孫 芳 王紅紅 張 姣 郇 通 李 艷△
(1濟(jì)寧醫(yī)學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,濟(jì)寧 272067;2大理大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,大理 671000;3杭州市第一人民醫(yī)院, 杭州310006)
組蛋白賴氨酸甲基轉(zhuǎn)移酶(nuclear receptor SET domain containing protein 2,NSD2)也作MMSET或者WHSC1,是NSD蛋白家族的成員之一,利用其含有的SET結(jié)構(gòu)域,主要催化組蛋白H3賴氨酸第36號位的二甲基化(H3K36me2),進(jìn)一步發(fā)揮基因調(diào)控作用[1]。NSD2與多種疾病尤其是腫瘤關(guān)系密切[2]。如:NSD2的過表達(dá)與前列腺癌、頭頸部鱗癌的高分級、腫瘤細(xì)胞增殖密切相關(guān)[3-4],與肝細(xì)胞癌[5]、卵巢癌[6]、子宮內(nèi)膜癌[7]、子宮頸癌[8]的分期、分級以及不良預(yù)后密切相關(guān),與骨肉瘤[9]細(xì)胞增殖、轉(zhuǎn)移以及不良預(yù)后密切相關(guān)等。另外,NSD2單倍體不足可以導(dǎo)致以腦部發(fā)育過小為特點的沃爾夫綜合征[10],在神經(jīng)母細(xì)胞瘤中,NSD2高表達(dá)與腫瘤不良臨床病理特征聯(lián)系,與轉(zhuǎn)移和不良預(yù)后密切相關(guān)[11]。目前NSD2的生理功能和致癌機(jī)制大部分仍不清楚,我們在體外誘導(dǎo)了小鼠胚胎干細(xì)胞(mESCs)向神經(jīng)細(xì)胞(NCs)方向分化,觀察NSD2和相關(guān)組蛋白修飾H3K36me2、H3K36me3在mESCs向NCs分化過程中的蛋白表達(dá)變化,旨在為進(jìn)一步研究NSD2在神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育中的生理功能和作用機(jī)制提供依據(jù)。
1.1.1細(xì)胞系 E14Tg2A.4小鼠胚胎干細(xì)胞由首都師范大學(xué)張偉偉教授實驗室贈送。
1.1.2試劑 DMEM培養(yǎng)基、非必需氨基酸、L-谷氨酰胺、核苷酸、β-巰基乙醇、青霉素-鏈霉素 、明膠、1000 U/ml白血病抑制因子(LIF)均為Millipore公司產(chǎn)品;胎牛血清(Hyclone公司);維甲酸(RA,sigma公司);逆轉(zhuǎn)錄酶試劑盒(Fermentas公司);Taq酶(Roche公司);β-actin一抗(60008-1,DATASHEET公司);NSD2一抗(ab75359,abcam公司);H3K36me2一抗(39891,Active Motif公司);H3K36me3一抗(4909S,Cell Signaling公司);H3(ab1791,abcam公司);二抗(ab6709,abcam公司)。
1.1.3儀器 倒置顯微鏡(ZEISS公司);熒光定量PCR儀(Bio-Rad公司);垂直電泳和轉(zhuǎn)印系統(tǒng)(Bio-Rad公司);蛋白印跡檢測系統(tǒng)(ImageQuant LAS4000)。
