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      豬瘟病毒NASBA-RT-LAMP快速檢測(cè)方法的建立

      2018-07-04 08:24:58楊平東張明璀曹立廷
      中國(guó)動(dòng)物檢疫 2018年7期
      關(guān)鍵詞:瓊脂糖電泳條帶

      楊平東,張明璀,曹立廷

      (1.重慶榮昌高新技術(shù)產(chǎn)業(yè)開發(fā)區(qū)管委會(huì),重慶 402460;2. 西南大學(xué)榮昌校區(qū),重慶 402460)

      豬瘟(Classical swine fever,CSF)是由豬瘟病毒(Classical swine fever virus,CSFV)引起的一種高度接觸性傳染病,在全球范圍內(nèi)造成了巨大經(jīng)濟(jì)損失[1],被世界動(dòng)物衛(wèi)生組織(OIE)列為必須上報(bào)的動(dòng)物疫病。對(duì)其檢測(cè)多年來(lái)一直是獸醫(yī)界研究的重點(diǎn)。當(dāng)前的CSFV實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方法主要有:ELISA、細(xì)胞培養(yǎng)、RT-LAMP[2],以及以PCR技術(shù)為基礎(chǔ)的RT-PCR、RT-nest-PCR、RT-FQ-PCR[4]等。本研究的思路來(lái)源于Fukuda等[3]2009年對(duì)諾如病毒檢測(cè)方法的研究。由于CSFV基因組在總RNA提取過程中會(huì)大量損失,因此希望建立一個(gè)兩步法反應(yīng),來(lái)擴(kuò)增病毒RNA模板,提高檢測(cè)靈敏度。首先利用核酸序列依賴性擴(kuò)增技術(shù)(NASBA)可以大量擴(kuò)增RNA的特點(diǎn),來(lái)擴(kuò)增病毒RNA模板,增加第二步反應(yīng)中的模板含量,然后通過反轉(zhuǎn)錄環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(RT-LAMP)進(jìn)一步擴(kuò)增獲得檢測(cè)結(jié)果,從而建立一種NASBA和RT-LAMP技術(shù)相結(jié)合的兩步法檢測(cè)方法(NASBA-RT-LAMP),為CSF的臨床快速診斷提供一種新思路。

      1 材料與方法

      1.1 毒株與試劑

      CSFV毒株:重慶市畜牧科學(xué)院獸醫(yī)研究所分離保存;dNTP、NTP:購(gòu)自Promega公司;蛋白酶K、Taq酶:購(gòu)自上海生工;T7 RNA聚合酶、RNase H和AMV和Bst DNA 聚合酶:購(gòu)自NEB公司;DTT、Betaine(甜菜堿)、MgSO4:購(gòu)自Sigma公司;RNA Marker RL1000、MiniBEST Viral RNA/DNA Extraction Kit Ver 4.0與Prime Script One Step RT-PCR Kit Ver 2.0 :購(gòu)自TaKaRa公司;Nucleasefree water:購(gòu)自Fermentas公司。

      1.2 引物設(shè)計(jì)與合成

      根據(jù)測(cè)序結(jié)果,利用Primer Explorer V4設(shè)計(jì)外引物和內(nèi)引物。引物序列見表1。

      表1 引物序列

      1.3 NASBA-RT-LAMP方法的建立

      使用RNA提取試劑盒(MiniBEST Viral RNA/DNA Extraction Kit Ver 4.0,TaKaRa) 提 取 模 板RNA,分別優(yōu)化NASBA反應(yīng)中的離子濃度、引物濃度、酶含量,確定最終反應(yīng)體系為20 μL(表2)。反應(yīng)程序:65 ℃加熱5 min,41 ℃冷卻5 min;迅速加入40 U T7 RNase,5 U AMV,0.5 U RnaseH,混勻,置于41 ℃反應(yīng)90 min,-20 ℃終止反應(yīng)。通過5%瓊脂糖電泳鑒定反應(yīng)結(jié)果。

      RT-LAMP反應(yīng)體系(20 μL)見表3。反應(yīng)程序:65 ℃水浴鍋中反應(yīng)1 h。取5 μL反應(yīng)產(chǎn)物用2%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳分析。

      表2 NASBA反應(yīng)體系

      表3 RT-LAMP反應(yīng)體系

      1.4 NASBA-RT-LAMP特異性檢測(cè)

      使用建立的NASBA-RT-LAMP方法,對(duì)臨床上常見的豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)、乙型腦炎病毒(JEV)和CSFV進(jìn)行檢測(cè)。

      1.5 NASBA-RT-LAMP、NASBA、LAMP與Nest-PCR靈敏度比較

      以TakaRa公司提供的高純度單鏈RNA片段(200 ng/μL)為標(biāo)準(zhǔn)對(duì)照,取2 μL提取的RNA模板,使用Eppendprf 6131 Biophotometer的Traycell超微量核酸檢測(cè)模塊測(cè)定RNA含量,用無(wú)酶水(Nuclease-free water,F(xiàn)ermentas)做10倍梯度稀釋,分別進(jìn)行NASBA-RT-LAMP、NASBA、RT-LAMP與RT-Nest-PCR反應(yīng)。

      2 結(jié)果

      2.1 NASBA-RT-LAMP方法電泳

      通過5%的瓊脂糖電泳后,在900 bp處可見清晰的RNA條帶(圖1),說(shuō)明第一步NASBA反應(yīng)獲得成功;然后通過2%的瓊脂糖電泳,可見十分清晰的梯形條帶(圖2),說(shuō)明整個(gè)NASBART-LAMP反應(yīng)是可行的。

