李宏玉,唐強(qiáng),朱路文,王雪,鄭婷婷,陳玉紅,趙一點(diǎn),尹俠
1.黑龍江中醫(yī)藥大學(xué),黑龍江哈爾濱市150040;2.黑龍江中醫(yī)藥大學(xué)附屬第二醫(yī)院,黑龍江哈爾濱市150001
缺血性腦卒中常伴有運(yùn)動、感覺、認(rèn)知等一系列功能障礙,嚴(yán)重影響患者日常生活能力。隨著中國康復(fù)醫(yī)學(xué)的發(fā)展,中醫(yī)康復(fù)“治未病”思想對防治缺血性腦卒中發(fā)揮較大作用[1]。缺血前運(yùn)動訓(xùn)練又稱為運(yùn)動預(yù)處理,是指在腦缺血前給予大量重復(fù)運(yùn)動訓(xùn)練,能夠誘導(dǎo)腦缺血耐受,具有神經(jīng)保護(hù)作用,符合中醫(yī)治未病的思想,成為當(dāng)前研究的熱點(diǎn)[2-4]。我們以前的研究證實(shí)[5-7],運(yùn)動預(yù)處理發(fā)揮腦保護(hù)作用與降低炎癥反應(yīng)、抑制谷氨酸興奮性、減少細(xì)胞凋亡等有關(guān)。ATP敏感性鉀(ATP-sensitive potassium,KATP)通道的開放可以誘導(dǎo)腦缺血耐受,其中內(nèi)向整流性鉀離子通道6.2(inwardly rectifying potassium channel,Kir6.2)、磺脲類受體1(sulphonylurea receptor,SUR1)發(fā)揮著重要作用[8]。本研究探討運(yùn)動預(yù)處理的腦保護(hù)作用與mito-KATP通道的關(guān)系。
健康成年雄性Sprague-Dawley大鼠,鼠齡8~10周,體質(zhì)量220~240 g,購于北京維通利華實(shí)驗動物有限公司,許可證號SYXK(京)2010007。清潔級飼養(yǎng),溫度(21±2)℃,濕度(60±5)%,通氣良好,晝夜節(jié)律,自由食水。
采用ZH-PT型電動跑臺(徐州利華電子科技發(fā)展有限公司)篩選出適合跑臺訓(xùn)練的大鼠36只。將36只大鼠采用隨機(jī)數(shù)字表法分為假手術(shù)組、模型組和運(yùn)動預(yù)處理組,每組12只。
動物飼養(yǎng)及實(shí)驗過程均嚴(yán)格遵循實(shí)驗動物管理和保護(hù)相關(guān)規(guī)定。
RM2235型石蠟切片機(jī)、HI1220型烤片機(jī):德國LEICA公司。DHG-9030A型電熱鼓風(fēng)干燥箱:上海索域試驗設(shè)備有限公司。TUNEL染色試劑盒、Kir6.2多克隆抗體、SUR1多克隆抗體:北京中杉金橋生物技術(shù)公司。
模型組和運(yùn)動預(yù)處理組大鼠10%水合氯醛3 ml/kg腹腔注射麻醉。頸部正中偏左位置切口,暴露大鼠左側(cè)頸總動脈、頸外動脈和頸內(nèi)動脈,結(jié)扎頸外動脈及頸總動脈近心端,頸總動脈主干扎活結(jié),分叉處用動脈夾夾閉,在距頸總動脈活結(jié)約1.5 mm處剪口,將尼龍單纖絲線(直徑0.24~0.26 mm、長5 cm,頭端過蠟)緩慢經(jīng)頸總動脈主干插入頸內(nèi)動脈,深約(18±0.5)mm時有輕微阻力。120 min后,拔出線栓至頸總動脈主干分叉處實(shí)現(xiàn)再灌注,手法要輕柔緩慢。假手術(shù)組同法手術(shù),線栓插入深度10 mm。
參照Longa評分[9],于大鼠缺血再灌注2 h后對大鼠進(jìn)行神經(jīng)功能缺損評分。評分1、2、3分的大鼠納入實(shí)驗,剔除的大鼠隨機(jī)造模補(bǔ)充。
參照朱路文等[1]制定的運(yùn)動預(yù)訓(xùn)練方案,于造模前采用ZH-PT型電動跑臺,速度15 m/min,坡度0°,每天30 min,每周6 d,共3周。
1.5.1 神經(jīng)功能缺損評分
再灌注2 h、12 h、24 h后,參照Longa評分,由同一名對實(shí)驗分組不知情的研究人員對各組大鼠進(jìn)行評分。
1.5.2 Western blotting
再灌注24 h后,各組取6只大鼠,快速斷頭取腦,切取缺血側(cè)皮質(zhì)組織置-80℃冰箱保存。取腦組織樣品,提取總蛋白40μg,10%SDS-PAGE電泳,轉(zhuǎn)到PVDF膜上。轉(zhuǎn)膜后,PVDF膜TBST液搖床上洗滌,封閉液搖床封閉1~2 h。按說明書加Kir6.2一抗(1∶500)、SUR1一抗(1∶500)及羊抗兔IgG-HRP二抗(1∶5000),凝膠成像系統(tǒng)拍照。采用Bio-Rad圖像分析軟件計算積分光密度,以小鼠抗β-actin抗體 (1∶1000)為內(nèi)參,計算各蛋白與β-actin積分光密度值的比值。
1.5.3 TUNEL染色
