管 奧 毋玉婷 陳 宇 孫 揚 祁鵬志 郭寶英
(浙江海洋大學海洋科學與技術學院 國家海洋設施養(yǎng)殖工程技術研究中心 舟山 316022)
曼氏無針烏賊(Sepiella japonica)屬軟體動物門(Mollusca)、頭足綱(Cephalopoda)、十腕目(Decapoda)、烏賊科(Sepiidae)、無針烏賊屬(Sepiella),和大黃魚(Pseudosciaena crocea)、小黃魚(P. polyactis)、帶魚(Trichiurus haumela)并稱為我國東海“四大海產(chǎn)”,是我國重要的海洋漁業(yè)資源。曼氏無針烏賊地理分布范圍較廣,朝鮮西南海岸、日本瀨戶內海沿岸、俄羅斯遠東海和我國沿海及其鄰近海域都有分布(??姑赖?2008)。其肉味鮮美,蛋白質含量高,營養(yǎng)豐富,具有很高的經(jīng)濟和藥用價值。以曼氏無針烏賊及其性腺為原材料的產(chǎn)品主要有“墨魚干”、“烏魚蛋”等(董正之,1988)。
由于過度捕撈、生境破壞等原因,資源受到嚴重損害,20世紀中后期開始,曼氏無針烏賊資源已無法形成漁汛,自然海域已很難見到野生的曼氏無針烏賊。因此,為了保護曼氏無針烏賊資源,恢復資源量,人工培育烏賊種苗進行增殖放流的工作已經(jīng)陸續(xù)開展。從21世紀初起,本團隊對曼氏無針烏賊做了大量研究工作,如繁殖習性及產(chǎn)卵場修復(吳常文等,2010)、胚胎發(fā)育與人工育苗技術(??姑赖? 2009)等,并已解決人工繁育和養(yǎng)殖難題,在 2006~2016年期間,本團隊每年均在曼氏無針烏賊的主要棲息地浙江東極等海域投放百萬頭(顆)幼烏賊和烏賊卵。在放流海域已可見曼氏無針烏賊資源恢復跡象(董智勇等,2010; 史會來等, 2015),但放流曼氏無針烏賊主要以卵的形式放流,所以傳統(tǒng)的物理、化學等標記方法不完全適用,因此,至今仍不能有效評估增殖放流效果。
微衛(wèi)星(Microsatellite)又稱簡單重復序列(Simple sequence repeat, SSR),是真核生物基因組中的高度重復序列,是由幾個核苷酸組成的串聯(lián)重復序列,其長度一般較短(何平, 1998)。在眾多分子標記中,微衛(wèi)星 DNA(Microsatellite DNA)標記位點數(shù)目巨大且隨機分布于整個基因組中,呈共顯性遺傳,易于檢測且重復穩(wěn)定,在親代和子代之間遵從孟德爾遺傳,因而成為水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè)中遺傳多樣性和親緣關系研究的重要分子標記(陳睿毅等, 2013)。目前,微衛(wèi)星標記已經(jīng)應用于頭足綱中的歐洲橫紋烏賊(Sepia officinalis)和真蛸(Octopus vulgaris)的遺傳多樣性研究,及歐洲烏賊(Loligo vulgaris)的遺傳結構研究(Pérez-Losada et al,2002; Moreira et al, 2011; Garoia et al, 2004)。微衛(wèi)星標記對樣本的非損傷性對于一些瀕危珍稀物種而言更是不二選擇,國內外已有將微衛(wèi)星標記應用于漁業(yè)資源增殖放流效果評價的研究(Sekino et al, 2003; 成為為等, 2014)。近年來,利用磁珠富集法和FIASCO法構建微衛(wèi)星富集文庫法,開發(fā)出多對曼氏無針烏賊微衛(wèi)星標記,并利用開發(fā)標記對群體多態(tài)性進行了分析(Wu et al, 2010; 吳璋等, 2011; Guo et al, 2013; 張川等, 2014),之后鮮見關于曼氏無針烏賊微衛(wèi)星標記開發(fā)的報道。
為進一步開發(fā)可用的微衛(wèi)星標記資源,本研究利用曼氏無針烏賊高通量轉錄組數(shù)據(jù),獲得127575條Unigene序列。利用計算機軟件進行微衛(wèi)星位點的搜索,并分析微衛(wèi)星序列的特征、分布和組成等信息,為后續(xù)篩選大量的微衛(wèi)星遺傳標記提供基礎數(shù)據(jù)。
曼氏無針烏賊視腺轉錄組數(shù)據(jù)(未發(fā)表)來自本實驗室,組裝并去冗余后得到127575個Unigene序列,總長度103104058 bp。
為檢測曼氏無針烏賊轉錄組中 SSR位點,利用Perl語言操作平臺下的MISA軟件(MISA- MIcroSAtellite identification tool, MISA)(Lu et al, 2013)搜索 Unigene中的 SSR位點,搜索參數(shù)分別設置為:二核苷酸、三核苷酸、四核苷酸、五核苷酸、六核苷酸的最少重復次數(shù)分別為6、5、5、4、4。復合SSR 2個位點間最大間隔堿基數(shù)為(Maximal number of bases interrupting two SSRs in a compound microsatellite) 100。
將Perl語言操作平臺下的MISA軟件生成的結果MISA文件和STATISTICS文件導入Excel,利用高級篩選功能對結果進行細化和匯總分析,分析 SSR類型、數(shù)目、序列長度、出現(xiàn)頻率和分布情況。用SSR出現(xiàn)頻率及分布的平均距離、重復類型、基元組成等,分析曼氏無針烏賊轉錄組SSR的分布特征,其中,
