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      BLM解旋酶基因的克隆、表達(dá)載體構(gòu)建及表達(dá)研究

      2018-11-30 03:09:02趙佳福許厚強(qiáng)宋書(shū)弦段志強(qiáng)陳祥
      生物技術(shù)通報(bào) 2018年11期
      關(guān)鍵詞:解旋酶真核原核

      趙佳福 許厚強(qiáng) 宋書(shū)弦 段志強(qiáng) 陳祥

      (1. 貴州大學(xué)高原山地動(dòng)物遺傳育種與繁殖教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 貴州大學(xué)動(dòng)物科學(xué)學(xué)院,貴陽(yáng) 550025;2. 貴州大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,貴陽(yáng)550025;3. 貴州省大方縣農(nóng)牧局,大方 551600)

      BLM解旋酶是人類(lèi)RecQ解旋酶家族中的一員,具有RecQ解旋酶家族典型的結(jié)構(gòu)特征,在DNA的復(fù)制、重組、轉(zhuǎn)錄、修復(fù)、端粒的維持等細(xì)胞代謝過(guò)程中具有重要的作用[1]。研究表明,BLM基因的突變會(huì)導(dǎo)致Bloom綜合癥的發(fā)生[2],患者遺傳不穩(wěn)定,并易患乳腺癌、肺癌、前列腺癌和惡性腫瘤等各種癌癥[3-8],屬于高風(fēng)險(xiǎn)人群。目前,BLM基因已被定位于15q26.1區(qū)帶上,轉(zhuǎn)錄生成4.5 kb的mRNA,編碼一個(gè)由1 417個(gè)氨基酸殘基組成的分子量約為159 kD的蛋白[9]。已報(bào)道的資料顯示,BLM解旋酶主要包含鏈退火結(jié)構(gòu)域(Strand annealing domain,SA)、解旋酶結(jié)構(gòu)域(Helicase domain)、RecQ羧 基 端 結(jié) 構(gòu) 域(RecQ C-terminal domain,RQC)、解旋酶和RNA酶D羧基端結(jié)構(gòu)域(Helicase and RNaseD C-terminal domain,HRDC)和核定位信號(hào)結(jié)構(gòu)域(Nuclear localization signal domain,NLS),其中RecQ、RQC和HRDC位于BLM解旋酶氨基酸639-1 290位,見(jiàn)圖1。該區(qū)域具有類(lèi)似BLM全酶的活性,但缺乏羧基端的核定位功能和氨基端鏈退火結(jié)構(gòu)域的相關(guān)功能[10-11]。目前已發(fā)表的文章大多以BLM642-1290的核心區(qū)域?yàn)檠芯繉?duì)象,開(kāi)展BLM解旋酶結(jié)構(gòu)與功能的研究。本實(shí)驗(yàn)旨在克隆BLM解旋酶基因全長(zhǎng)4 251 bp的CDS區(qū)域,構(gòu)建BLM解旋酶全基因的重組真核表達(dá)載體和重組原核表達(dá)載體,并研究其原核細(xì)胞中的表達(dá)水平,在真核細(xì)胞中的亞細(xì)胞定位情況,以及BLM基因超表達(dá)后,對(duì)細(xì)胞核定位相關(guān)基因Ran表達(dá)水平的影響,進(jìn)一步為BLM解旋酶結(jié)構(gòu)與功能研究提供材料和奠定基礎(chǔ)。

