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      miR-24對(duì)肺癌A549細(xì)胞化療敏感性的影響

      2018-07-02 00:43:38蘇書(shū)娟孫義長(zhǎng)任金山
      中國(guó)病理生理雜志 2018年6期
      關(guān)鍵詞:螢光腺癌線粒體

      蘇書(shū)娟,樊 濤,孫義長(zhǎng),任金山

      (南陽(yáng)醫(yī)學(xué)高等專科學(xué)校第一附屬醫(yī)院放療科, 河南 南陽(yáng) 473000)

      肺癌是常見(jiàn)的惡性腫瘤,近年來(lái),其發(fā)病率及死亡率不斷攀升[1]。目前以鉑類(lèi)藥物為基礎(chǔ)的化療在肺癌,特別是不宜手術(shù)的晚期肺癌的治療中仍起著無(wú)可替代的作用,而臨床治療過(guò)程中腫瘤細(xì)胞對(duì)各類(lèi)化療藥物產(chǎn)生的耐藥現(xiàn)象大幅降低了藥物的療效,給肺癌的治療帶來(lái)了極大的阻力[1-3]。因此,探討肺癌化療耐藥的有效評(píng)估指標(biāo),尋找潛在的治療靶點(diǎn)成為改善患者預(yù)后和提高臨床療效的重要工作。

      腫瘤細(xì)胞的多藥耐藥性多為獲得性耐藥,產(chǎn)生機(jī)制頗為復(fù)雜,且大多數(shù)涉及幾種機(jī)制的聯(lián)合作用[4]。研究顯示,腫瘤細(xì)胞多藥耐藥的機(jī)制主要包括[4-8]腫瘤細(xì)胞中多藥耐藥相關(guān)蛋白(multidrug resistance-associated protein,MRP)等膜蛋白的高表達(dá)促進(jìn)化療藥物的外排/減少化療藥物的攝入,進(jìn)而導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)藥物濃度降低、化療藥物作用靶點(diǎn)的質(zhì)與量出現(xiàn)改變、酶系統(tǒng)的異常表達(dá)致使腫瘤細(xì)胞的DNA損傷修復(fù)功能和細(xì)胞的解毒功能加強(qiáng)、激素受體的減少及抗凋亡基因的表達(dá)改變致使腫瘤細(xì)胞出現(xiàn)凋亡抑制等。

      大量研究顯示,微小RNA(microRNA, miR)的異常表達(dá)與肺癌的發(fā)生發(fā)展進(jìn)程,包括獲得耐藥性的出現(xiàn)密不可分[9]。miR-24廣泛表達(dá)于人體的多種組織中,可發(fā)揮調(diào)節(jié)細(xì)胞生長(zhǎng)發(fā)育、增殖及凋亡等功能。有趣的是其在不同的細(xì)胞中對(duì)增殖及凋亡的調(diào)控作用不盡相同[10-13],如在肝癌[11]及舌鱗癌[12]中miR-24可靶向不同的基因促進(jìn)癌細(xì)胞的生長(zhǎng),而Li等[13]的研究則表示miR-24-3p可靶向Prdx-6抑制胃癌細(xì)胞N87的生長(zhǎng)、侵襲及遷移,促進(jìn)其凋亡。因此,探討miR-24對(duì)某個(gè)特定腫瘤細(xì)胞的作用及其作用機(jī)制對(duì)于相關(guān)腫瘤的個(gè)性化治療具有重大的臨床意義。早期的研究發(fā)現(xiàn),miR-24在肺癌患者腫瘤組織及血清中呈現(xiàn)高表達(dá),提示miR-24在肺癌中可能發(fā)揮癌基因樣作用[14],但其與肺癌耐藥之間的關(guān)系尚不清楚,故而本文通過(guò)轉(zhuǎn)染miR-24抑制物序列(miR-24 inhibitor,miR-24-i)下調(diào)A549/DDP細(xì)胞中的miR-24表達(dá),探究miR-24在肺腺癌細(xì)胞A549化療獲得性耐藥中的作用及其相關(guān)作用機(jī)制。