1.2.1維甲酸(RA)法誘導(dǎo)ESCs向NCs分化 mESCs用含有15%胎牛血清、各1%非必需氨基酸、L-谷氨酰胺、β-巰基乙醇、核苷酸、青霉素-鏈霉素、1000U/ml LIF的DMEM完全培養(yǎng)基進(jìn)行培養(yǎng),將細(xì)胞按照培養(yǎng)天數(shù)(D0~D5)分組,將D0細(xì)胞作為對照組,其他作為實驗組,收集細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)實驗。具體如下:當(dāng)培養(yǎng)至細(xì)胞數(shù)18×106,收取3×106細(xì)胞,當(dāng)作第0天(標(biāo)記為D0,其中1/3細(xì)胞沉淀備用于RIPA裂解提取總蛋白做Western Blot,1/3備用于酸提取組蛋白做Western Blot,1/3備用于提RNA)。其余細(xì)胞按照1.5×106/10cm培養(yǎng)皿的密度種植到10個培養(yǎng)皿,用不加LIF的DMEM完全培養(yǎng)基,加入RA(濃度5×10-7mol/L)進(jìn)行誘導(dǎo),其間每天進(jìn)行細(xì)胞換液,觀察細(xì)胞形態(tài)并拍照保存,于D5誘導(dǎo)結(jié)束。于誘導(dǎo)分化的D1~D5分別收集細(xì)胞2盤,同樣的,其中1/3細(xì)胞沉淀備用于提取總蛋白做Western Blot,1/3細(xì)胞沉淀備用于提取組蛋白做Western Blot,1/3備用于提RNA。
1.2.2RT-qPCR法檢測mESCs標(biāo)記物、NCs早期分化標(biāo)記物mRNA的表達(dá) 在細(xì)胞分化過程中,按固定時間收獲細(xì)胞,Trizol 試劑提取RNA,逆轉(zhuǎn)錄cDNA,進(jìn)行Real-Time PCR。相應(yīng)小鼠引物設(shè)計如下(華大基因合成)。見表1。
表1 引物序列
1.2.3Western Blot檢測NSD2及相關(guān)組蛋白修飾的蛋白表達(dá) 總蛋白Western Blot分析NSD2表達(dá):將收獲的細(xì)胞沉淀,每管加入100μl碧云天的強(qiáng)RIPA裂解液,冰上裂解30min,用Biosafer 1000細(xì)胞超聲破碎儀破碎細(xì)胞,4℃,16000r,離心10min,取上清,測定蛋白濃度,按照60μg的上樣量進(jìn)行 SDS-PAGE蛋白電泳,4℃,360mA,60min轉(zhuǎn)膜,3%脫脂奶粉封閉1h,一抗β-actin (1∶10000)、NSD2(1∶3000)室溫孵育1h,TBST洗膜3次,每次5~10 min,二抗(1∶10000)室溫孵育1h,再用TBST洗膜3次,每次5~10 min,ECL化學(xué)發(fā)光,蛋白印跡檢測系統(tǒng)顯影,利用Image Quant TL軟件分析條帶灰度值,以β-actin為內(nèi)參,計算相對蛋白含量。
組蛋白Western Blot分析H3K36me2、H3K36 me3的表達(dá):采用酸提取法,即0.2N HCl 4℃過夜處理細(xì)胞沉淀,4℃,16000r,離心10min, 取上清,1/5體積的1M NaOH中和,測定蛋白濃度,按照20μg的上樣量進(jìn)行 SDS-PAGE蛋白電泳,4℃,360mA,20min轉(zhuǎn)膜,3%脫脂奶粉封閉1h,一抗H3K36me2(1∶1000)、H3K36me3(1∶2000)室溫孵育1h,后續(xù)操作同上。
采用SPSS17.0軟件統(tǒng)計包進(jìn)行統(tǒng)計分析。
mESCs細(xì)胞呈圓或卵圓形,胞核相對比較大并且核仁比較明顯。加入RA誘導(dǎo)1天時(D1),細(xì)胞增殖明顯,逐漸向外擴(kuò)展,并且發(fā)生明顯的形狀改變,RA誘導(dǎo)3天時(D3)細(xì)胞開始伸出突起,變細(xì)變長,在誘導(dǎo)第5天(D5)時,細(xì)胞形態(tài)已趨于一致,胞體圓亮,多呈雙極性,逐漸連接成神經(jīng)樣網(wǎng)絡(luò)。見圖1。
注:A,mESCs ;B,誘導(dǎo)分化第1天;C,誘導(dǎo)分化第3天;D,誘導(dǎo)分化第5天
圖1 mESCs向NCs誘導(dǎo)分化過程中細(xì)胞形態(tài)的觀察(100×)