      圖1 人BLM解旋酶全酶結(jié)構(gòu)域示意圖

      1 材料與方法

      1.1 材料

      JM109、BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞、pMD19-T vector、DL10000、DL5000 DNA Marker、 限 制 性?xún)?nèi)切酶及T4 DNA ligase(寶生物),PC3細(xì)胞、pEGFP-N3載體、pET-32a(實(shí)驗(yàn)室儲(chǔ)存),DNA 凝膠回收試劑盒、質(zhì)粒DNA小量提取試劑盒(Axygen),RNA 提取試劑盒(Omega),無(wú)內(nèi)毒素質(zhì)粒提取試劑盒(QIAGEN),2×Taq PCR Master Mix、反轉(zhuǎn)錄試劑盒(康為),F(xiàn)uGENE? HD Transfection Reagent(Roche),10%胎牛血清、RPMI1640生長(zhǎng)培養(yǎng)基(gibco)??笻is標(biāo)簽鼠單克隆抗體、HRP標(biāo)記山羊抗小鼠IgG抗體(康為),抗BLM蛋白鼠單克隆抗體(Santa Cruz Biotechnology),ECL超靈敏顯色試劑盒、TBSTw液封閉、彩虹Marker(碧云天)。

      1.2 方法

      1.2.1 引物設(shè)計(jì) 由于BLM基因較長(zhǎng),為提高擴(kuò)增效率,采用分段擴(kuò)增的方式,進(jìn)行BLM全基因的克隆。根據(jù)GenBank中登錄的BLM基因cDNA序列(NM_000057),采用 Primer Premier 5.0設(shè)計(jì)BLM1-1950,BLM1319-2735,BLM1-42513對(duì)引物,根據(jù)表達(dá)載體pET-32a載體圖譜和BLM基因全長(zhǎng)序列的特點(diǎn),分別在B1-F、B3-R中添加KpnI、XhoI酶切位點(diǎn),3對(duì)引物擴(kuò)增獲得的3條序列彼此間均具有部分重復(fù)序列,便于后續(xù)擴(kuò)增BLM1-4251全長(zhǎng)。此外 根 據(jù) GenBank中 人BLM(NM_000057)、RAN(NM_006325.4)、GAPDH(NM_001289 746.1)基因的cDNA序列,設(shè)計(jì)熒光定量PCR引物,見(jiàn)表1。

      1.2.2BLM基因的克隆 收集對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的前列腺癌PC3細(xì)胞,約5×106個(gè),采用Omega公司 RNA提取試劑盒提取細(xì)胞總RNA,反轉(zhuǎn)錄成cDNA,分別擴(kuò)增B1、B2、B3序列,EcoR I和NcoI分別單酶切B1和B3、雙酶切B2,膠回收目的片段后,T4DNA連接酶連接回收后,以回收產(chǎn)物為模板,采用B1-F、B3-R擴(kuò)增BLM1-4251全長(zhǎng)序列(圖2);電泳檢測(cè)PCR產(chǎn)物,膠回收目的片段,并與pMD-19-T 載體連接轉(zhuǎn)化大腸桿菌JM109感受態(tài)細(xì)胞。由于目的片段較大,菌液PCR同樣分為B1、B2、B3三段進(jìn)行檢測(cè),最后將檢測(cè)正確的重組質(zhì)粒pMD-19-BLM送上海英駿生物技術(shù)公司測(cè)序鑒定。

      表1 實(shí)驗(yàn)所使用的引物

      1.2.3 重組原核和重組真核表達(dá)載體的構(gòu)建 根據(jù)pET-32a(+)和pMD19-BLM載體酶切位點(diǎn)圖譜,分別采用KpnI和XhoI限制性?xún)?nèi)切酶切割兩個(gè)質(zhì)粒,回收5 900 bp的pET-32a(+)載體和4 251 bp的BLM基因兩條目的條帶,16℃過(guò)夜連接,轉(zhuǎn)化BL21感受態(tài)細(xì)胞,氨芐青霉素抗性平板篩選單克隆,挑取單克隆,搖菌并進(jìn)行菌液PCR分段檢測(cè)和雙酶切檢測(cè),最后將PCR和雙酶切鑒定均正確的pET-32a-BLM陽(yáng)性菌株,以終濃度為25%的甘油進(jìn)行-80℃保藏。同上,選擇Hind Ⅲ和BamHⅠ兩個(gè)限制性?xún)?nèi)切酶進(jìn)行雙酶切反應(yīng),膠回收4 700 bp的pEGFP-N3載體片段和4 251 bp的BLM基因目的片段,連接轉(zhuǎn)化JM109感受態(tài)細(xì)胞,采用含卡那霉素的抗性平板進(jìn)行篩選,構(gòu)建重組真核表達(dá)載體pEGFP-N3-BLM。