      材 料 和 方 法

      1 材料與試劑

      肺腺癌細(xì)胞株A549及肺腺癌耐藥細(xì)胞株A549/DDP購(gòu)買(mǎi)于中科院上海細(xì)胞庫(kù);胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)、Opti-MEM培養(yǎng)基及RPMI-1640培養(yǎng)基均購(gòu)自Gibco;miR-24 inhibitor(5’-CUGUUCCUGCUGAACUGAGCCA-3’)、陰性對(duì)照microRNA(miR-negative control,Neg; 5’-UUCUCCGAACGUGUCACGUTT-3’)、SYBR Green I real-time PCR Kit及野生型和突變型p53基因3’UTR-熒光素酶表達(dá)載體(WT-3’UTR和Mutant-3’UTR)均購(gòu)自上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司;P53 小分子干擾RNA(P53 siRNA)及其陰性對(duì)照RNA(control siRNA)均購(gòu)自廣州銳博生物科技有限公司;Lipofectamine 2000及相關(guān)轉(zhuǎn)染試劑購(gòu)自Invitrogen;CCK-8細(xì)胞活力分析試劑盒購(gòu)自碧云天生物技術(shù)研究所;抗P53、Bcl-2、Bax、caspase-3、cleaved caspase-3、caspase-9、cleaved caspase-9、細(xì)胞色素C(cytochrome C,Cyt C)、磷酸化細(xì)胞外信號(hào)調(diào)節(jié)激酶(extracellular signal regulated kinase,p-ERK)、ERK及 β-actin 單克隆抗體購(gòu)自Santa Cruz;細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒購(gòu)于南京凱基生物科技發(fā)展有限公司;順鉑(cisplatin,CDDP)購(gòu)于齊魯制藥公司;紫杉醇(paclitaxel,PTX)購(gòu)于海南海藥股份有限公司;ERK特異性抑制劑U0126購(gòu)于Cell Signaling;其余試劑均為國(guó)產(chǎn)市售分析純。

      2 方法

      2.1細(xì)胞培養(yǎng)及轉(zhuǎn)染 細(xì)胞常規(guī)培養(yǎng)于含10% FBS的RPMI-1640完全培養(yǎng)基中,其中A549/DDP細(xì)胞培養(yǎng)液中間斷性加入1 mg/L的順鉑以維持其耐藥性。培養(yǎng)箱設(shè)置為5% CO2、37 ℃、飽和濕度。首先取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞接種于6孔板中,待細(xì)胞融合至60%~80%時(shí)進(jìn)行轉(zhuǎn)染。將miR-24 inhibitor(10 μmol/L)或等體積miR-negative control溶解于Opti-MEM培養(yǎng)基中,室溫孵育5 min,標(biāo)記為A液;另取Lipofectamine 2000溶解于Opti-MEM培養(yǎng)基中,室溫孵育5 min,標(biāo)記為B液;將A液和B液輕柔混合,室溫反應(yīng)25 min;而后將混合物加入相應(yīng)組別的細(xì)胞中,置于細(xì)胞培養(yǎng)箱中孵育6 h后更換為完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)48 h。檢測(cè)轉(zhuǎn)染效率并進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)分析。

      2.2Real-time PCR檢測(cè)miR-24及P53 mRNA的表達(dá) 轉(zhuǎn)染后48 h,參照Trizol一步法操作手冊(cè)抽提細(xì)胞總RNA并定量。取2 μg總RNA經(jīng)逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)合成cDNA(反應(yīng)終體積為20 μL),采用SYBR Green real-time PCR試劑盒檢測(cè)miR-24及P53 mRNA的表達(dá)。miR-24的正向引物的序列為5’-TGGCTCAGTTCAGCAGGAACAG-3’,反向引物的序列為5’-AACGCTTCACGAATTTGCGT-3’; U6作為內(nèi)參照,正向引物的序列為5’-CTCGCTTCGGCAGCACA-3’;反向引物的序列為5’-AACGCTTCACGAATTTGCGT-3’。 P53的正向引物的序列為5’-GACCCAGGTCCAGATGAAGCT-3’,反向引物的序列為5’-ACCGTAGCTGCCCTGGTAGGT-3’;β-actin作為內(nèi)參照,正向引物的序列為5’-ATCTACGAGGGGTATGCC-3’;反向引物的序列為5’-TAGCTCTTCTCCAGGGAG-3’。反應(yīng)采用ABI7300 real-time PCR檢測(cè)系統(tǒng),先94 ℃孵育5 min變性,然后進(jìn)行35個(gè)PCR循環(huán)(94 ℃ 30 s、55 ℃ 30 s、74 ℃ 30 s)。采用2-ΔΔCt法分析基因的相對(duì)表達(dá)量。