與初始胚胎干細(xì)胞狀態(tài)(D0)相比,在誘導(dǎo)分化結(jié)束時(D5),干細(xì)胞標(biāo)記物Sox2、Oct3/4、Nanong的mRNA水平顯著下降,NCs早期分化標(biāo)記物Nestin、 NeuroD、 Tuj1的mRNA水平顯著上升,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05)。見圖2。綜合細(xì)胞形態(tài)學(xué)上的變化和mRNA表達(dá)水平變化,可以基本確定體外mESCs經(jīng)RA誘導(dǎo)向NCs方向分化成功。
通過Western Blot,本實驗檢測到I型NSD2(75kd)和II型NSD2(150kd)在mESCs向NCs分化過程中的蛋白特異性表達(dá)變化,II型NSD2因具備甲基轉(zhuǎn)移酶活性,所以更有意義。結(jié)果顯示:NSD2在mESCs狀態(tài)(D0)相對蛋白水平表達(dá)較低,在加入RA誘導(dǎo)向NCs分化1天后(D1),突然升高,隨后在誘導(dǎo)分化的第2天(D2)開始下降,并于第3天(D3)開始直到觀察結(jié)束幾乎消失,即先升高后下降的變化,與D0相比,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05)。見圖3。
A
B
注:與D0組比較,*P<0.05 ;
A,mESCs標(biāo)記物在D0和D5時mRNA的表達(dá);
B,NCs早期分化標(biāo)記物在D0和D5時mRNA的表達(dá)
圖2 mESCs標(biāo)記物和NCs早期分化標(biāo)記物在D0和D5時mRNA的表達(dá)
A
B
注:與D0組比較,*P<0.05
圖3 NSD2在ESCs向NCs分化過程中蛋白表達(dá)量的變化
本實驗觀察了在mESCs向NCs分化過程中,NSD2直接催化的組蛋白標(biāo)記H3K36me2的表達(dá)變化,NSD2表達(dá)量與H3K36me2變化趨勢不完全一致。以總體的組蛋白H3為內(nèi)參,H3K36me2的相對蛋白表達(dá)量未有顯著變化。另外,本實驗還觀察了以H3K36me2為底物的H3K36me3,其變化也不明顯??偟膩碚f組蛋白甲基化總量變化較小,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見圖4。
圖4 ESCs向NCs分化過程中NSD2相關(guān)組蛋白甲基化標(biāo)記的表達(dá)變化
作為表觀遺傳學(xué)研究的一個重要內(nèi)容,組蛋白修飾與疾病的關(guān)系越來越受到人們的重視,成為當(dāng)前研究的一個熱點。組蛋白甲基轉(zhuǎn)移酶NSD2與神經(jīng)系統(tǒng)疾病尤其是腫瘤的發(fā)生發(fā)展關(guān)系密切,然而,NSD2在神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育中的生理功能以及致癌機(jī)制大部分仍不清楚。本文在體外成功地誘導(dǎo)了ESCs 向NCs的分化,觀察NSD2及相關(guān)組蛋白修飾的蛋白表達(dá)變化,以期為下一步研究提供依據(jù)。
早就有研究表明NSD2單倍體不足可以導(dǎo)致沃爾夫綜合征(Wolf Hirschhorn syndrome),而NSD2缺陷的小鼠出生后死于心臟異常和類似于沃爾夫綜合征的表型[10]。沃爾夫綜合征兒童具有腦部生長過小和智力發(fā)育不全特點,即神經(jīng)細(xì)胞數(shù)量減少的情況,推測NSD2的一個生理功能是促進(jìn)NCs增殖作用。同時,Hudlebusch等[11]研究表明,NSD2在神經(jīng)母細(xì)胞瘤中的表達(dá)水平是升高的,高表達(dá)的NSD2與患者預(yù)后差相關(guān),并且高表達(dá)的NSD2是神經(jīng)母細(xì)胞瘤細(xì)胞增殖所必需的,這與NSD2促進(jìn)NCs增殖的作用是一致的。