      圖2 BLM CDS區(qū)擴(kuò)增方案示意圖

      1.2.4 BLM解旋酶的在大腸桿菌中的表達(dá)分析 為摸索出BLM蛋白表達(dá)的最佳培養(yǎng)條件,按照培養(yǎng)溫度設(shè)為25℃和37℃兩組,每組設(shè)4個(gè)IPTG 濃度梯度,終濃度分別為0.3 mmol/L、0.5 mmol/L、0.7 mmol/L和1.0 mmol/L,180 rpm條件下?lián)u菌5 h。5 h后,按照細(xì)菌蛋白抽提試劑盒說(shuō)明裂解細(xì)胞,提取總蛋白,并分離上清和沉淀,同時(shí)設(shè)含空質(zhì)粒pET-32a(+)的菌株為對(duì)照組。6%分離膠進(jìn)行SDS-PAGE分析,按彩虹Marker5 mL/孔、蛋白樣品30 mL/孔進(jìn)行上樣,電壓:80 V 30 min,120 V 60 min,電泳結(jié)束后120 V 2.5 h轉(zhuǎn)移至PVDF膜上,TBSTw液封閉10 min,抗His標(biāo)簽鼠一抗4℃孵育過(guò)夜,HRP山羊抗小鼠二抗孵育1 h,DAB顯色,熒光化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)(Bio-Rad公司)對(duì)Western-blot進(jìn)行結(jié)果分析。

      1.2.5 BLM解旋酶在PC3細(xì)胞中的亞細(xì)胞定位分析 首先采用PSORT II Prediction在線分析軟件對(duì)BLM解旋酶氨基酸序列進(jìn)行分析,對(duì)其在細(xì)胞中可能的表達(dá)部位進(jìn)行預(yù)測(cè)。然后將PC3細(xì)胞按照3×105/孔接種于6孔板中,37℃,5% CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待細(xì)胞長(zhǎng)至80%時(shí),按照FuGENE?HD Transfection Reagent的操作說(shuō)明,將純化后的pEGFP-N3和pEGFP-N3-BLM兩個(gè)質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)染PC3細(xì)胞,通過(guò)細(xì)胞轉(zhuǎn)染結(jié)合熒光共定位的方法對(duì)預(yù)測(cè)結(jié)果進(jìn)行驗(yàn)證。具體操作步驟:(1)首先棄去6孔板中培養(yǎng)基,用PBS清洗培養(yǎng)孔兩次,每孔加入2 mL的含血清不含抗生素的DMEM/F-12培養(yǎng)基,置于37℃、5% 的CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng);(2)取6支無(wú)菌PCR管,每管先加入2 μg轉(zhuǎn)染質(zhì)粒,再加入10 μL轉(zhuǎn)染試劑,移液器輕輕混勻,再加入100 μL Opti-MEM?輕輕混勻,室溫孵育30 min;(3)將轉(zhuǎn)染混合物對(duì)號(hào)加入6孔板中,十字交叉法輕輕振蕩混勻,繼續(xù)置于5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

      轉(zhuǎn)染細(xì)胞36 h后開(kāi)始染核,具體操作步驟如下:(1)用PBS浸洗細(xì)胞3次,加入事先預(yù)冷的4%多聚甲醛固定細(xì)胞20 min;(2)PBS浸洗細(xì)胞3次,加入0.25%Triton X-100(PBS配制)室溫通透5 min;以下步驟需在暗處進(jìn)行:(3)PBS浸洗細(xì)胞3次,吸干,滴加DAPI 37℃避光孵育5 min進(jìn)行細(xì)胞核染色;(4)PBS 清洗3次,吸干多余液體,自然干燥后,熒光顯微鏡下觀察實(shí)驗(yàn)結(jié)果;(5)采用PhotoshopCS3軟件將融合蛋白熒光圖譜與對(duì)應(yīng)的細(xì)胞核熒光圖譜進(jìn)行Merge,通過(guò)觀察分析兩者的熒光共定位情況,判斷融合蛋白的亞細(xì)胞定位。