      2.3細(xì)胞化療藥物體外敏感性的檢測(cè) 取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞接種于96孔板中(接種密度為每孔1×104),待細(xì)胞貼壁融合至80%~90%時(shí)同步化12 h,加入不同濃度的順鉑或紫杉醇(濃度梯度設(shè)置為0、0.01、0.1、1、10和100 μmol/L),置于培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)46 h,加入100 μL 的CCK-8試劑繼續(xù)于培養(yǎng)箱中孵育2 h,采用酶標(biāo)儀測(cè)定450 nm波長(zhǎng)處的吸光度(A)值,計(jì)算相應(yīng)藥物的IC50并比較轉(zhuǎn)染miR-24 inhibitor后A549/DDP細(xì)胞對(duì)順鉑敏感性的變化。每組設(shè)置3個(gè)復(fù)孔,取均值。

      2.4細(xì)胞凋亡的檢測(cè) 本實(shí)驗(yàn)采用Annexin V /PI雙染色法檢測(cè)細(xì)胞凋亡情況。細(xì)胞分組處理48 h,離心收集各組細(xì)胞后用PBS漂洗3次,加入Binding Buffer 重懸細(xì)胞。先后向細(xì)胞懸液中加入Annexin V-FITC(室溫避光孵育10 min)和碘化丙啶(propidium iodide,PI)染液(室溫避光染色5 min),采用流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞凋亡情況,檢測(cè)條件設(shè)置為:Ex=488 nm;Em=530 nm。

      2.5Western blot檢測(cè)蛋白表達(dá)水平 細(xì)胞分組處理48 h,采用RIPA裂解收集各組細(xì)胞蛋白并定量,調(diào)整各組蛋白上樣量至80 μg,加入Loading Buffer(蛋白體積:loading buffer體積=1∶4),98 ℃水浴變性。準(zhǔn)備好的蛋白樣品上樣后行SDS-PAGE,電泳結(jié)束后將蛋白電轉(zhuǎn)至PVDF膜(200 mA恒流)。用5%脫脂牛奶室溫封閉90 min,依據(jù)說(shuō)明書(shū)要求加入相應(yīng)比例的I 抗,4 ℃孵育過(guò)夜,復(fù)溫后TBST洗滌3次,每次5 min;加入相應(yīng)的 II 抗,置于搖床上室溫孵育2 h,TBST洗滌3次,每次10 min。于暗室中將HRP-ECL發(fā)光液灑在PVDF膜的蛋白面上激發(fā)熒光,壓X片、顯影、定影并沖洗膠片。實(shí)驗(yàn)結(jié)果采用ImageJ灰度分析軟件進(jìn)行蛋白半定量分析。

      2.6螢光素酶報(bào)告基因檢測(cè) 從生物學(xué)信息數(shù)據(jù)庫(kù)TargetScan挑選p53作為候選靶點(diǎn)。依據(jù)miR-24和P53 3’UTR可能的結(jié)合位點(diǎn),由上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司構(gòu)建野生型(WT-3’UTR)及突變型(MUT-3’UTR)p53基因螢光素酶報(bào)告基因質(zhì)粒,并將上述質(zhì)粒和/或miR-24 inhibitor轉(zhuǎn)入細(xì)胞中,通過(guò)檢測(cè)螢光素酶的活性來(lái)驗(yàn)證p53是否是miRNA-24的作用靶點(diǎn)。轉(zhuǎn)染方法同2.1。實(shí)驗(yàn)分組為:空載體(psi-CHEK2)組、野生型p53基因(WT-3’UTR)組和突變型p53基因(MUT-3’UTR)組。依據(jù)說(shuō)明書(shū)使用螢光素酶報(bào)告基因檢測(cè)儀檢測(cè)螢光素酶的活性。實(shí)驗(yàn)結(jié)果以螢火蟲(chóng)螢光素酶活性與海腎螢光素酶活性的比值來(lái)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。

      3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

      將本實(shí)驗(yàn)研究涉及數(shù)據(jù)錄入SPSS 15.0標(biāo)準(zhǔn)版統(tǒng)計(jì)軟件包行數(shù)據(jù)分析,實(shí)驗(yàn)結(jié)果以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示。多組間數(shù)據(jù)的比較采用單因素方差分析,各組均數(shù)間的兩兩比較用Bonferroni校正的t檢驗(yàn),以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

