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    轉(zhuǎn)桃PpCuZnSOD基因大豆的耐旱性

    2018-09-10 08:29:08楊艷麗楊勇李大紅李鴻雁
    江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報 2018年5期
    關(guān)鍵詞:耐旱性轉(zhuǎn)基因大豆

    楊艷麗 楊勇 李大紅 李鴻雁

    摘要:為探索桃(Prun,us persica L.)銅/鋅超氧化物歧化酶基因(PpCuZnSOD)在植物抗干旱脅迫中的作用,應(yīng)用農(nóng)桿菌介導(dǎo)法,將PpCuZnSOD基因轉(zhuǎn)入大豆品種中黃13中。Southern印跡分析證實PpCuZnSOD基因已整合到大豆基因組中。定量PCR分析結(jié)果表明,轉(zhuǎn)基因大豆中PpCuZnSOD表達(dá)水平均明顯增加。用150/0 PEG4OOO模擬干旱脅迫時,轉(zhuǎn)基因大豆種子萌發(fā)率與主根長顯著高于非轉(zhuǎn)基因大豆。在干旱10 d條件下,轉(zhuǎn)基因大豆與非轉(zhuǎn)基因大豆相比,超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化氫酶(CAT)和過氧化物酶(POD)活性增加,而丙二醛(MDA)含量下降,葉綠素含量降低較少?;钚匝酰≧OS)染色結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)基因植株在干旱脅迫下活性氧少于非轉(zhuǎn)基因植株。復(fù)水后4d,轉(zhuǎn)基因大豆的成活率顯著高于非轉(zhuǎn)基因大豆。這些結(jié)果表明,PpCuZnSOD能提高大豆的耐旱性。

    關(guān)鍵詞:轉(zhuǎn)基因;耐旱性;大豆;Pp CuZn,SOD基因

    中圖分類號:S565.103.53

    文獻(xiàn)標(biāo)識碼:A

    文章編號: 1000-4440( 2018)05-0978-06

    寒冷、干旱、澇害等環(huán)境脅迫可產(chǎn)生有毒自由基,危害農(nóng)作物生產(chǎn)?;钚匝酰≧OS)對細(xì)胞具有潛在的毒性,通過氧化脂質(zhì)、核酸和蛋白質(zhì)而破壞正常的新陳代謝。一些研究結(jié)果表明,ROS少量存在時,可以作為重要的信號分子發(fā)揮作用,參與控制病原體防御、激素信號傳導(dǎo)、應(yīng)激反應(yīng)和植物生長發(fā)育等過程。然而,當(dāng)活性氧產(chǎn)生量增加時,它們能夠損傷甚至殺死植物細(xì)胞。但是,植物已經(jīng)進(jìn)化出一些防御機(jī)制來減輕不利環(huán)境條件造成的損害。例如,一些ROS清除酶,包括超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)、過氧化氫酶(CAT)和過氧化還原酶(PRXR),可以清除超氧陰離子(02-)等氧化物,從而保護(hù)植物免受環(huán)境脅迫。

    超氧化物歧化酶(SOD)是參與ROS降解的第一個酶,能把超氧陰離子轉(zhuǎn)換成H202。SOD有幾種異構(gòu)體,異構(gòu)體類別取決于活性位點上的金屬輔因子,例如,錳超氧化物歧化酶(MnSOD)、銅/鋅超氧化物歧化酶(CuZnSOD)、鐵超氧化物歧化酶(FeSOD)和鎳超氧化物歧化酶(NiSOD)等。CuZnSOD是細(xì)胞質(zhì)、細(xì)胞核和線粒體膜間隙中的主要自由基清除劑。在脅迫狀態(tài)下,SOD活性和其轉(zhuǎn)錄表達(dá)水平增高。有研究結(jié)果表明,在干旱和鹽脅迫下玉米和番茄中MnSOD和CuZnSOD高水平表達(dá),這些有較高活性抗氧化酶的植物更耐鹽、干旱或氧化脅迫,高鹽和干旱脅迫能夠改變抗氧化酶水平,在很大程度上提高幼苗的抗逆性。逆境條件下,水稻鹽敏感品種SOD水平顯著高于耐鹽品種。過表達(dá)水稻葉綠體OsCu/ZnSOD基因的轉(zhuǎn)基因株系在NaCl和NaHCO,脅迫下發(fā)芽率顯著高于非轉(zhuǎn)基因株系。也有研究結(jié)果表明在煙草葉綠體中增強(qiáng)鋅超氧化物歧化酶的表達(dá)后葉綠體對甲基紫精銅(MV)的耐受性也增強(qiáng)。在轉(zhuǎn)基因馬鈴薯和擬南芥上也有相似的現(xiàn)象。因而,鹽脅迫和干旱脅迫下植物SOD活性的增加是緩解逆境損傷的一個步驟。