SSR出現(xiàn)頻率=搜索到的 SSR數(shù)量/總 Unigene序列數(shù)量;SSR發(fā)生頻率=含SSR的Unigene數(shù)/Unigene總數(shù);SSR分布的平均距離=總Unigene長度/搜索到的SSR數(shù)量。
利用SPSS軟件計算微衛(wèi)星出現(xiàn)頻率與序列長度的皮爾遜(Pearson)相關系數(shù)。顯著性檢驗的水平定義為P≤0.05,差異顯著;P≤0.01,差異極顯著。
對127575條Unigene序列進行SSR檢測,共得到62124個SSR(完整型SSR 36813個),分布在50626條 Unigene序列當中。SSR發(fā)生頻率(含 SSR的Unigene數(shù)/Unigene總數(shù))為39.68%,SSR出現(xiàn)頻率(檢出SSR位點數(shù)/Unigene總數(shù)) 48.70%,平均每16.6 kb含有 1個 SSR位點。其中,25548條 Unigene含有1個以上SSR位點,復合型SSR數(shù)目為22001個。經(jīng)對曼氏無針烏賊轉錄組中不同堿基完整型 SSR進行分析,部分SSR信息見表1。
在 62124個曼氏無針烏賊微衛(wèi)星的所有堿基重復類型中,二堿基重復 SSR含量最多,約占總數(shù)的50.27%,其次為三堿基重復SSR(26.13%)、四堿基重復SSR(22.37%),五堿基和六堿基重復SSR所占比例最少(表 2)。研究發(fā)現(xiàn),曼氏無針烏賊微衛(wèi)星中共有122種重復基元(motif)。其中,二、三、四、五和六堿基重復基元中在各自重復類型出現(xiàn)頻率最多的分別是(AT/AT)n、(AAT/ATT)n、(AAAG/CTTT)n、(AAAAG/CTTTT)n和(AAAAAG/CTTTTT)n。它們在各自重復基元類型中的比例分別是46.41%、26.58%、77.87%、32.67%和20.61%。
表1 曼氏無針烏賊轉錄組中微衛(wèi)星數(shù)據(jù)庫的部分結果Tab.1 SSR database of S. japonica transcriptome
表2 曼氏無針烏賊轉錄中不同微衛(wèi)星重復基元(motif)出現(xiàn)的頻率Tab.2 Occurrence frequency of different microsatellites motifs of S. japonica transcriptome
在曼氏無針烏賊微衛(wèi)星序列 122種堿基重復模式中,二、三、四、五及六堿基重復基元分別有4、10、28、45和35種。從每種重復基元在總SSR(62124)所占的比例來看,所占比例最高的是(AT/AT)n(23.33%),其次為(AAAG/CTTT)n(17.42%)、(AC/GT)n(16.30%)、(AG/CT)n(10.61%)、(AAT/ATT)n(6.94%)和(AAG/CTT)n(6.46%)等。不同類型重復基元SSRs占總SSR的比例分布見圖1。
圖1 基于重復基元(motif)類型的微衛(wèi)星分布(考慮到堿基互補作用)Fig.1 Microsatellites distribution on different repeat motifs (considering sequence complementary)“其他”表示頻率小于0.50%的重復基元類型“Other motifs” denoted the repeat motifs with frequency below 0.50%
曼氏無針烏賊轉錄組中所發(fā)現(xiàn)的 36813個完整型微衛(wèi)星中,微衛(wèi)星長度存在極顯著變異,片段長度從12~147 bp不等,平均長度為25.87 bp。曼氏無針烏賊微衛(wèi)星序列中,主要是重復長度大于20 bp的長重復序列,長度在20 bp以上的有18774條,達到微衛(wèi)星(完整型)總數(shù)的51%;而重復長度小于20 bp的短重復序列僅占微衛(wèi)星(完整型)總數(shù)的49%,其中,長度在12~15 bp的數(shù)量略多,長度在16~20 bp之間的次之(圖2)。此外,片段長度在20 bp以上的低級重復基元(二、三核苷酸重復基元)占20 bp以上SSR(完整型)總數(shù)的36.78%,共計13539條。本研究利用SPSS軟件進行Pearson相關性分析表明,曼氏無針烏賊微衛(wèi)星的出現(xiàn)頻率和微衛(wèi)星的長度呈極顯著負相關(P<0.01),相關系數(shù)為–0.594。
曼氏無針烏賊轉錄組中微衛(wèi)星數(shù)量與片段長度的分布關系如圖3所示。從圖3可以看出,曼氏無針烏賊 SSR數(shù)量隨著重復次數(shù)的增加呈明顯下降趨勢。二堿基重復隨重復次數(shù)的增加,SSR數(shù)量開始直線下降,當重復次數(shù)從10次增加到11次時,曼氏無針烏賊SSR數(shù)量陡然增加,之后繼續(xù)下降,速率趨于平緩。三堿基重復SSR數(shù)量則一直隨重復次數(shù)增加而減少。當二堿基重復次數(shù)達到11次、三堿基重復次數(shù)達到9次、其他堿基重復次數(shù)達到12次時,SSR的下降速率降低趨于平緩,下降速率較為穩(wěn)定。