      結(jié) 果

      1 miR-24的表達(dá)與A549細(xì)胞化療耐藥的關(guān)系

      本實(shí)驗(yàn)首先檢測(cè)了肺腺癌耐藥細(xì)胞株A549/DDP及其對(duì)照親本細(xì)胞株A549對(duì)2種化療藥物的IC50,結(jié)果證明A549/DDP細(xì)胞的化療耐藥性顯著強(qiáng)于A549細(xì)胞(P<0.05),見(jiàn)表1。同時(shí),real-time PCR的結(jié)果顯示,A549/DDP細(xì)胞中miR-24的表達(dá)水平明顯高于A549細(xì)胞(P<0.05),提示miR-24的表達(dá)可能與肺腺癌細(xì)胞A549化療耐藥之間存在相關(guān)關(guān)系,見(jiàn)圖1A。

      表1肺腺癌細(xì)胞A549對(duì)化療藥物的敏感性
      Table 1. Drug sensitivity (IC50) of human lung adenocarcinoma A549 cells (μmol/L. Mean±SD.n=6)

      CellsCDDPPTXA5491.58±0.390.19±0.05A549/DDP 14.17±1.94?0.63±0.12?

      *P<0.05vsA549 group.

      Figure 1. The expression of miR-24. A: the expression of miR-24 in the A549 cells and A549/DDP cells; B: the expression of miR-24 in the A549/DDP cells after transfected with miR-24 inhibitor. Mean±SD.n=6.#P<0.05vsA549 group;*P<0.05vscontrol group.

      圖1miR-24的表達(dá)情況

      2 下調(diào)miR-24對(duì)A549/DDP細(xì)胞化療敏感性的影響

      A549/DDP細(xì)胞轉(zhuǎn)染miR-24 inhibitor后,細(xì)胞中miR-24的表達(dá)較對(duì)照組明顯降低(P<0.05),見(jiàn)圖1B?;熕幬锩舾行詸z測(cè)結(jié)果顯示,下調(diào)A549/DDP細(xì)胞中miR-24的表達(dá)后,細(xì)胞對(duì)順鉑的敏感性明顯增加,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)表2。

      表2下調(diào)miR-24可提高耐藥細(xì)胞A549/DDP對(duì)化療藥物的敏感性
      Table 2. Down-regulation of miR-24 increased drug sensitivity (IC50) of A549/DDP cells (μmol/L. Mean±SD.n=6).

      GroupCDDPPTXControl14.17±1.940.63±0.12Neg13.86±1.540.57±0.13miR-24-i8.69±1.12?0.42±0.10?

      *P<0.05vscontrol group.

      3 下調(diào)miR-24對(duì)A549/DDP細(xì)胞凋亡的影響

      相較于Neg組細(xì)胞,miR-24 inhibitor組細(xì)胞的早期凋亡率顯著增加(P<0.05);而中晚期細(xì)胞凋亡/壞死率變化無(wú)顯著差異,表明下調(diào)miR-24可明顯促進(jìn)耐藥細(xì)胞A549/DDP的凋亡,見(jiàn)圖2。

      4 下調(diào)miR-24對(duì)A549/DDP細(xì)胞線粒體途徑凋亡相關(guān)蛋白表達(dá)的影響

      Western blot實(shí)驗(yàn)的檢測(cè)結(jié)果顯示,與Neg組相比,miR-24 inhibitor組的抗凋亡蛋白Bcl-2的表達(dá)顯著下降,而凋亡蛋白Bax、cleaved caspase-3和cleaved caspase-9的蛋白水平明顯增加,Bcl-2/Bax比值顯著降低(P<0.05)。此外,下調(diào)miR-24后可明顯促進(jìn)Cyt C釋放至胞漿,提示線粒體凋亡信號(hào)通路被激活,見(jiàn)圖3。

      Figure 2. The effect of miR-24 down-regulation on the apoptosis of A549/DDP cells was analyzed by flow cytometry. Mean±SD.n=6.*P<0.05vsNeg group.

      圖2流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)下調(diào)miR-24對(duì)A549/DDP細(xì)胞凋亡的影響

      Figure 3. The effects of miR-24 down-regulation on the protein levels of mitochondrial apoptosis pathway related molecules in the A549/DDP cells. Mean±SD.n=6.*P<0.05vscontrol group.