本實驗采用RA誘導(dǎo)法,在體外成功的誘導(dǎo)了ESCs 向NCs的分化,觀察到NSD2在mESCs向NCs分化過程中特異性的蛋白表達(dá)變化,這與我們先前用擬胚體分化法誘導(dǎo)mESCs 向NCs的分化過程中觀察到的總體結(jié)果是一致的[12]。實驗中觀察到:RA作用的早期(D1),細(xì)胞的增殖明顯,而后期(D2-D5)主要是向NCs的分化。我們將整個誘導(dǎo)分化過程分為三個階段,發(fā)現(xiàn)NSD2蛋白發(fā)生了特異性的表達(dá)變化,第一階段:即mESCs(D0),NSD2蛋白水平比較低;第二階段:即在RA作用下細(xì)胞明顯增殖階段(D1),NSD2蛋白水平迅速升高,顯示出與細(xì)胞增殖速度的密切相關(guān);第三階段:即在RA持續(xù)作用下,細(xì)胞停止增殖,開始向NCs方向持續(xù)分化階段(D2-D5),NSD2蛋白水平是顯著下降的。由此,我們推測NSD2可能具有促進(jìn)神經(jīng)細(xì)胞增殖,抑制細(xì)胞分化的作用,但值得進(jìn)一步研究??偟膩碚f,NSD2蛋白水平發(fā)生的顯著變化,可能提示NSD2在調(diào)控mESCs 向NCs發(fā)育中,具有重要的生理功能。在之前我們的另一個研究中,甲基化轉(zhuǎn)移酶EZH2,在mESCs 向NCs的分化過程中也呈現(xiàn)下降趨勢的蛋白表達(dá)變化,這或許提示了EZH2 和NSD2在調(diào)控NCs發(fā)育中,有一定功能上的協(xié)同性[13],有研究也報道過EZH2 和NSD2可能通過microRNA存在著密切聯(lián)系[14],下一步我們將通過沉默和轉(zhuǎn)染NSD2和EZH2,觀察其對神經(jīng)細(xì)胞發(fā)育的影響,深入研究NSD2和EZH2在神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育中的生理功能,并進(jìn)一步研究NSD2和EZH2的相互作用機(jī)制。
NSD2主要通過催化H3K36me2進(jìn)一步調(diào)控基因轉(zhuǎn)錄激活,研究表明,在某些腫瘤比如在多發(fā)性骨髓瘤中,NSD2的過表達(dá)可以引起整個基因組的H3K36me2水平升高[15],然而本實驗觀察到ESCs向NCs分化過程中NSD蛋白表達(dá)量的改變與其催化的組蛋白修飾H3K36me2變化趨勢不完全一致,組蛋白甲基化修飾總量的變化比較小,這可能是因為同時受到其他甲基化轉(zhuǎn)移酶與去甲基化酶綜合作用的結(jié)果,NSD2的變化不一定改變總體的H3K36me2水平,可能只是影響局部少量基因區(qū)。盡管如此,NSD2對局部關(guān)鍵基因的調(diào)控,可以引起基因的轉(zhuǎn)錄激活,仍具有重要意義。
綜上所述,本實驗在體外成功建立了mESCs向NCs分化體系,觀察到了與神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育密切相關(guān)的組蛋白甲基化修飾酶NSD2以及相關(guān)的組蛋白修飾的表達(dá)變化,為下一步研究NSD2在神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育中的生理功能和在腫瘤發(fā)生發(fā)展中的作用機(jī)制打下了基礎(chǔ)。
[1] Li Y,Trojer P,Xu CF,et al.The target of the NSD family of histone lysine methyltransferases depends on the nature of the substrate[J].J Biol Chem,2009,284:34283-34295.DOI:10.1074/jbc.M109.034462.