      1.2.6 qRT-PCR檢測(cè)BLM基因超表達(dá)后對(duì)Ran的影響 轉(zhuǎn)染細(xì)胞48 h后,提取細(xì)胞總RNA,反轉(zhuǎn)錄后采用SYBR Green熒光染料法檢測(cè)BLM和Ran基因的表達(dá)情況。熒光定量PCR反應(yīng)體系:2×QuantiFast SYBR Green PCR Master Mix 5 μL、Sense Primer 0.5 μL、Anti-sense Primer 0.5 μL、cDNA 模 板 1 μL、ddH2O 3 μL、Total 10 μL,每個(gè)樣品做 3 個(gè)重復(fù) ;反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性2 min、95℃變性30 s、60℃退火30 s,反應(yīng)進(jìn)行40個(gè)循環(huán)后分析溶解曲線。隨后,采用2-△△Ct方法對(duì)實(shí)時(shí)熒光定量PCR結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,2-△△Ct表示目的基因的相對(duì)表達(dá)量。最后采用SPSS Statistics 19.0 數(shù)據(jù)分析軟件和GraphPad Prism 5 圖形分析軟件分別進(jìn)行相關(guān)數(shù)據(jù)的統(tǒng)計(jì)分析和圖表處理。

      1.2.7 BLM蛋白在PC3細(xì)胞中表達(dá)量的檢測(cè) 提取轉(zhuǎn)染pEGFP-N3-BLM載體36 h后的PC3細(xì)胞總蛋白,以轉(zhuǎn)染pEGFP-N3空載體的PC3細(xì)胞為對(duì)照,采用1.2.4中目標(biāo)蛋白分離鑒定方法分離BLM蛋白,同樣方法轉(zhuǎn)膜封閉,隨后以抗BLM蛋白小鼠單克隆抗體為一抗4℃孵育過(guò)夜,HRP山羊抗小鼠二抗孵育1 h,ECL顯色,熒光化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)分析BLM蛋白在PC3細(xì)胞中的表達(dá)情況。

      2 結(jié)果

      2.1 pMD-19-BLM克隆載體的鑒定

      以B1、B2、B3三段序列的連接產(chǎn)物為模板,擴(kuò)增BLM基因 CDS序列,膠回收后連接pMD19載體,轉(zhuǎn)化JM109細(xì)胞。PCR檢測(cè)和雙酶切檢測(cè)結(jié)果分別見(jiàn)圖3。由圖3-A可見(jiàn),6個(gè)質(zhì)粒在4 251 bp處均出現(xiàn)預(yù)期條帶;由圖3-B可見(jiàn),KpnⅠ與XhoⅠ進(jìn)行雙酶切后,結(jié)果1-4泳道均在4 251 bp和2 692 bp左右出現(xiàn)兩條亮帶。經(jīng)上海英駿生物技術(shù)公司對(duì)4個(gè)質(zhì)粒進(jìn)行測(cè)序鑒定,測(cè)序結(jié)果經(jīng)MegAlign分析表明,3、4號(hào)質(zhì)粒BLM基因序列發(fā)生了移碼突變,2號(hào)質(zhì)粒盡在aa192位處發(fā)生有義突變,由天冬酰胺(N)突變?yōu)樘於彼幔―),其它均為無(wú)義突變,與GenBank中公布的BLM氨基酸序列(NM_000057)同源性最高。由于天冬酰胺屬于極性中性氨基酸,天冬氨酸屬于酸性氨基酸,兩者所帶R基團(tuán)均具有一定的親水性,因此該氨基酸的突變對(duì)BLM解旋酶蛋白功能的影響不大,所以保藏2號(hào)質(zhì)粒對(duì)應(yīng)菌株,作為后期構(gòu)建原核和真核表達(dá)載體的中間載體。