      圖3下調(diào)miR-24對(duì)A549/DDP細(xì)胞線粒體凋亡信號(hào)通路相關(guān)分子蛋白水平的影響

      5 下調(diào)miR-24對(duì)ERK/P53信號(hào)通路的影響

      本實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步檢測(cè)了細(xì)胞中調(diào)控凋亡的重要信號(hào)通路ERK信號(hào)通路的磷酸化情況,結(jié)果顯示,與Neg組相比,miR-24 inhibitor組中p-ERK的蛋白水平顯著增加(P<0.05),但是ERK總蛋白的水平并未出現(xiàn)顯著變化;同時(shí)P53的表達(dá)水平顯著升高(P<0.05),提示下調(diào)miR-24可活化ERK信號(hào)通路并提高腫瘤抑制因子P53的表達(dá),見(jiàn)圖4A。

      此外,本實(shí)驗(yàn)還采用了ERK特異性抑制劑U0126來(lái)驗(yàn)證miR-24 inhibitor所致ERK信號(hào)通路的激活是否與A549/DDP細(xì)胞凋亡有關(guān),結(jié)果顯示預(yù)先給予25 μmol/L U0126處理1 h可部分恢復(fù)miR-24 inhibitor組的細(xì)胞活性,見(jiàn)圖4B。

      Figure 4. The effects of miR-24 down-regulation on the protein levels of p-ERK and P53 and cell viability in A549/DDP cells. A: the protein levels of p-ERK and P53 after transfected with miR-24 inhibitor in the A549/DDP cells; B: the effect of U0126 incubation on cell viability. Mean±SD.n=6.*P<0.05vsNeg group;△P<0.05vsmiR-24-i group.

      圖4下調(diào)miR-24對(duì)A549/DDP細(xì)胞ERK/P53信號(hào)通路相關(guān)分子蛋白水平和細(xì)胞活力的影響

      6 miR-24靶基因的預(yù)測(cè)及驗(yàn)證

      通過(guò)生物信息學(xué)的方法,挑選P53作為miR-24的候選靶點(diǎn),miR-24與P53的結(jié)合位點(diǎn)如圖5A所示。然后檢測(cè)miR-24對(duì)P53表達(dá)的影響,結(jié)果顯示,miR-24 inhibitor可明顯促進(jìn)P53 mRNA的表達(dá),見(jiàn)圖5B。雙螢光素酶報(bào)告基因檢測(cè)miR-24與P53的結(jié)合情況,結(jié)果顯示在WT-3’UTR組轉(zhuǎn)入miR-24 inhibitor,螢光素酶的活性較對(duì)照組降低(P<0.05);而MUT-3’UTR組轉(zhuǎn)入miR-24 inhibitor,螢光素酶的活性沒(méi)有顯著改變,這一結(jié)果表明,miR-24可直接作用于p53基因的3’UTR區(qū)域來(lái)抑制其表達(dá),見(jiàn)圖5C。功能恢復(fù)實(shí)驗(yàn)顯示,共轉(zhuǎn)染miR-24 inhibitor和P53 siRNA之后,P53的表達(dá)顯著下降,同時(shí)A549/DDP的細(xì)胞活力部分升高(P<0.05),見(jiàn)圖5D、E。

      討 論

      miR-24具有調(diào)控腫瘤細(xì)胞增殖及凋亡的作用,并通過(guò)不同的靶基因產(chǎn)生不同的作用。本研究發(fā)現(xiàn),在肺腺癌耐藥細(xì)胞株A549/DDP中miR-24的表達(dá)水平顯著高于其親本細(xì)胞株,而轉(zhuǎn)染miR-24 inhibitor下調(diào)A549/DDP細(xì)胞中miR-24的表達(dá)可提高A549/DDP細(xì)胞對(duì)化療藥物的敏感性,由此推測(cè),miR-24可參與影響肺腺癌A549細(xì)胞化療耐藥性的出現(xiàn)。

