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    硫化氫對鎘脅迫下小麥幼苗的生長及生理指標(biāo)的影響

    2019-04-12 08:31:54陳亞華沈振國
    麥類作物學(xué)報(bào) 2019年3期
    關(guān)鍵詞:外源預(yù)處理幼苗

    張 蓓,鄭 翔,黃 維,陳亞華,沈振國,陸 巍

    (南京農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,江蘇南京 210095)

    隨著現(xiàn)代工業(yè)的飛速發(fā)展和礦產(chǎn)資源的過度開發(fā),各種污染物不斷排放,土壤環(huán)境污染問題日益嚴(yán)重,其中重金屬污染因其具有富集性、難降解、毒性強(qiáng)的特點(diǎn)而受到廣泛關(guān)注。我國有接近0.2億hm2的農(nóng)田遭受著不同程度的重金屬污染,每年因受重金屬污染而減產(chǎn)的糧食約有1 000萬t,合計(jì)損失達(dá)200億元[1]。尚二萍等[2]研究表明,中國糧食主產(chǎn)區(qū)耕地土壤重金屬污染點(diǎn)位超標(biāo)率平均為21.49%,污染物以Cd、Ni、Cu、Zn 和Hg 為主,Cd污染比重最高,達(dá)到了17.39%,且耕地土壤重金屬含量呈增加趨勢。

    Cd是植物生長的非必需元素,Cd2+被植物根部吸收并被運(yùn)輸至地上部分,在植物體內(nèi)積累到一定水平后,會造成植物生理生化代謝紊亂,導(dǎo)致植物抗逆性降低,甚至造成植株死亡[3-6]。小麥(TriticumaestivumL.)是我國第二大糧食作物,其產(chǎn)量和質(zhì)量直接關(guān)系國民經(jīng)濟(jì)的發(fā)展和人民的日常生活。孟自力等[7]研究指出,0.4~1.2 mmol·L-1的Cd2+對小麥種子萌發(fā)和幼苗生長有顯著抑制作用;不同小麥品種、不同種植區(qū)域?qū)︽k脅迫的響應(yīng)存在差異。因此,明確Cd2+脅迫對小麥幼苗生長的影響及外源物質(zhì)緩解Cd2+毒害的機(jī)制對小麥安全生產(chǎn)具有重要作用。

    硫化氫(H2S)是一種具有臭雞蛋氣味的氣體,已被確定為動物中繼一氧化氮(NO)和一氧化碳(CO)之后發(fā)現(xiàn)的第三種信號分子,參與哺乳動物的生理調(diào)節(jié)和疾病反應(yīng)[8-10],植物體內(nèi)也能合成少量的H2S,調(diào)節(jié)植物的生長發(fā)育[11]。近年來,許多研究發(fā)現(xiàn)外源H2S能夠提高植物對重金屬脅迫的抵抗能力,如H2S通過增強(qiáng)ATPase活性、減少Al3+的吸收以及提高抗氧化能力來緩解Al對大麥的毒害作用[12];H2S調(diào)控AsA-GSH循環(huán),緩解豌豆所受的As毒害[13];H2S通過調(diào)節(jié)半胱氨酸(Cys)代謝相關(guān)基因的表達(dá),參與Cr6+誘導(dǎo)擬南芥中Cys含量增加的過程,并且H2S和Cys共同緩解Cr6+對擬南芥根長的抑制,同時上調(diào)PCS1和PCS2表達(dá),增加金屬硫蛋白和植物螯合肽的含量,提高擬南芥對Cr6+的耐受性[14]。Mostofa等[15]研究顯示,250和500 μmol·L-1的CdCl2處理嚴(yán)重抑制水稻幼苗的生長,而添加100 μmol·L-1的NaHS能夠提高抗氧化酶活性,減輕氧化傷害,維持離子平衡,緩解Cd2+對水稻幼苗生長的抑制。此外,H2S預(yù)處理可減少胡楊胞質(zhì)中的Cd,增加Cd在胡楊液泡中的比例,緩解Cd誘導(dǎo)的細(xì)胞程序性死亡[16]。