    大豆是一種重要的農(nóng)業(yè)作物,為人類主要植物蛋白質(zhì)來源和植物油來源。在環(huán)境脅迫下,大豆往往在其細(xì)胞中積累活性氧,影響其生長發(fā)育和產(chǎn)量。Guttikonda等把擬南芥DREBID轉(zhuǎn)錄因子導(dǎo)人大豆中,在缺水時,與對照相比,轉(zhuǎn)基因植株能保持較高的相對含水量,而且存活率顯著高于非轉(zhuǎn)基因植株。此外,與非轉(zhuǎn)基因植株相比,轉(zhuǎn)基因植株還保持了17%~24%的葉片細(xì)胞膜穩(wěn)定性,說明耐旱性增強(qiáng)。李大紅等將苜蓿(Medicago sativa)DREB1基因?qū)舜蠖?,獲得rd29A和CaMV-35S 2類啟動子驅(qū)動的Ms DREB1轉(zhuǎn)基因大豆,在嚴(yán)重干旱脅迫下,這2種啟動子轉(zhuǎn)基因株系均有一定耐旱能力。秦迪等發(fā)現(xiàn)在干旱條件下,8個轉(zhuǎn)菠菜BADH基因大豆株系葉片中BADH基因表達(dá)量較高,轉(zhuǎn)基因大豆發(fā)芽指數(shù)高于非轉(zhuǎn)基因大豆,在8個轉(zhuǎn)基因大豆材料中有7個增產(chǎn)。魏崍等利用農(nóng)桿菌介導(dǎo)法獲得過表達(dá)AtCBF4基因和過表達(dá)Bo WS基因的大豆株系,這2個株系均有很強(qiáng)的耐旱性。本研究將桃PpCuZn,SOD基因通過農(nóng)桿菌介導(dǎo)法導(dǎo)人大豆基因組中,在干旱脅迫條件下檢測轉(zhuǎn)基因大豆苗期的耐旱性及其相關(guān)生理指標(biāo),以期獲得具有一定應(yīng)用價值的耐旱大豆新種質(zhì),為篩選具有育種應(yīng)用價值的材料奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 植物材料和菌株

    大豆品種中黃13號由駐馬店農(nóng)業(yè)科學(xué)院提供。大腸桿菌DH5a和根癌農(nóng)桿菌EHA105菌株均由本實驗室保存。

    1.2 質(zhì)粒載體和試劑

    克隆載體pMD-18和DNA聚合酶購自于TaKa-Ra(中國大連)有限公司,pCAMBIA1301為本實驗保存。TRIzol試劑購自Sigma公司,其他試劑為進(jìn)口或國產(chǎn)分析純。

    1.3 方法

    1.3.1 質(zhì)粒構(gòu)建與轉(zhuǎn)化 根據(jù)GenBank中桃基因序列(XP-021817567)設(shè)計引物Pl(5-CG-GATCCATGGTGAAAGGCGTTGCTGTTC-3') 和 P2(5'- CGAGCTCTCAGTTTTGGAGACCAATAATA-3'),T劃線為相應(yīng)酶切位點。用TRIzol試劑提取RNA,按說明書方法逆轉(zhuǎn)錄cDNA第一鏈及雙鏈DNA。PCR反應(yīng)體系(25μl)為:12μl ddH20,lμI模板,10μlEx Taq Mix,上、下游引物各lμl。反應(yīng)條件為:95℃預(yù)變性5min:95℃變性60s,53℃退火30s,72℃延伸45s,共35個循環(huán);72℃延伸10 min。擴(kuò)增所得片段連接到T載體上。送上海生工公司測序后,與GenBank序列進(jìn)行同源性比對。將載有目的基因PpCuZnSOD序列的T載體和表達(dá)載體pCAMBIA1301分別用限制性核酸內(nèi)切酶BamH I、SacI雙酶切(圖1),1.2%瓊脂糖電泳檢測酶切結(jié)果。使用DNA回收試劑盒回收目的基因片段和表達(dá)載體片段.1.2%瓊脂糖電泳檢測回收效果,將目的基因片段50ng與載體17 ng加入到緩沖液中,加入T4連接酶lμl(10ng/μl),4℃過夜連接。轉(zhuǎn)化后用PCR與雙酶切檢測質(zhì)粒構(gòu)建是否成功。用凍融法將表達(dá)載體轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌中。

    1.3.2 轉(zhuǎn)基因大豆株系的獲得 大豆轉(zhuǎn)化采用農(nóng)桿菌介導(dǎo)的子葉節(jié)轉(zhuǎn)化法。用50μg/ml潮霉素篩選抗性轉(zhuǎn)基因植株??剐赞D(zhuǎn)基因大豆植株經(jīng)練苗后進(jìn)行盆栽。