圖2 曼氏無針烏賊轉錄組中微衛(wèi)星的長度分布Fig.2 Length distribution of microsatellites in S. japonica transcriptome
圖3 曼氏無針烏賊轉錄組中SSR數(shù)量隨重復次數(shù)的變化Fig.3 Variation of repeat times on number of microsatellites in S. japonica transcriptome“其他”表示四、五、六堿基重復SSR的總和“Others” denoted the total of Tetra-, Penta-, and Hex- nucleotides repeats
本研究基于對曼氏無針烏賊轉錄組進行測序所得數(shù)據(jù),使用MISA軟件對127575個Unigene進行微衛(wèi)星特征分析,共發(fā)現(xiàn)62124個微衛(wèi)星位點,分布在50626條Unigene序列中。SSR的發(fā)生頻率(含SSR的Unigene數(shù)/Unigene總數(shù))為39.68%,平均間隔16.6 kb出現(xiàn)1個SSR序列。不同物種間微衛(wèi)星的出現(xiàn)頻率不同且差異較大,曼氏無針烏賊視腺組織轉錄組中微衛(wèi)星位點出現(xiàn)頻率達到 48.70%,遠大于茶樹花(Camellia sinensis)(16.66%)、野三七(Panax vietnamensis var. fuscidiscus)(16.82%)、油松(Pinus tabulaeformis)(2.23%)(王麗鴛等, 2014; 李翠婷等,2014; 安俊等, 2016)等植物;溝眶象(Eucryptorrhynchus chinensis) (10.36%)、粘蟲(Mythimna separate) (1.93%)、小胸鱉甲(Microdera punctipennis)(7.94%)等昆蟲動物(武政梅等, 2016; 胡艷華等, 2015;庫爾班·吐松等, 2017)和中華鱉(Pelodiscus sinensis)(22.3%)、諸氏鯔蝦虎魚(Mugilogobius chulae)(12.97%)、黃姑魚(Nibea albiflora Richardson)(39.30%)等水生生物(Wang et al, 2013; 蔡磊等, 2015;龔詩琦等, 2016)。與其他軟體動物,如馬氏珠母貝(Pinctada martensii)(13.34%)、縊蟶(Sinonovacula constricta)(8.89%)、蝦夷扇貝(Mizuhopecten yessoensis)(3.69%)(王忠良等, 2015; 劉博等, 2012; 李云峰等,2010)等相比,本研究SSR出現(xiàn)頻率也較高,說明曼氏無針烏賊視腺組織轉錄組 SSR數(shù)量非常豐富。分析其中的原因,一方面,搜索 SSR位點時,不同的搜索軟件、搜索參數(shù)的設置和序列數(shù)據(jù)量大小等都可能對研究結果產(chǎn)生影響。不同物種的物種特異性可能是最根本的原因(黃海燕等, 2013)。
本研究發(fā)現(xiàn),曼氏無針烏賊微衛(wèi)星序列的重復類型中,二堿基重復類型的數(shù)量最高,約占總數(shù)的50.27%;三堿基重復類型的數(shù)量次之,約占總數(shù)的26.13%。這與草魚(Ctenopharyngodon idellus)、紅鰭東方鲀(Takifugu rubripes)等以二堿基重復為主的水生生物相同(李偲等, 2011; 崔建洲等, 2006)。也有水生生物,如翹嘴鱖(Siniperca chuatsi)、縊蟶等以三堿基重復為主(袁文成等, 2015; 劉博等, 2012)。造成以上差異的原因除了物種特異性的差異之外,與搜索SSR軟件的不同和搜索 SSR參數(shù)的設置也有很大關系(Wei et al, 2011)。
SSR分子標記多態(tài)性的高低是判斷其潛在利用價值的重要依據(jù),而其長度大小是決定標記多態(tài)性高低的關鍵(李珊等, 2010)。當SSR長度≥20 bp時,多態(tài)性較高;當12<SSR長度<20 bp時,SSR呈中度多態(tài)性;當 SSR長度<12 bp時,SSR呈低多態(tài)性(Temnykh et al, 2001)。本研究在SSR篩選設置參數(shù)時,已將長度在12 bp以下的SSR序列篩除,發(fā)現(xiàn)曼氏無針烏賊轉錄組中完整型SSR長度在12~147個堿基之間,平均長度為25.87個堿基。在36813個完整型SSR中,片段長度在12~20 bp之間的SSR有18039條(占SSR總數(shù)的49%),具有中等多態(tài)性;而片段長度≥20 bp的SSR有18774條(占SSR總數(shù)的51%),此類 SSR具高度多態(tài)性。