    目前,H2S對Cd2+脅迫下的小麥幼苗的生理生化影響和作用機(jī)理尚不清楚,尤其是在光合特性方面了解較少。本試驗(yàn)利用硫氫化鈉(NaHS)作為H2S的外源供體,水培小麥幼苗至一葉一心期,添加不同濃度的NaHS預(yù)處理5 d,再用50 μmol·L-1CdCl2繼續(xù)處理5 d,然后收苗測定各項(xiàng)生理生化指標(biāo),研究外源H2S對Cd2+脅迫下的小麥幼苗生長、光合、葉綠素?zé)晒狻d含量和抗氧化特性的影響,揭示H2S提高小麥幼苗耐Cd特性的作用機(jī)制,為小麥Cd污染的防治提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    供試材料為江蘇省淮南麥區(qū)廣泛種植的小麥品種蘇科麥一號。硫氫化鈉(NaHS)為H2S的供體,DL-炔丙基甘氨酸(PAG)為催化H2S合成的L-半胱氨酸脫巰基酶的抑制劑,均購于SIGMA(Sigma-Aldrich,Shanghai),常規(guī)化學(xué)試劑(分析純)購于國內(nèi)化學(xué)試劑廠家(索萊寶科技有限公司、國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司、上海源葉生物科技有限公司等)。

    1.2 試驗(yàn)方法

    1.2.1 最佳NaHS濃度選擇

    挑選飽滿一致的小麥種子用2.5%(v/v)次氯酸鈉(NaClO)溶液消毒30 min,沖洗干凈,在28 ℃的培養(yǎng)箱中遮光催芽。發(fā)芽后,換用1/2 Hoagland營養(yǎng)液,晝夜溫度為26/18 ℃,光暗周期為16/8 h,光照強(qiáng)度為300 μmol·m-2·s-1,每隔1 d更換一次營養(yǎng)液。待小麥幼苗長至一葉一心期,挑選長勢一致的小麥幼苗移至塑料杯中培養(yǎng),隨機(jī)分為6組,其中4組用含不同濃度NaHS(10、50、100和200 μmol·L-1)的Hoagland營養(yǎng)液預(yù)處理5 d,然后用含50 μmol·L-1的CdCl2的Hoagland營養(yǎng)液繼續(xù)處理5 d;以Hoagland營養(yǎng)液處理5 d后,用含50 μmol·L-1CdCl2的Hoagland營養(yǎng)液處理5 d為Cd對照組;剩余組以Hoagland營養(yǎng)液處理10 d,為空白對照組。每個處理設(shè)置3個重復(fù),處理結(jié)束后取測定部分生長、生理生化指標(biāo)和Cd含量。

    1.2.2 最佳外源NaHS對小麥活性氧(ROS)和非蛋白巰基(NPTs)含量的影響

    由1.2.1確定最佳NaHS濃度后進(jìn)行以下4組不同的處理:(1)Hoagland處理10 d的空白對照組(Control);(2)NaHS處理5 d+Hoagland處理5 d(NaHS);(3)Hoagland處理5 d+CdCl2處理5 d(Cd);(4)NaHS處理5 d+CdCl2處理5 d(NaHS+Cd),處理結(jié)束后取倒二葉進(jìn)行活性氧(ROS)和非蛋白巰基(NPTs)含量測定。處理時期和方法同1.2.1。

    1.2.3 NaHS影響小麥生長的機(jī)理研究

    為探究NaHS對小麥生長的影響機(jī)理,用1.2.1中篩選的最佳NaHS濃度進(jìn)行8組處理:(1)Hoagland處理10 d為空白對照(Control);(2)NaHS處理5 d+Hoagland處理5 d(NaHS);(3)PAG處理5 d+Hoagland處理5 d(PAG);(4)NaHS+PAG處理5 d+Hoagland處理5 d(NaHS+PAG);(5)Hoagland處理5 d+CdCl2處理5 d(Cd);(6)NaHS處理5 d+CdCl2處理5 d(NaHS+Cd);(7)PAG處理5 d+CdCl2處理5 d(PAG+Cd);(8)NaHS+PAG處理5 d+CdCl2處理5 d(NaHS+PAG+Cd)。PAG的濃度設(shè)為1 mmol·L-1,培養(yǎng)方法同1.2.1;處理結(jié)束后測定各項(xiàng)指標(biāo)。