    1.3.3 轉(zhuǎn)基因大豆Southem blot檢測參照Murraym等的CTAB法提取大豆基因組DNA。PpCuZn,SOD基因PCR分析:引物為P3(5-GAATCATCAACT-TCACCCAG-3')、 P4 (5-CCAATAATACCACAAG-CAAC-3'),模板為大豆基因組DNA,復(fù)性溫度為55℃,反應(yīng)條件同方法1.3.1。用EcoR I內(nèi)切酶在37℃下酶解大豆基因組DNA。以地高辛隨機(jī)標(biāo)記的PpCuZnSOD基因全長作為探針進(jìn)行Southem雜交檢測,具體方法參照德國羅氏地高辛說明書(DIG DNALabeling and Detection Kit,Roche)進(jìn)行。

    1.3.4 轉(zhuǎn)基因植株mRNA RT-qPCR檢測 對陽性植株的PpCuZn,SOD基因表達(dá)量進(jìn)行分析。用TR-Izol試劑提取轉(zhuǎn)基因大豆葉片RNA.用紫外分光度計測定260 nm吸光度與280 nm吸光度比值,計算RNA濃度。參照SMART cDNA synthesis Kit說明書合成cDNA第一鏈。在ABI 7500實時檢測系統(tǒng)上進(jìn)行qRT-PCR檢測,試劑為Power Sybr Green PCR試劑(ABI)。熒光定量PCR引物為P5(5- GAAT-CATCAACTTCACCCAGGA-3')和P6 (5-CCAATA-ATACCACAAGCAACCC-3')。Actin,基因作為內(nèi)參,上游引物為5'-TGATGGTGTGAGTCACACTGTACC-3,下游引物為5-GGACAATGGATGGGCCAGACTC-3。反應(yīng)體系參照文獻(xiàn)。所有PCR進(jìn)行3個重復(fù),并用同一個條件進(jìn)行測試。采用兩步法PCR擴(kuò)增標(biāo)準(zhǔn)程序:50℃下2min,95℃下預(yù)變性10min;95℃下15s,60℃下45s,循環(huán)40次?;蚩截悢?shù)的定量采用雙標(biāo)準(zhǔn)曲線法。

    1.3.5 轉(zhuǎn)基因大豆耐旱性分析 將檢驗正確的轉(zhuǎn)基因和野生型(對照)大豆種子進(jìn)行萌發(fā)試驗,分別將轉(zhuǎn)基因大豆與對照用15% PEG4000處理,7d后,記錄主根長及種子萌發(fā)率。另外對轉(zhuǎn)基因與對照大豆進(jìn)行缺水試驗。將發(fā)芽20 d的轉(zhuǎn)基因與對照大豆苗移到含有砂與土(質(zhì)量比1:1)基質(zhì)中栽培7d。然后進(jìn)行缺水脅迫處理,10 d后,測定其在干旱脅迫下相關(guān)生理指標(biāo)變化。SOD活性測定采用NBT(四唑氮藍(lán))還原法,葉綠素含量測定采用分光光度法,POD活性測定采用比色法.MDA含量測定采用硫代巴比妥酸法,CAT活性測定采用紫外吸收法,具體方法均參照文獻(xiàn)。02和H,O,檢測分別用NBT和DAB(3,3-二氨基聯(lián)苯胺)進(jìn)行染色,參照Yan等方法進(jìn)行。然后復(fù)水4d,計算其存活率。每組每個株系6株。

    1.4 數(shù)據(jù)分析

    試驗數(shù)據(jù)分析使用Excel 2013及SPSS17.0。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 轉(zhuǎn)基因植株分子檢測

    通過子葉節(jié)轉(zhuǎn)化再生途徑獲得6個大豆轉(zhuǎn)基因株系。用特異引物對再生苗進(jìn)行PCR檢測,均為陽性植株。為了進(jìn)一步確認(rèn)轉(zhuǎn)基因植株,對這6個轉(zhuǎn)基因株系進(jìn)行Southern blot檢測。以PpCuZnSOD基因的全長作為探針,對轉(zhuǎn)基因株系進(jìn)行Southem雜交驗證,結(jié)果顯示6個轉(zhuǎn)基因株系均有1個拷貝的PpCuZnSOD基因整合到大豆基因組中(圖2)。

    2.2 轉(zhuǎn)基因大豆株系PpCuZnSOD表達(dá)量分析

    為了檢測目的基因的表達(dá)效果,對6個轉(zhuǎn)基因株系PCR及Southem blot陽性苗進(jìn)行qRT-PCR檢測。結(jié)果顯示轉(zhuǎn)PpCuZnSOD株系目的基因均能表達(dá),但基因表達(dá)量存在較大差異。其中L2、L5株系PpCuZnSOD為過表達(dá),其他株系表達(dá)較弱,而野生型植株基本沒有表達(dá)。由此可見,PpCuZnSOD基因已經(jīng)轉(zhuǎn)到大豆基因組中,且有2個株系表達(dá)量較高(圖3)。