此外,研究發(fā)現(xiàn),片段長度在20 bp以上的低級重復基元(二、三核苷酸重復基元)占20 bp以上SSR總數(shù)的36.78%,比例較大,共計13539條。由此可見,曼氏無針烏賊轉錄組來源的SSR具有較高的多態(tài)性潛能,在開發(fā)曼氏無針烏賊微衛(wèi)星分子標記研究方面將具有較高的利用價值(楊華等, 2011; Dreisigacker et al, 2004)。利用SPSS軟件進行Pearson相關性分析,發(fā)現(xiàn)曼氏無針烏賊微衛(wèi)星出現(xiàn)頻率和其長度呈極顯著負相關(P<0.01),相關系數(shù)為–0.594。模擬分析研究得出,微衛(wèi)星重復單位長度與選擇壓力相關,經(jīng)受的選擇壓力越小,重復次數(shù)越多;經(jīng)受的壓力越大,重復次數(shù)越少(Samadi et al,1998)。郭文久(2004)分析了 29個真核生物基因組微衛(wèi)星真實統(tǒng)計數(shù)據(jù),計算發(fā)現(xiàn),二者相關系數(shù)r=–0.304007852,概率值 P=1.31967×10?28,小于 0.01,驗證了Samadi等(1998)的結果。發(fā)現(xiàn)重復motif長度越長,重復次數(shù)越少,說明不僅在曼氏無針烏賊基因組微衛(wèi)星序列中,微衛(wèi)星序列會隨著重復motif長度的增加,重復次數(shù)顯著減少,在大部分真核生物基因組微衛(wèi)星序列中也是如此。
本研究利用高通量測序技術首次對曼氏無針烏賊視腺組織轉錄組進行測序,對 Unigene序列進行SSR檢索,共查找到62124個SSR (36813個完整型SSR)位點,分布在50626條Unigene序列中。SSR重復類型主要以二堿基重復為主,其次為三堿基和四堿基重復。曼氏無針烏賊 SSR序列中,主要為重復片段長度大于20 bp的長序列微衛(wèi)星,占微衛(wèi)星總數(shù)(完整型)的 51%,呈現(xiàn)較高的多態(tài)性。近年來,由于二代測序技術的迅速發(fā)展,使得大批量的測序成為可能,推動基因組學和生物信息學研究的不斷深入,而借助高通量測序技術有關轉錄組微衛(wèi)星方面的研究也逐漸興起。微衛(wèi)星分子標記技術的應用越來越廣泛,但關于曼氏無針烏賊轉錄組微衛(wèi)星的研究仍很少。本研究通過對曼氏無針烏賊視腺組織轉錄組數(shù)據(jù)進行微衛(wèi)星位點的搜索,并分析 SSR特征,研究表明,利用轉錄組數(shù)據(jù)發(fā)掘 SSR是高效可行的。研究結果為開發(fā)高多態(tài)性微衛(wèi)星引物來進行曼氏無針烏賊親緣鑒定、放流效果評估、種群遺傳結構、種群遺傳多樣性等研究奠定了基礎。
An J, Zheng CX, Yao Y, et al. Characterization of microsatellites of ovule transcriptome in Pinus tabulaeformis. Journal of Beijing Forestry University, 2016, 38(5): 77–83 [安俊,鄭彩霞, 姚陽, 等. 油松胚珠轉錄組微衛(wèi)星特征分析. 北京林業(yè)大學學報, 2016, 38(5): 77–83]
Cai L, Yu LJ, Chen XQ, et al. A preliminary screening and characteristic analysis of microsatellite markers from transcriptome sequences in Mugilogobius chulae. Biotechnology Bulletin, 2015, 31(9): 146–151 [蔡磊, 余露軍, 陳小曲, 等.諸氏鯔蝦虎魚轉錄組序列中微衛(wèi)星標記的初步篩選及特征分析. 生物技術通報, 2015, 31(9): 146–151]
Chang KM, Wu CW, Lv ZM, et al. Comparison in biochemistry of tissues of wild and cultured Sepiella maindroni.Oceanologia et Limnologia Sinica, 2008, 39(2): 145–151[常抗美, 吳常文, 呂振明, 等. 曼氏無針烏賊(Sepiella maindroni)野生及養(yǎng)殖群體的生化特征及其形成機制的研究. 海洋與湖沼, 2008, 39(2): 145–151]
Chang KM, Wu CW, Lv ZM, et al. Study on embryo development and artificial breeding of Sepiella maindroni.Journal of Zhejiang Ocean University (Natural Science),2009, 28(3): 257–263 [??姑? 吳常文, 呂振明, 等. 曼氏無針烏賊胚胎發(fā)育與人工育苗技術的研究. 浙江海洋學院學報(自然科學版), 2009, 28(3): 257–263]