    1.3 測定指標(biāo)與方法

    1.3.1 幼苗生長指標(biāo)與Cd含量的測定

    各處理隨機(jī)挑選15株小麥幼苗,測量幼苗地上部和地下部的長度以及鮮重(FW)。將材料分為新葉、老葉、莖、根,置于105 ℃烘箱中殺青30 min,80 ℃下烘干至恒重(DW);Cd含量的測定參照Zhao[17]的方法,用V(HNO3)∶V(HClO4)=87∶13的混合酸消煮樣品,用2.5%稀HNO3定容,用電感耦合等離子體發(fā)射光譜儀ICP(Perkin Elmer Optima 2100DV,USA)測定Cd含量。Cd的轉(zhuǎn)運(yùn)系數(shù)定義為地上部Cd濃度與根部Cd濃度比值。

    1.3.2 幼苗生理生化指標(biāo)的測定

    1.4 數(shù)據(jù)分析

    使用SPSS 18.0對數(shù)據(jù)進(jìn)行ANOVA分析,采用Duncan test進(jìn)行多重比較。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同濃度NaHS預(yù)處理對Cd2+脅迫下小麥幼苗生長的影響

    與對照相比,不同濃度的NaHS預(yù)處理5 d對小麥幼苗的生長無明顯影響(表中未列出);而Cd2+脅迫幼苗的生長受到顯著抑制(表1),其中幼苗株高降低20.3%,根長降低22.3%,整株鮮重降低25.4%,整株干重降低24.6%。50和100 μmol·L-1的NaHS預(yù)處理能夠顯著緩解Cd2+脅迫小麥幼苗地上部生長的抑制,與Cd2+對照相比,株高分別增加6.7%和5.1%,鮮重分別增加21.9%和17.8%,干重分別增加19.8%和13.6%,而不同濃度的NaHS預(yù)處理下根長差異不顯著。說明一定濃度的外源H2S預(yù)處理能夠有效緩解Cd2+對小麥幼苗生長造成的抑制作用,對地上部分的作用效果更明顯。

    2.2 不同濃度NaHS預(yù)處理對Cd2+脅迫下小麥幼苗葉片光合色素和凈光合速率的影響

    10、50、100 μmol·L-1NaHS預(yù)處理5 d時小麥幼苗葉片中的總?cè)~綠素含量、類胡蘿卜素含量以及凈光合速率(Pn)與空白對照無顯著差異,200 μmol·L-1NaHS預(yù)處理5 d時小麥葉片的總?cè)~綠素含量和Pn較空白對照顯著降低(P<0.05,表中未列出)。如表1所示,與空白對照比較,Cd2+脅迫下幼苗的葉綠素含量、類胡蘿卜素含量和Pn均顯著降低,分別下降了28.4%、20.7%和21.7%。與單獨(dú)Cd2+處理比較,光合色素含量和Pn隨著NaHS預(yù)處理濃度的增加呈現(xiàn)先增后降特點(diǎn),50 μmol·L-1NaHS預(yù)處理下葉綠素含量、類胡蘿卜素含量和Pn顯著提高,分別提高了12.6%、15.2%和10.8%。說明一定濃度的外源H2S預(yù)處理能夠有效緩解Cd2+對小麥幼苗葉片光合色素合成的抑制和光合速率的降低,以50 μmol·L-1的NaHS預(yù)處理效果最好。

    表1 不同濃度的NaHS對Cd2+脅迫下小麥幼苗的生長指標(biāo)、葉片中光合色素含量和凈光合速率的影響Table 1 Effects of different concentration of NaHS on the growth indexes, photosynthetic pigment contents and net photosynthetic rate of wheat seedlings under Cd2+ stress