      本實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步探討了miR-24調(diào)控肺腺癌A549/DDP細(xì)胞化療敏感性的作用機(jī)制。流式細(xì)胞術(shù)分析結(jié)果顯示,下調(diào)miR-24可明顯促進(jìn)耐藥細(xì)胞A549/DDP的凋亡,提示下調(diào)miR-24提高肺腺癌耐藥細(xì)胞A549/DDP對(duì)化療藥物的敏感性可能與促進(jìn)細(xì)胞的凋亡有關(guān)。線粒體途徑是細(xì)胞的凋亡的重要途徑之一,當(dāng)某些內(nèi)外源因素致使線粒體外膜通透性增加時(shí),Cyt C從線粒體內(nèi)膜釋放進(jìn)入胞質(zhì)中,并與procaspase-9等結(jié)合形成凋亡小體,繼而順序激活caspase-9及caspase-3等最終導(dǎo)致細(xì)胞凋亡[15-17]。本實(shí)驗(yàn)的檢測(cè)結(jié)果顯示,下調(diào)miR-24可促進(jìn)A549/DDP細(xì)胞中線粒體Cyt C的釋放,激活caspase-9及caspase-3。Bcl-2家族是影響線粒體凋亡途徑的重要調(diào)控因子[18],本實(shí)驗(yàn)中,下調(diào)miR-24可促進(jìn)A549/DDP中促凋亡蛋白Bax的表達(dá),抑制抗凋亡蛋白Bcl-2的表達(dá),表明下調(diào)miR-24可通過(guò)激活線粒體凋亡途徑促進(jìn)A549/DDP細(xì)胞的凋亡。ERK信號(hào)通路是體內(nèi)調(diào)控細(xì)胞分化、增殖和凋亡等過(guò)程的關(guān)鍵信號(hào)通路[19-20]。在較弱的刺激下,ERK信號(hào)通路的活化可促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的增殖及生長(zhǎng);但是ERK蛋白的持續(xù)激活,不僅可參與P53信號(hào)通路誘導(dǎo)細(xì)胞的凋亡及自噬,還可加重化療藥物如順鉑等的細(xì)胞損傷作用[21-22]。研究顯示,在Ras/Raf/ERK信號(hào)通路持續(xù)激活時(shí),腫瘤抑制因子P53的磷酸化水平升高,進(jìn)而影響B(tài)cl-2家族蛋白的表達(dá),最終通過(guò)線粒體途徑誘導(dǎo)細(xì)胞大量凋亡[23]。本實(shí)驗(yàn)的檢測(cè)結(jié)果表明下調(diào)miR-24可活化ERK信號(hào)通路并提高腫瘤抑制因子P53的表達(dá);且采用ERK特異性抑制劑U0126預(yù)孵A549/DDP細(xì)胞可部分恢復(fù)miR-24 inhibitor組的細(xì)胞活力,但是其中涉及的具體調(diào)控機(jī)制還需要進(jìn)一步深入的研究。此外,生物信息學(xué)分析顯示p53可能是miR-24的靶基因,兩者的直接結(jié)合進(jìn)而負(fù)調(diào)控P53的表達(dá)可能也是miR-24 inhibitor誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡、增加化療敏感性的一種分子機(jī)制。

      Figure 5.p53 was a potential target gene of miR-24. A: miR-24 seed sequence and its complementary binding site inp53 3’UTR; B: the effect of miR-24 inhibitor on P53 mRNA expression in A549/DDP cells; C: relative luciference intensity in transfected A549/DDP cells; D: the transfection efficiency of P53 siRNA; E: impact of P53 siRNA and miR-24 inhibitor co-transfection on A549/DDP cell viability. Mean±SD.n=6.*P<0.05vscontrol group;&P<0.05vspsi-CHECK2;△P<0.05vsmiR24-i group.

      圖5p53可能是miR-24的靶基因

      綜上所述,肺腺癌順鉑耐藥細(xì)胞A549/DDP中下調(diào)miR-24可靶向P53同時(shí)激活ERK/P53信號(hào)通路,繼而啟動(dòng)線粒體途徑凋亡,增強(qiáng)細(xì)胞對(duì)化療藥物的敏感性。

      [參 考 文 獻(xiàn)]

      [1] Chalela R, Curull V, Enríquez C, et al. Lung adenocarcinoma: from molecular basis to genome-guided therapy and immunotherapy[J]. J Thorac Dis, 2017, 9(7):2142-2158.

      [2] Albaba H, Lim C, Leighl NB. Economic considerations in the use of novel targeted therapies for lung cancer: review of current literature[J]. Pharmacoeconomics, 2017, 35(12):1195-1209.

      [3] Du L, Morgensztern D. Chemotherapy for advanced-stage non-Small cell lung cancer[J]. Cancer J, 2015, 21(5):366-370.

      [4] Kim ES. Chemotherapy resistance in lung cancer[J]. Adv Exp Med Biol, 2016, 893:189-209.