Chen RY, Wang GX, Liu HJ, et al. Difference in parental contribution to reproduction in Japanese flounder(Paralichthys olivaceus). Journal of Fishery Sciences of China, 2013, 20(4): 698–705 [陳睿毅, 王桂興, 劉海金,等. 牙鲆親本對子代貢獻率的實驗研究. 中國水產(chǎn)科學,2013, 20(4): 698–705]
Cheng WW, Wang DQ, Wei QW, et al. Effect of restocking enhancement of Chinese sucker in the middle and upper reaches of Yangtze River based on microsatellite loci.Journal of Fishery Sciences of China, 2014, 21(3): 574–580[成為為, 汪登強, 危起偉, 等. 基于微衛(wèi)星標記對長江中上游胭脂魚增殖放流效果的評估. 中國水產(chǎn)科學, 2014,21(3): 574–580]
Cui JZ, Shen XY, Yang GP, et al. The analysis of simple sequence repeats in Takifugu rubripes genome. Periodical of Ocean University of China, 2006, 36(2): 249–254 [崔建洲,申雪艷, 楊官品, 等. 紅鰭東方鲀基因組微衛(wèi)星特征分析.中國海洋大學學報, 2006, 36(2): 249–254]
Dong ZY, Wu CW, Ye DF. A fluorescent method for marking the cuttlefish, Sepiella maindroni de Rochebrune. Journal of Zhejiang Ocean University (Natural Science), 2010, 29(2):120–128 [董智勇, 吳常文, 葉德鋒. 曼氏無針烏賊熒光標記技術初步研究. 浙江海洋學院學報(自然科學版), 2010,29(2): 120–128]
Dong ZZ. Fauna sinica, Mollusca, Cephalopoda. Beijing:Science Press, 1988, 181–182 [董正之. 中國動物志軟體動物門頭足綱. 北京: 科學出版社, 1988, 181–182]
Dreisigacker S, Zhang P, Warburton ML, et al. SSR and pedigree analyses of genetic diversity among CIMMYT wheat lines targeted to different megaenvironments. Crop Science, 2004,44(2): 381–388
Garoia F, Guarniero I, Ramsak A, et al. Microsatellite DNA variation reveals high gene flow and panmictic populations in the Adriatic shared stocks of the European squid and cuttlefish (Cephalopoda). Heredity, 2004, 93(2): 166–174
Gong SQ, Wang ZY, Xiao SJ, et al. Development and verification of SSR based on transcriptome of yellow drum,Nibea albiflora. Journal of Jimei University (Natural Science), 2016, 21(4): 241–246 [龔詩琦, 王志勇, 肖世俊,等. 黃姑魚轉錄組SSR的開發(fā)與驗證. 集美大學學報(自然科學版), 2016, 21(4): 241–246]
Guo BY, Qi PZ, Zhu AY, et al. Isolation and characterization of new polymorphic microsatellite markers from the cuttlefish Sepiella maindroni (Cephalopoda; Sepiidae). Genetics and Molecular Research, 2013, 12(3): 2376–2379
Guo WJ. Primary research on the microsatellite distribution and function in genomes and the relevant computational methodology. Doctoral Dissertation of Sichuan Agricutural University, 2004, 79–83 [郭文久. 微衛(wèi)星在基因組上的分布與功能及其計算方法初步研究. 四川農(nóng)業(yè)大學博士研究生學位論文, 2004, 79–83]