    Control:空白對照組;Cd:Cd對照組;S1+Cd~S4+Cd:不同濃度的NaHS溶液(10、50、100和200 μmol·L-1)預(yù)處理再加50 μmol·L-1的CdCl2溶液處理組。同列數(shù)據(jù)后不同字母表示處理間差異顯著(P<0.05)。下同。

    Control is the group with no treatment; Cd is the group treated with 50 μmol·L-1cadmium chloride solution; S1+Cd~S4+Cd are the groups pretreated with different concentrations of NaHS solution (10, 50, 100, 200 μmol·L-1) and then treated with 50 μmol·L-1cadmium chloride solution. Different letters following the values in the same column indicate significant differences among the treatments at 0.05 level. The same below.

    2.3 不同濃度NaHS對Cd2+脅迫下小麥體內(nèi)Cd含量和分布的影響

    由表2可知,Cd對照小麥幼苗根部和地上部分的Cd積累量分別為2 596.73 μg·g-1DW和546.99 μg·g-1DW。與Cd2+對照相比,NaHS預(yù)處理顯著降低了老葉和地上部的Cd含量,以50 μmol·L-1的NaHS預(yù)處理降低幅度最大(21.6%、9.8%),而莖稈、新葉中的Cd含量與Cd2+對照并無顯著差異;50和100 μmol·L-1的NaHS預(yù)處理顯著增加了小麥根系中的Cd含量,分別提高了24.5%和23.7%。NaHS預(yù)處理使小麥中Cd轉(zhuǎn)運(yùn)系數(shù)顯著下降,以50 μmol·L-1NaHS預(yù)處理的效果最好,降低了27.5%,因此利用這一濃度進(jìn)行下面的研究。

    2.4 H2S對Cd2+脅迫下小麥幼苗葉片中MDA、H2O2和積累的影響

    表2 H2S對Cd2+脅迫下小麥莖稈、新葉、老葉、地上部分、根系中Cd含量以及轉(zhuǎn)運(yùn)系數(shù)的影響Table 2 Effects of H2S on Cd concentration in the wheat stem, the new leaf, old leaves, shoot, root and Cd translocation factors under Cd2+ stress

    表3 H2S對Cd2+脅迫下小麥葉片中的含量和小麥根中NPTs含量的影響Table 3 Effects of H2S on MDA, H2O2, contents of wheat leaves and NPTs contents both of wheat leaves and roots under Cd2+ stress

    圖1 H2S對Cd2+脅迫下小麥葉片的DAB和NBT的染色結(jié)果

    表4 不同處理對Cd2+脅迫下小麥幼苗生長的影響Table 4 Effects of different treatments on the growth of wheat seedlings under Cd2+ stress

    2.5 H2S對Cd2+脅迫下小麥NPTs含量的影響

    較空白對照,單獨(dú)NaHS預(yù)處理顯著增加了小麥葉片和根的NPTs含量,分別增加了23.9%和98.6%;Cd2+脅迫顯著增加了根部的NPTs含量;NaHS+Cd與單獨(dú)Cd2+處理相比,葉片和根的NPTs分別增加了12.5%和49.5%(表3)。

    2.6 H2S抑制劑對Cd2+脅迫下小麥幼苗生長的影響

    如表4所示,1 mmol·L-1的PAG處理對小麥幼苗被測生長指標(biāo)均有顯著抑制作用。50 μmol·L-1的NaHS預(yù)處理后,株高和地上部干重顯著增加。在Cd2+存在下,NaHS+PAG預(yù)處理與PAG預(yù)處理相比,株高和地上部干重分別顯著提高了6.7%和29.2%;NaHS對小麥根長和地下部干重影響不顯著。說明外源NaHS預(yù)處理對Cd2+脅迫小麥的地上部生長有明顯正效應(yīng)。