      [5] Piotrowska Z, Sequist LV. epidermal growth factor receptor-mutant lung cancer: new drugs, new resistancemechanisms, and future treatment options[J]. Cancer J, 2015, 21(5):371-377.

      [6] Avril T, Vauléon E, Chevet E. Endoplasmic reticulum stress signaling and chemotherapy resistance in solid cancers[J].Oncogenesis, 2017, 6(8):e373.

      [7] Singh MS, Tammam SN, Shetab Boushehri MA, et al. MDR in cancer: Addressing the underlying cellular alterations with the use of nanocarriers[J]. Pharmacol Res, 2017, 126:2-30.

      [8] Galun D, Srdic-Rajic T, Bogdanovic A, et al. Targeted therapy and personalized medicine in hepatocellular carcinoma: drug resistance,mechanisms, and treatment strategies[J]. J Hepatocell Carcinoma, 2017, 4:93-103.

      [9] Chen Y, Gao Y, Zhang K, et al. micrornas as regulators of cisplatin resistance in lung cancer[J]. Cell Physiol Biochem, 2015, 37(5):1869-1880.

      [10] Yu G, Jia Z, Dou Z. miR-24-3p regulates bladder cancer cell proliferation, migration, invasion and autophagy by targeting DEDD[J]. Oncol Rep, 2017, 37(2):1123-1131.

      [11] Chen L, Luo L, Chen W, et al. MicroRNA-24 increases hepatocellular carcinoma cell metastasis and invasion by targeting p53: miR-24 targeted p53[J]. Biomed Pharmacother, 2016, 84:1113-1118.

      [12] Zhao J, Hu C, Chi J, et al. miR-24 promotes the proliferation, migration and invasion in human tongue squamous cell carcinoma by targeting FBXW7[J]. Oncol Rep, 2016, 36(2):1143-1149.

      [13] Li Q, Wang N, Wei H, et al. mir-24-3p regulates progression of gastric mucosal lesions and suppresses proliferation and invasiveness of n87 via peroxiredoxin 6[J]. Dig Dis Sci, 2016, 61(12):3486-3497.

      [14] Zhao G, Liu L, Zhao T, et al. Upregulation of miR-24 promotes cell proliferation by targeting NAIF1 in non-small cell lung cancer[J].Tumour Biol, 2015, 36(5):3693-3701.

      [15] Nunnari J, Suomalainen A. Mitochondria: in sickness and in health[J]. Cell, 2012, 148(6):1145-1159.

      [16] Kaczanowski S. Apoptosis: its origin, history, maintenance and the medical implications for cancer and aging[J]. Phys Biol, 2016, 13(3):031001.

      [17] Chao CC, Hou SM, Huang CC, et al. Plumbagin induces apoptosis in human osteosarcoma through ROS generation, endoplasmic reticulum stress and mitochondrial apoptosis pathway[J]. Mol Med Rep, 2017,16(4):5480-5488.

      [18] Du L, Fei Z, Song S, et al. Antitumor activity of Lobaplatin against esophageal squamous cell carcinoma through caspase-dependent apoptosis and increasing the Bax/Bcl-2 ratio[J]. Biomed Pharmacother, 2017, 95:447-452.

      [19] Serini S, Calviello G. Modulation of Ras/ERK and phosphoinositide signaling by long-chain n-3 PUFA in breast cancer and their potential complementary role in combination with targeted drugs[J]. Nutrients, 2017, 9(3):E185.

      [20] Sun Y, Liu WZ, Liu T, et al. Signaling pathway of MAPK/ERK in cell proliferation, differentiation, migration, senescence and apoptosis[J]. J Recept Signal Transduct Res, 2015, 35(6):600-604.

      [21] Deschênes-Simard X, Kottakis F, Meloche S, et al. ERKs in cancer: friends or foes?[J]. Cancer Res, 2014, 74(2):412-419.

      [22] Zou YR, Zhang J, Wang J, et al. Erythropoietin receptor activation protects the kidney from ischemia/reperfusion-induced apoptosis by activating ERK/p53 signal pathway[J]. Transplant Proc, 2016, 48(1):217-221.

      [23] Cagnol S, Chambard JC. ERK and cell death: mechanisms of ERK-induced cell death--apoptosis, autophagy and senescence[J]. FEBS J, 2010, 277(1):2-21.

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