR家族以更好地明確哪些DAMP在損傷后引起內(nèi)耳炎癥反應(yīng)。這些研究結(jié)果能加深對耳蝸“無菌炎癥”免疫應(yīng)答的認(rèn)識,同時指出耳毒性藥物和噪聲引起的聽力損失的預(yù)防性治療位點。