    2.7 H2S抑制劑對Cd2+脅迫下小麥幼苗光合特性的影響

    Cd2+脅迫顯著降低了小麥葉片的凈光合速率(Pn)、蒸騰速率(Tr)、氣孔導(dǎo)度(Gs)和胞間CO2濃度(Ci),NaHS+Cd處理使Pn、Tr和Gs分別提高了16.3%、25.3%和29.6%,差異均顯著(表5); PAG預(yù)處理使小麥幼苗上述指標(biāo)顯著下降,而NaHS+PAG預(yù)處理使Pn和Ci顯著增加;在Cd2+脅迫下,NaHS+PAG預(yù)處理與PAG

    預(yù)處理相比,Pn、Gs和Ci分別提高了18.5%、38.9%和24.9%,差異顯著。說明外源H2S對Cd2+脅迫下小麥幼苗的光合作用具有明顯上調(diào)作用。

    2.8 H2S抑制劑對Cd2+脅迫下小麥幼苗葉片葉綠素?zé)晒鈪?shù)的影響

    如表6所示,Cd2+脅迫使熒光參數(shù)值顯著降低,ABS/CSm、TRo/CSm、DIo/CSm和ETo/CSm分別降低了10.6%、10.7%、10.0%和14.8%;除了PAG處理組,各處理下的最大光化學(xué)效率Fv/Fm與對照相比無顯著差異;Cd2+處理使光系統(tǒng)Ⅱ(PS Ⅱ)的性能指數(shù)PIABS顯著降低了18.3%;NaHS+Cd與Cd處理相比,ABS/CSm、TRo/CSm、DIo/CSm、ETo/CSm和PIABS分別提高了9.2%、9.0%、10.0%、13.0%和16.4%,差異顯著。在Cd2+脅迫下,NaHS+PAG與PAG處理相比,ABS/CSm、TRo/CSm、ETo/CSm和PIABS分別提高了7.4%、8.7%、17.6%和30.8%,差異顯著。表明H2S處理顯著改善了Cd脅迫下小麥葉片PS Ⅱ的光合性能指數(shù)與光能轉(zhuǎn)化效率。

    表5 不同處理對Cd2+脅迫下小麥幼苗光合特性的影響Table 5 Effects of different treatments on photosynthetic characteristics of wheat seedlings under Cd2+ stress

    表6 不同處理對Cd2+脅迫下小麥幼苗葉片葉綠素?zé)晒鈪?shù)的影響Table 6 Effect of different treatments on chlorophyll fluorescence parameters of wheat leaves under Cd2+ stress

    3 討 論

    Cd是植物生長發(fā)育非必需營養(yǎng)元素之一,濃度過高對植物有很強(qiáng)的毒害作用,嚴(yán)重影響植物的生長發(fā)育和代謝[24-26]。在本研究中,Cd2+脅迫顯著抑制了小麥幼苗生長。外源低濃度的NaHS預(yù)處理能夠增加小麥幼苗的株高和生物量,說明外源低濃度的NaHS預(yù)處理可以提高小麥幼苗對Cd2+脅迫的耐受能力。Tian等[27]研究發(fā)現(xiàn),鎘脅迫抑制谷子葉片光合色素合成并加速光合色素降解,降低植物葉片的光合速率。在本研究中,Cd2+處理顯著降低小麥幼苗葉片中光合色素含量,而NaHS預(yù)處理后的光合色素含量與單獨(dú)Cd2+處理相比顯著增加,與前人的報(bào)道一致[28-29];不同濃度的NaHS對小麥的凈光合速率影響與生物量、光合色素含量的變化有相似的趨勢。本研究中,Cd2+脅迫使小麥幼苗葉片中Pn、Gs和Ci顯著降低,小麥幼苗葉片Pn的降低多數(shù)由氣孔限制因素引起[30-31];而外源施加H2S能夠顯著提高Pn、Gs和Tr,說明H2S能夠維持小麥葉片較高的光合能力,這可能與NaHS預(yù)處理下小麥幼苗葉片中光合色素含量顯著增加有關(guān)。