    2.3 轉(zhuǎn)基因大豆耐旱性分析

    對經(jīng)過檢測的轉(zhuǎn)基因大豆及對照種子用15%PEG4000進(jìn)行模擬干旱處理。7d后,轉(zhuǎn)基因大豆種子的萌發(fā)率和主根長都顯著高于對照(圖4)。對盆栽27 d轉(zhuǎn)基因植株與對照進(jìn)行缺水脅迫處理10d,結(jié)果顯示轉(zhuǎn)基因大豆長勢明顯好于對照,葉綠素含量顯著高于對照:復(fù)水后,轉(zhuǎn)基因植株的成活率顯著高于對照(圖4、圖5)。

    為了比較大豆轉(zhuǎn)基因植株和野生型植株的耐旱性,將27日齡的盆栽轉(zhuǎn)基因植株進(jìn)行干旱脅迫處理,處理10 d后測定轉(zhuǎn)基因大豆各株系SOD、POD和CAT活性及丙二醛含量。結(jié)果(圖6)表明,各株系與對照差異顯著。干旱脅迫條件下,PpCuZnSOD的過表達(dá)植株MDA含量顯著低于對照,而POD、SOD及CAT活性顯著高于對照。說明PpCuZnSOD過表達(dá)導(dǎo)致轉(zhuǎn)基因植株耐旱性提高。

    為了進(jìn)一步檢測轉(zhuǎn)基因大豆的耐旱性,對轉(zhuǎn)基因大豆與對照的ROS進(jìn)行檢測,分別用NBT和DAB進(jìn)行染色。結(jié)果(圖7)顯示,干旱脅迫后,過表達(dá)大豆植株葉片顏色明顯淺于對照植株,表明過表達(dá)植株中02和H202的積累明顯低于對照植株。說明干旱脅迫下過表達(dá)Pp CuZn,SOD基因可增強(qiáng)大豆細(xì)胞內(nèi)活性氧清除能力,使02和H202的積累減少,從而減少細(xì)胞受損或細(xì)胞死亡,增強(qiáng)植物的耐旱性。

    3 討論

    干旱是世界范圍內(nèi)日益嚴(yán)重的農(nóng)業(yè)問題。干旱嚴(yán)重影響作物產(chǎn)量和品質(zhì)。通過常規(guī)育種方法也能增加大豆的耐旱性,但費力費時,而且遺傳多樣性限制了改進(jìn)的潛力。分子生物學(xué)方法有助于提高作物的耐旱性。許多研究結(jié)果表明,導(dǎo)人外源基因能增加植物的耐旱性。Kudo等發(fā)現(xiàn)過量表達(dá)OSPIL1和DREBIA的轉(zhuǎn)基因擬南芥植株表現(xiàn)出較高的耐旱性。Hui等將CuZnSOD和APX基因轉(zhuǎn)入甘薯,提高了甘薯的耐鹽性。本研究將PpCuZnSOD基因轉(zhuǎn)入大豆品種中黃13中,在干旱脅迫下轉(zhuǎn)基因植株根系主根長度明顯大于非轉(zhuǎn)基因?qū)φ?,耐旱性增?qiáng)。

    植物在干旱脅迫下能產(chǎn)生活性氧(ROS),危害植物生長發(fā)育。SOD通過催化O2歧化反應(yīng),將其還原為H202,然后,APX將過氧化氫氧化為水和氧。我們發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)基因大豆中SOD和APX活性均較高。表明轉(zhuǎn)基因植株清除ROS的能力顯著高于對照。轉(zhuǎn)基因植物具有較強(qiáng)耐旱表型,例如在干旱脅迫下具有較低的葉綠素?fù)p失和脂質(zhì)過氧化。轉(zhuǎn)基因植株中CAT、SOD和POD活性的升高降低了干旱脅迫引起的ROS毒性。此外,DAB、NBT染色結(jié)果也表明轉(zhuǎn)PpCuZnSOD基因大豆過氧化氫和超氧陰離子少于非轉(zhuǎn)基因植株。

    SOD在植物對不同類型脅迫的響應(yīng)中起著重要作用。PpCuZnSOD是一種明顯響應(yīng)干旱脅迫的SOD,異源過表達(dá)可以增強(qiáng)大豆的耐旱性,表明PpCuZnSOD基因在植物響應(yīng)干旱脅迫過程中發(fā)揮著一定作用,這對以后定向培育抗旱優(yōu)良品種具有參考價值。

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