      2.2 重組原核和重組真核表達(dá)載體的鑒定

      將連接好的重組原核和重組真核表達(dá)載體分別轉(zhuǎn)化BL21和JM109細(xì)胞后,挑取陽(yáng)性克隆進(jìn)行培養(yǎng),并提取質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切鑒定,結(jié)果見(jiàn)圖4。由圖4-A可見(jiàn),僅6號(hào)泳道質(zhì)粒在5 900 bp和4 251 bp出現(xiàn)目的條帶,大小符合pET-32a-BLM酶切圖譜,說(shuō)明6號(hào)質(zhì)粒酶切成功。由圖4-B可見(jiàn),1-5號(hào)泳道,均在4 700 bp和4251 bp出現(xiàn)兩條目的條帶,大小符合pEGFP-N3-BLM酶切圖譜。對(duì)酶切成功的原核和真核表達(dá)質(zhì)粒進(jìn)行測(cè)序鑒定,并經(jīng)MegAlign序列比對(duì)軟件進(jìn)行分析,結(jié)果顯示重組原核和重組真核表達(dá)載體與前期構(gòu)建成功的pMD19-BLM亞克隆載體序列同源性達(dá)100%,均可用于后期蛋白質(zhì)的表達(dá)實(shí)驗(yàn)。

      圖3 轉(zhuǎn)染JM109感受態(tài)細(xì)胞后PCR和雙酶切檢測(cè)pMD19-BLM

      圖4 pET32-BLM和pEGFP-BLM表達(dá)載體的雙酶切檢測(cè)

      圖5 BLM解旋酶在BL21中的表達(dá)

      2.3 BLM解旋酶的在大腸桿菌中的表達(dá)結(jié)果

      為研究BLM解旋酶在大腸桿菌中的最優(yōu)表達(dá)條件,實(shí)驗(yàn)設(shè)置了5個(gè)IPTG濃度,兩個(gè)培養(yǎng)溫度,結(jié)果(圖5)發(fā)現(xiàn)IPTG終濃度對(duì)BLM解旋酶的表達(dá)影響不大,而溫度對(duì)BLM解旋酶的表達(dá)影響較大,且在25℃時(shí)表達(dá)量較高。Western-blot檢測(cè)結(jié)果(圖5-C)表明,構(gòu)建的pET-32a-BLM原核表達(dá)載體能夠在大腸桿菌中正確表達(dá),且在25℃時(shí)表達(dá)量較高。

      2.4 BLM基因的亞細(xì)胞定位

      PSORT II Prediction分析軟件對(duì)BLM解旋酶氨基酸分析(表 2)表明,BLM蛋白87.0%集中在細(xì)胞核中表達(dá),4.3%在細(xì)胞質(zhì)中表達(dá),4.3%在細(xì)胞骨架中表達(dá),4.3%在質(zhì)膜中表達(dá)。經(jīng)細(xì)胞轉(zhuǎn)染,DAPI染核處理,BLM解旋酶的熒光共定位結(jié)果(圖6)可見(jiàn),GFP蛋白在整個(gè)中均有表達(dá),而GFP-BLM融合蛋白主要集中在細(xì)胞核中表達(dá),說(shuō)明BLM主要在細(xì)胞核中表達(dá),這與軟件預(yù)測(cè)結(jié)果相同。

      表2 PSORT II Prediction軟件分析BLM蛋白的亞細(xì)胞定位

      圖6 BLM解旋酶在PC3細(xì)胞中的熒光定位圖

      2.5 Western bloting結(jié)果和熒光定量PCR結(jié)果

      Western bloting結(jié)果(圖7-A)表明,轉(zhuǎn)染pEGFP-N3-BLM后,與對(duì)照組相比,BLM解旋酶在翻譯水平獲得了超表達(dá)。熒光定量PCR結(jié)果(圖7-B)也表明,BLM基因在轉(zhuǎn)錄水平與對(duì)照組相比實(shí)現(xiàn)了超標(biāo)達(dá),且達(dá)到了極顯著性差異(P<0.01);實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組相比,蛋白入核相關(guān)基因Ran表達(dá)量下降,與對(duì)照組相比也達(dá)到了極顯著性差異(P<0.01)。