[2] 郇通,潘云,李艷.NSD家族組蛋白甲基化轉(zhuǎn)移酶與腫瘤發(fā)生[J].中國細(xì)胞生物學(xué)學(xué)報,2015,35(5):728-733.DOI:10.11844/cjcb.2015.05.0369.
[3] Yang P,Guo L,Duan ZJ,et al.Histone methyltransferase NSD2/MMSET mediates constitutive NF-κB signaling for cancer cell proliferation,survival,and tumor growth via a feed-forward loop[J].Mol Cell Biol,2012,32(15):3121-3131.DOI:10.1128/ MCB.0020 4-12.
[4] Saloura V,Cho HS,Kiyotani K,et al.WHSC1 promotes oncogenesis through regulation of NIMA-related kinase-7 in squamous cell carcinoma of the head and neck[J].Mol Cancer Res,2015,13(2):293-304.DOI:10.1158/1541-7786.MC R-14-0292-T.
[5] Zhou P,Wu LL,Wu KM,et al.Overexpression of MMSET is correlation with poor prognosis in hepatocellular carcinoma[J].Pathol Oncol Res,2013,19(2):303-309.DOI:10.1007/s12253-012-9583-z.
[6] Yang S,Zhang Y,Meng F,et al.Overexpression of multiple myeloma SET domain(MMSET)is associated with advanced tumor aggressiveness and poor prognosis in serous ovarian carcinoma[J].Biomarkers,2013,18(3):257-263.DOI:10.3109/1354750X.2013.773082.
[7] Xiao M,Yang S,Chen J,et al.Overexpression of MMSET in endometrial cancer:a clinicopathologic study[J].J Surg Oncol,2013,107(4):428-432.DOI:1 0.100 2/jso.23234.
[8] Yin Z,Sun Y,Ge S,et al.Epigenetic activation of WHSC1 functions as an onc-ogene and is associated with poor prognosis in cervical cancer[J].Oncol Rep,2017,37(4):2286-2294.DOI:10.3892/or.2017.5463.
[9] Lu MH,Fan MF,Yu XD,et al.NSD2 promotes osteosarcoma cell proliferation and metastasis by inhibiting E-cadherin expression[J].Eur Rev Med Pharmacol Sci,2017,21(5):928-936.
[10] Izumi K,Okuno H,Maeyama K,et al.Interstitial microdeletion of 4p16.3:contribution of WHSC1 haploinsufficiency to the pathogenesis of developmental delay in Wolf-Hirschhorn syndrome[J].Am J Med Genet A,2010,152A(4):1028-1032.DOI:10.1002/ajmg.a.33121.
[11] Hudlebusch HR,Skotte J,Santoni-Rugiu E,et al.MMSET is highly expressed and associated with aggressiveness in neuroblastoma[J].Cancer research,2011,71(12):4226-4235.DOI:10.1158/0008-5472.CAN-10-3810.
[12] 郇通,潘云,李艷.NSD1與NSD在神經(jīng)干細(xì)胞發(fā)育過程中的不同角色[J].醫(yī)學(xué)信息,2014,10(2):29-30.
[13] 孫芳,郇通,潘云,等.EZH2蛋白在神經(jīng)細(xì)胞發(fā)育中的表達(dá)變化[J].大理學(xué)院學(xué)報,2015,10(14):9-12.DOI:10.3969 / j.issn.1672-2345.2015.10.003.
[14] Asangani IA,Ateeq B,Cao Q,et al.Characterization of the EZH2-MMSET hist-one methyltransferase regulatory axis in cancer[J].Mol Cell,2013,49(1):80-93.DOI:10.1016/j.molce l.201 2.10.008.
[15] 孫芳,潘云,李艷.組蛋白修飾在常見血液系統(tǒng)腫瘤中作用的研究進(jìn)展[J].中國實驗血液學(xué)雜志,2015,23(4):1184-1189.