He P. Abundance, polymorphism and applications of microsatellite in eukaryote. Hereditas, 1998, 20(4): 42–47[何平. 真核生物中的微衛(wèi)星及其應用. 遺傳, 1998, 20(4):42–47]
Hu YH,Li M, Zhang HF, et al. The information analysis of SSR loci in the Mythimna separate (Walker) transcriptome.Journal of Shanxi Agricultural University (Natural Science Edition), 2015, 35(5): 484–489 [胡艷華, 李敏, 張虎芳, 等.粘蟲轉錄組中 SSR位點的信息分析. 山西農(nóng)業(yè)大學學報(自然科學版), 2015, 35(5): 484–489]
Huang HY, Du HY, Wuyun TN, et al. Development of SSR molecular markers based on transcriptome sequencing of Eucommia ulmoides. Scientia Silvae Sinicae, 2013, 49(5):176–181 [黃海燕, 杜紅巖, 烏云塔娜, 等. 基于杜仲轉錄組序列的 SSR 分子標記的開發(fā). 林業(yè)科學, 2013, 49(5):176–181]
Kuerban TS, Chen Z, Liu XN, et al. Bioinformatic analysis of the microsatellites from the transcriptome of desert beetle Microdera punctipennis . Genomics and Applied Biology,2017(3): 865–873 [庫爾班·吐松, 陳真, 劉小寧, 等. 荒漠昆蟲小胸鱉甲轉錄組微衛(wèi)星的生物信息學分析. 基因組學與應用生物學, 2017(3): 865–873]
Li C, Liu H, Huang R, et al. Identification of typeⅠmicrosatellite markers and their polymorphism in grass carp(Ctenopharyngodon idellus). Acta Hydrobiologica Sinica,2011, 35(4): 681–687 [李偲, 劉航, 黃容, 等. 草魚Ⅰ型微衛(wèi)星標記的發(fā)掘及其多態(tài)性檢測. 水生生物學報, 2011,35(4): 681–687]
Li CT, Zhang GH, Ma CH, et al. Analysis on SSR loci information in transcriptome of Panax vienamensis var.fuscidiscus and its polymorphism. Chinese Traditional and Herbal Drugs, 2014, 45(10): 1468–1472 [李翠婷, 張廣輝,馬春花, 等. 野三七轉錄組中 SSR位點信息分析及其多態(tài)性研究. 中草藥, 2014, 45(10): 1468–1472]
Li S, Zhou TH, Zhao GF, et al. Data mining for simple sequence repeats in expressed sequence tags from Saruma henryi.Chinese Traditional and Herbal Drugs, 2010, 41(3):464–468 [李珊, 周天華, 趙桂仿, 等. 馬蹄香表達序列標簽資源的SSR信息分析. 中草藥, 2010, 41(3): 464–468]
Li YF, Liu WD, Gao XG, et al. Construction of cDNA libraries from mantle and kidney of Japanese scallop(Mizuhopecten yessoensis) and ESTs analysis. Journal of Fishery Sciences of China, 2010, 17(3): 578–585 [李云峰, 劉衛(wèi)東, 高祥剛,等. 蝦夷扇貝外套膜和腎臟組織 cDNA 文庫構建以及EST 的初步分析. 中國水產(chǎn)科學, 2010, 17(3): 578–585]