      圖7 BLM超表達(dá)后相關(guān)基因在轉(zhuǎn)錄水平和翻譯水平的表達(dá)情況

      3 討論

      在人類(lèi)5種RECQ解旋酶中,BLM、WRN、RECQ4基因的突變分別會(huì)導(dǎo)致布魯姆綜合征(Bloom syndrome,BS)、 沃 納 綜 合 征(Werner syndrome,WS)和先天性血管萎縮皮膚異色綜合征(Rothmund Thomson syndrome,RTS)3 種不同的疾病[2],其中BS患者最典型的特點(diǎn)是細(xì)胞中姐妹染色單體交換率(Sister chromatid exchanges,SECs)比正常人高出10倍。BLM基因編碼區(qū)為4 251 bp,編碼1 417個(gè)氨基酸殘基,蛋白分子量約為159 kD,由于全蛋白分子量大,難以表達(dá)純化,因此關(guān)于BLM全酶活性的研究一直受到限制。BLM639-1290區(qū)段含有Helicase、RecQ-Ct和HRDC結(jié)構(gòu)域,Helicase的主要功能是負(fù)責(zé)DNA的結(jié)合、易位、解鏈和偶聯(lián)ATP水解過(guò)程;RecQ-Ct作為RecQ解旋酶家族所特有的結(jié)構(gòu)域,具有DNA結(jié)合和解鏈的活性,也與蛋白質(zhì)折疊有關(guān),但并不結(jié)合ATP;HRDC結(jié)構(gòu)域能輔助性結(jié)合DNA進(jìn)而調(diào)節(jié)其解鏈功能,也可增強(qiáng)和穩(wěn)定BLM解旋酶與DNA的結(jié)合,但不具有催化活性[12]。因此,這3個(gè)結(jié)構(gòu)域共同組成了BLM解旋酶的核心區(qū),并具有全酶類(lèi)似的活性,已成為研究者開(kāi)展BLM全酶功能研究的首選對(duì)象。然而本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),在缺乏C端的BLM639-1290核心區(qū),蛋白亞細(xì)胞定位主要集中在細(xì)胞質(zhì)中,對(duì)BLM蛋白行使其主要功能造成較大影響。同時(shí),最新研究也表明,BLM解旋酶N端關(guān)鍵氨基酸殘基的磷酸化、泛素化和類(lèi)泛素化修飾在修復(fù)損傷的DNA[13-15]、增強(qiáng)蛋白間的相互作用維持蛋白質(zhì)的穩(wěn)定性[16-17]、維持基因組(包括端粒和染色體)穩(wěn)定性[18-19]、促進(jìn)細(xì)胞凋亡[4]等方面具有重要作用??梢?jiàn)BLM639-1290核心區(qū)在開(kāi)展體內(nèi)功能驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)時(shí),不能準(zhǔn)確反應(yīng)BLM全蛋白的相關(guān)功能。