    Liu等[32]報(bào)道,Cd脅迫對棉花葉片的最大光化學(xué)效率、量子產(chǎn)額、電子傳遞速率以及光化學(xué)淬滅的抑制與光合作用的減弱密切相關(guān)。本研究結(jié)果顯示,Cd2+顯著降低了小麥葉片的ABS/CSm、TRo/CSm、ETo/CSm以及DIo/CSm,而NaHS預(yù)處理顯著提高了以上參數(shù)值,說明H2S提高了Cd2+脅迫下小麥幼苗葉片單位激發(fā)態(tài)面積吸收的能量、捕獲的用于還原QA的能量、還原態(tài)QA通過電子傳遞再氧化的活性以及以熱的形式耗散多余的能量,從而加快電子傳遞速率、保護(hù)光合機(jī)構(gòu)。

    在正常情況下,F(xiàn)v/Fm保持在0.8左右,而逆境脅迫會對PS Ⅱ造成損傷或者發(fā)生光抑制,導(dǎo)致植物葉片F(xiàn)v/Fm顯著下降[33],但Fv/Fm對Cd2+脅迫不敏感[34]。而PIABS表示PS Ⅱ以吸收光能為基礎(chǔ)的光合性能指標(biāo),反映原初光化學(xué)反應(yīng)的最大量子產(chǎn)額以及電子傳遞的量子產(chǎn)額,相比Fv/Fm對逆境更敏感[35-36]。本研究發(fā)現(xiàn),Cd2+脅迫處理能顯著降低小麥幼苗葉片的PIABS,而外源H2S顯著提高PIABS,說明H2S提高了PS Ⅱ反應(yīng)中心的氧化還原活性。

    NaHS預(yù)處理顯著增加小麥根部對Cd的吸收積累,而地上部分Cd含量降低,推測H2S的作用是將大量的Cd固定在根中,減少向地上的轉(zhuǎn)運(yùn),從而顯著降低轉(zhuǎn)運(yùn)效率。類似的結(jié)果還出現(xiàn)在Hg2+脅迫處理的水稻幼苗中,Chen等[38]發(fā)現(xiàn)NaHS預(yù)處理增加水稻幼苗根中Hg含量,而顯著降低地上部分的Hg含量。并且本研究首次發(fā)現(xiàn)NaHS預(yù)處理使小麥老葉中Cd含量顯著降低、使新葉中Cd含量變化不顯著。原因可能與NaHS和Cd2+處理時間有關(guān),也可能是H2S會導(dǎo)致Cd在地上各部位的分配和積累產(chǎn)生差異。

    植物抵抗重金屬毒害的機(jī)制有多種,其中一種便是胞內(nèi)含硫化合物與重金屬形成毒性較低的絡(luò)合物,包括非蛋白巰基化合物(NPTs)和蛋白巰基化合物,其中NPTs又包括半胱氨酸(Cys)、谷胱甘肽(GSH)和植物螯合肽(PCs)[39]。H2S在植物體內(nèi)能夠快速氧化成過硫化物、亞硫酸鹽、硫代硫酸鹽、硫酸鹽等,從而保持較低的H2S濃度,而那些氧化產(chǎn)物通過各種催化途徑合成GSH[40],GSH是NPTs的主要組成部分,含有一個活潑的巰基基團(tuán),易被氧化,對于清除ROS、與Cd2+形成絡(luò)合物、促進(jìn)PCs合成等具有重要作用[41]。本研究發(fā)現(xiàn),H2S可促進(jìn)根部NPTs的合成來固定根中的Cd2+,減少其向地上部分的轉(zhuǎn)運(yùn)。

    綜上所述,外源H2S通過增加小麥葉片和根中NPTs的含量,絡(luò)合過量的Cd2+,減少葉片中的ROS積累,增加葉綠素含量,保護(hù)光合電子傳遞系統(tǒng),維持較高的光合能力,促進(jìn)小麥幼苗生長,提高小麥幼苗對Cd2+脅迫的耐性。

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