Liu B, Shao YQ, Teng SS, et al. Characterization, development and utilization of EST-derived microsatellites in Sinonovacula constricta. Oceanologia et Limnologia Sinica,2012, 43(1): 132–137 [劉博, 邵艷卿, 滕爽爽, 等. 縊蟶(Sinonovacula constricta)EST-SSR分布特征及引物開發(fā)利用. 海洋與湖沼, 2012, 43(1): 132–137]
Lu X, Wang H, Liu B, et al. Three EST-SSR markers associated with QTL for the growth of the clam Meretrix meretrix revealed by selective genotyping. Marine Biotechnology,2013, 15(1): 16–25
Moreira AA, Tomás ARG, Hilsdorf AWS. Evidence for genetic differentiation of Octopus vulgaris (Mollusca, Cephalopoda)fishery populations from the southern coast of Brazil as revealed by microsatellites. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 2011, 407(1): 34–40
Pérez-Losada M, Guerra A, Carvalho GR, et al. Extensive population subdivision of the cuttlefish Sepia officinalis(Mollusca: Cephalopoda) around the Iberian Peninsula indicated by microsatellite DNA variation. Heredity, 2002,89(6): 417–424
Samadi S, Artiguebielle E, Estoup A, et al. Density and variability of dinucleotide microsatellites in the parthenogenetic polyploid snail Melanoides tuberculata. Molecular Ecology,1998, 7(9): 1233–1236
Sekino M, Saitoh K, Yamada T, et al. Microsatellite-based pedigree tracing in a Japanese flounder Paralichthys olivaceus hatchery strain: Implications for hatchery management related to stock enhancement program.Aquaculture, 2003, 221(1–4): 255–263
Shi HL, Zhang T, Ping HL, et al. Study on the technology of large scale artificial breeding and enhancement of Sepiella maindroni. Scientific Fish Farming, 2015(12): 44–46 [史會來, 張濤, 平洪領, 等. 曼氏無針烏賊規(guī)?;斯し庇霸鲋撤帕骷夹g探討. 科學養(yǎng)魚, 2015(12): 44–46]
Temnykh S, DeClerck G, Lukashova A, et al. Computational and experimental analysis of microsatellites in rice (Oryza sativa L.): Frequency, length variation, transposon associations, and genetic marker potential. Genome Research, 2001, 11(8):1441?1452
Wang LY, Wei K, Zhang CC, et al. Characterization of microsatellites in tea (Camellia sinensis) floral transcriptome.Acta Agronomica Sinica, 2014, 40(1): 80–85 [王麗鴛, 韋康, 張成才, 等. 茶樹花轉錄組微衛(wèi)星分布特征. 作物學報, 2014, 40(1): 80?85]
Wang W, Li C, Ge C, et al. De-novo characterization of the soft-shelled turtle Pelodiscus sinensis transcriptome using Illumina RNA-Seq technology. Journal of Zhejiang University Science B, 2013, 14(1): 58–67