      因此,本研究通過(guò)分段擴(kuò)增的方法,旨在克隆BLM解旋酶全蛋白。結(jié)果成功克隆了人BLM解旋酶全CDS區(qū),構(gòu)建了人BLM基因的重組原核表達(dá)載體pET-32a-BLM和重組真核表達(dá)載體pEGFP-N3-BLM。原核表達(dá)結(jié)果發(fā)現(xiàn),不同IPTG濃度對(duì)BLM蛋白的表達(dá)影響不大,低溫有助于BLM蛋白表達(dá)量的提高,但在室溫環(huán)境25℃、搖床轉(zhuǎn)速180 r/min條件下,BLM蛋白主要以包涵體形式存在。研究表明,外源基因在大腸桿菌中的表達(dá)與多重因素有關(guān),例如蛋白分子量的大小、培養(yǎng)溫度、搖床轉(zhuǎn)速、IPTG濃度以及培養(yǎng)液營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的豐富程度等,低溫、低轉(zhuǎn)速及適當(dāng)降低培養(yǎng)基營(yíng)養(yǎng)成分均有助于蛋白質(zhì)的可溶性表達(dá),因?yàn)樵谶@些條件下,細(xì)菌生長(zhǎng)緩慢,不易形成包涵體。因此,根據(jù)論文實(shí)驗(yàn)結(jié)果,后期應(yīng)在同一IPTG濃度下,開(kāi)展不同低溫條件、不同低搖床轉(zhuǎn)速、及不同營(yíng)養(yǎng)成分培養(yǎng)基條件下的蛋白表達(dá)條件優(yōu)化實(shí)驗(yàn)。

      真核表達(dá)結(jié)果發(fā)現(xiàn),PSORT II Prediction軟件和亞細(xì)胞定位結(jié)果均表明BLM全蛋白的亞細(xì)胞定位主要集中在細(xì)胞核中,部分在細(xì)胞質(zhì)中,其中細(xì)胞核中占87.0%,細(xì)胞質(zhì)中占4.3%,細(xì)胞骨架中占4.3%,質(zhì)膜中占4.3%;這與該蛋白在細(xì)胞質(zhì)核糖體中合成,隨后轉(zhuǎn)運(yùn)至細(xì)胞核中行使其主要生理功能相吻合。此外,為進(jìn)一步證明BLM蛋白主要在細(xì)胞核中表達(dá),本研究通過(guò)熒光定量PCR試驗(yàn),檢測(cè)入核關(guān)鍵蛋白R(shí)an的表達(dá)情況。Ran 蛋白是一種 G 蛋白,與單分子鳥(niǎo)嘌呤核苷酸形成結(jié)合體(Ran-GTP)調(diào)節(jié)被轉(zhuǎn)運(yùn)物復(fù)合體的組裝和解體,在細(xì)胞核中釋放出攜帶NLS 的靶蛋白[20]。結(jié)果發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染pEGFP-N3-BLM質(zhì)粒48 h后,BLM基因?qū)崿F(xiàn)了超表達(dá),而Ran基因表達(dá)量卻有所下降。分析原因,可能主要與檢測(cè)時(shí)間點(diǎn)的選擇有關(guān)。轉(zhuǎn)染后48 h雖然BLM仍處于高表達(dá)狀態(tài),但細(xì)胞為維持自身正常生命代謝,可能會(huì)通過(guò)調(diào)節(jié)Ran蛋白的表達(dá)量來(lái)阻止BLM的持續(xù)入核,因此在48 h 檢測(cè)Ran基因,其表達(dá)量在轉(zhuǎn)錄水平會(huì)明顯降低。Western Blotting檢測(cè)證實(shí)構(gòu)建的真核表達(dá)載體和原核表達(dá)載體均能在PC3細(xì)胞和BL21細(xì)胞中表達(dá)出一個(gè)分子量約為179 kD 的蛋白質(zhì),與預(yù)測(cè)分子量大小基本一致,說(shuō)明構(gòu)建的兩個(gè)表達(dá)載體正確無(wú)誤。

      4 結(jié)論

      成功克隆了BLM基因CDS區(qū),構(gòu)建了pEGFPN3-BLM真核表達(dá)載體和pET-32a-BLM原核表達(dá)載體,并通過(guò)亞細(xì)胞定位實(shí)驗(yàn)證明了BLM蛋白主要在細(xì)胞核中表達(dá),Western Blotting實(shí)驗(yàn)證實(shí)論文構(gòu)建的原核表達(dá)載體和真核表達(dá)載體均能在相應(yīng)的宿主細(xì)胞中正確表達(dá)。

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