      圖1 NASBA反應(yīng)的電泳圖

      圖2 NASBA-RT-LAMP反應(yīng)電泳圖

      2.2 NASBA-RT-LAMP特異性檢測(cè)

      分別用臨床上常見的PRRSV、JEV和CSFV為模板,在相同條件下同時(shí)進(jìn)行擴(kuò)增。經(jīng)瓊脂糖電泳檢測(cè)表明,只有以CSFV為模板,才能擴(kuò)增出清晰的梯形條帶,而以PRRSV和JEV為模板,不能擴(kuò)增出條帶,表明此方法對(duì)CSFV有很強(qiáng)的特異性。NASBA-RT-LAMP的特異性檢測(cè)瓊脂糖凝膠電泳圖像見圖3。

      2.3 4種檢測(cè)方法的靈敏度比較

      圖3 NASBA-RT-LAMP反應(yīng)的特異性檢測(cè)

      比較結(jié)果顯示:NASBA與RT-LAMP的最小檢測(cè)濃度都為 460 pg/μL;NASBA-RT-LAMP 與RT-Nest-PCR的檢測(cè)靈敏度相近,都為46 pg/μL;不過NASBA-RT-LAMP在模板濃度從460 ng/μL到46 pg/μL變化過程中,擴(kuò)增條帶的亮度都十分清晰(圖4),而RT-Nest-PCR擴(kuò)增條帶卻逐漸減弱,在模板濃度46 pg/μL時(shí)已非常模糊。4種檢測(cè)方法的靈敏度比較結(jié)果見表4。

      圖4 NASBA-RT-LAMP反應(yīng)靈敏度的檢測(cè)

      3 分析與討論

      本試驗(yàn)結(jié)合NASBA與RT-LAMP技術(shù),探索建立了一種兩步法檢測(cè)方法,整個(gè)反應(yīng)只需要恒溫水浴鍋即可完成。在反應(yīng)過程中首先通過NASBA技術(shù)提高病毒RNA模板含量,然后進(jìn)行RT-LAMP反應(yīng),最后通過瓊脂糖電泳方式來(lái)驗(yàn)證反應(yīng)結(jié)果。這樣既解決了NASBA反應(yīng)產(chǎn)物容易降解,不易電泳觀察的問題,也使RT-LAMP反應(yīng)的模板量增加,讓RT-LAMP反應(yīng)結(jié)果更加清晰、準(zhǔn)確。

      表4 4種檢測(cè)方法靈敏度比較

      此方法的敏感性與RT-nest-PCR相當(dāng),最小檢測(cè)量為46 pg/μL,與朱俊靈等[5]將LAMP技術(shù)和橫向流動(dòng)試紙條技術(shù)(LFD)相結(jié)合建立的RTLAMP-LFD的靈敏度相當(dāng),但低于Das等[6]建立的針對(duì)CSFV的熒光定量RT-PCR方法。根據(jù)檢測(cè)靈敏度結(jié)果分析發(fā)現(xiàn),NASBA-RT-LAMP反應(yīng)對(duì)CSFV檢測(cè)的敏感性取決于NASBA反應(yīng)的敏感性,當(dāng)模板濃度在46 pg/μL時(shí),NASBA與RT-LAMP反應(yīng)通過瓊脂糖電泳檢測(cè)不到目的條帶。這有可能是因RNA擴(kuò)增量太低,不能通過電泳檢測(cè)到。而NASBA-RT-LAMP反應(yīng),由于對(duì)NASBA反應(yīng)得到的RNA模板進(jìn)一步擴(kuò)增,所以在模板濃度為46 pg/μL時(shí)仍能得到非常清晰的梯形條帶。此方法

      在反應(yīng)過程中不需要特別貴重的設(shè)備,從而為基層

      CSFV檢測(cè)提供了一種新選擇。

      [1] MOENNIG V. Introduction to classical swine fever:virus,disease and control policy[J].Veterinary microbiology,2000,73(2):93-102.

      [2] CHEN L,F(xiàn)AN X Z,WANG Q,et al. A novel RTLAMP assay for rapid and simple detection of classical swine fever virus[J]. Virologica sinica,2010,25(1):59-64.

      [3] FUKUDA S,SASAKI Y,SENO M. Rapid and sensitive detection of norovirus genomes in oysters by a twostep isothermal amplification assay system combining nucleic acid sequence-based amplification and reverse transcription-loop-mediated isothermal amplification assays[J]. Applied & environmental microbiology,2008,74(12):3912-3914.

      [4] RISATTI G R,CALLAHAN J D,NELSON W M,et al. Rapid detection of classical swine fever virus by a portable real-time reverse transcriptase PCR assay[J].Journal of clinical microbiology,2003,41(1):500-505.

      [5] 朱俊靈,葉佐東,鄧潔汝,等. 豬瘟病毒RT-LAMPLFD檢測(cè)方法的建立與應(yīng)用[J]. 華南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2016(1):1-7.

      [6] DAS A,BECKHAM T R,MCINTOSH M T.Comparison of methods for improved RNA extraction from blood for early detection of classical swine fever virus by real-time reverse transcription polymerase chain reaction[J]. Journal of veterinary diagnostic investigation,2011,23(4):727-735.

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