Wang ZL, Ding Y, Xu YH, et al. Polymorphism of EST-SSRs from Pinctada martensii based on transcriptome datasets.Oceanologia et Limnologia Sinica, 2015, 46(3): 687–693[王忠良, 丁燏, 許尤厚, 等. 基于轉錄組數(shù)據(jù)的馬氏珠母貝EST-SSR位點的信息分析及其多態(tài)性檢測. 海洋與湖沼, 2015, 46(3): 687–693]
Wei WL, Qi XQ, Wang LH, et al. Characterization of the sesame(Sesamum indicum L.) global transcriptome using Illumina paired-end sequencing and development of EST-SSR markers. BMC Genomics, 2011, 12: 451
Wu CW, Chi CF, He GY, et al. Isolation via enrichment and characterization of ten polymorphic microsatellite loci in the cuttlefish, Sepiella maindroni de Rochebruns. Acta Oceanologica Sinica, 2010, 29(6): 121–124
Wu CW, Dong ZY, Chi CF, et al. Reproductive and spawning habits of Sepiella maindroni off Zhejiang, China.Oceanologia et Limnologia Sinica, 2010, 41(1): 39–46 [吳常文, 董智勇, 遲長鳳, 等. 曼氏無針烏賊(Sepiella maindroni)繁殖習性及其產(chǎn)卵場修復的研究. 海洋與湖沼,2010, 41(1): 39–46]
Wu Z, Zhang XJ, Jiang XM, et al. Isolation of GT microsatellite loci from Sepiella maindroni. Biotechnology Bulletin, 2011(3):120–124 [吳璋, 張曉菊, 蔣霞敏, 等. 曼氏無針烏賊 GT微衛(wèi)星位點的篩選. 生物技術通報, 2011(3): 120– 124]
Wu ZM, Gao P, Wen JB. Characteristic analysis of microsatellite in Eucryptorrhynchus chinensis transcriptome. Journal of Environmental Entomology, 2016, 38(5): 979–983 [武政梅,高朋, 溫俊寶. 溝眶象轉錄組微衛(wèi)星特征分析. 環(huán)境昆蟲學報, 2016, 38(5): 979–983]
Yang H, Chen Q, Wei ZL, et al. Analysis on SSR information in Camellia sinensis transcriptome. Journal of Anhui Agricultural University, 2011, 38(6): 882–886 [楊華, 陳琪, 韋朝領, 等.茶樹轉錄組中SSR位點的信息分析. 安徽農(nóng)業(yè)大學學報,2011, 38(6): 882–886]
Yuan WC, Huang HZ, Li WL, et al. Analysis of EST-SSRs information in Siniperca chuatsi transcriptome and detection of polymorphism. Oceanologia et Limnologia Sinica, 2015,46(2): 403–409 [袁文成, 黃鶴忠, 李文龍, 等. 翹嘴鱖(Siniperca chuatsi)轉錄組EST-SSR位點的信息分析及其多態(tài)性檢測. 海洋與湖沼, 2015, 46(2): 403–409]
Zhang C, Guo BY, Wu CW, et al. Construction and identification of DNA libraries enriched for microsatellite repeat sequences of Sepiella maindroni. Journal of Zhejiang Ocean University (Natural Science), 2014, 33(6): 483–487 [張川,郭寶英, 吳常文, 等. 曼氏無針烏賊微衛(wèi)星 DNA富集文庫構建與鑒定. 浙江海洋學院學報(自然科學版), 2014,33(6): 483–487]