再灌注24 h后,各組6只大鼠心內(nèi)灌注,切取缺血側(cè)皮質(zhì)組織,常規(guī)制備石蠟切片,厚5 μm。二甲苯浸洗,置21~37℃蛋白酶K工作液中15~30 min。加TUNEL反應(yīng)混合液,37℃暗濕盒內(nèi)反應(yīng)1 h,PBS漂洗;加POD反應(yīng)液,37℃暗濕盒內(nèi)反應(yīng)30 min,PBS漂洗;加DAB底物15~25℃下反應(yīng)10 min,PBS溶液漂洗;拍照,蘇木素復(fù)染,自來水沖洗,脫水、透明、封片。每張切片40×10鏡下隨機(jī)采集5個視野,采用Image Pro Plus 6.0計數(shù)凋亡細(xì)胞,取平均值。
采用SPSS 22.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析。所有數(shù)據(jù)以(±s)表示。數(shù)據(jù)符合正態(tài)分布、方差齊,采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t檢驗。顯著性水平α=0.05。
各時間點(diǎn),假手術(shù)組未出現(xiàn)神經(jīng)功能缺損,Longa評分為0;模型組和運(yùn)動預(yù)處理組出現(xiàn)不同程度神經(jīng)功能缺損;再灌注24 h后,與模型組相比,運(yùn)動預(yù)處理組Longa評分降低(P<0.05)。見表1。
表1 各組再灌注后不同時間Longa評分比較
與假手術(shù)組比較,模型組Kir6.2、SUR1蛋白水平上升(P<0.05)。與模型組比較,運(yùn)動預(yù)處理組Kir6.2、SUR1蛋白水平下降(P<0.05)。見表2、圖1。
假手術(shù)組見極少數(shù)TUNEL陽性細(xì)胞。與假手術(shù)組比較,模型組TUNEL陽性細(xì)胞增多(P<0.05)。與模型組比較,運(yùn)動預(yù)處理組TUNEL陽性細(xì)胞減少(P<0.05)。見表3、圖2。
圖1 各組缺血區(qū)皮質(zhì)Kir6.2、SUR1蛋白的表達(dá)
表2 各組缺血區(qū)皮質(zhì)Kir6.2、SUR1蛋白表達(dá)比較(/β-actin)
表3 各組缺血區(qū)皮質(zhì)TUNEL陽性細(xì)胞數(shù)比較
圖2 各組大鼠TUNEL陽性細(xì)胞表達(dá)(bar=100 μm)
目前缺血性腦卒中的治療主要應(yīng)用溶栓、血運(yùn)重建等方法,缺血腦組織雖然得到血液再灌注,但損傷程度卻進(jìn)一步加重[10]。
中醫(yī)康復(fù)強(qiáng)調(diào)早期診斷和早期治療,預(yù)防疾病復(fù)發(fā),減少后遺癥[11]。中醫(yī)“治未病”理論應(yīng)用于腦卒中發(fā)生、發(fā)展的各個環(huán)節(jié),對降低腦卒中的發(fā)生,促進(jìn)患者康復(fù),提高患者生活質(zhì)量,有重要意義[12]。
隨著臨床醫(yī)學(xué)的發(fā)展,缺血前干預(yù)的重要性逐漸被認(rèn)識。Blauenfeldt等[13]認(rèn)為,腦缺血前1周的運(yùn)動訓(xùn)練強(qiáng)度與缺血24 h梗死體積和最終梗死體積減少有關(guān)。常用的缺血前干預(yù)方法有運(yùn)動訓(xùn)練、電針、高壓氧、艾灸等[14]。運(yùn)動預(yù)處理發(fā)揮腦保護(hù)的作用與降低炎癥反應(yīng)、抑制谷氨酸興奮性、減少細(xì)胞凋亡等有關(guān)[15]。本研究選擇電動跑臺模擬運(yùn)動康復(fù),可以量化運(yùn)動時間、速度及強(qiáng)度。缺血前至少2周運(yùn)動訓(xùn)練有腦保護(hù)效應(yīng),可縮小局灶性腦缺血大鼠腦梗死體積[4]。因此,我們制定3周運(yùn)動預(yù)處理方案,證實(shí)運(yùn)動預(yù)處理可降低腦缺血再灌注損傷,促進(jìn)神經(jīng)功能的恢復(fù),與Wang等[16]的結(jié)果基本一致。
KATP通道是偶聯(lián)細(xì)胞的能量代謝和電活動的重要通道,由內(nèi)向整流性鉀離子通道家族與磺脲類受體亞單位組成,在神經(jīng)元缺血缺氧中發(fā)揮保護(hù)作用[17-18]。腦組織缺血缺氧時,胞內(nèi)ATP和葡萄糖降低,能量不足,Na+和Ca2+超載,引起細(xì)胞不可逆損傷[17]。
Kir6.2、SUR1在神經(jīng)血管單元損傷和修復(fù)中發(fā)揮重要作用,可能通過調(diào)控KATP通道影響神經(jīng)血管單元的興奮性和神經(jīng)遞質(zhì)的釋放實(shí)現(xiàn)[19-20]。本研究顯示,腦缺血再灌注后,大鼠腦組織KATP通道開放,Kir6.2、SUR1蛋白水平上調(diào)。缺血前行運(yùn)動預(yù)處理后,大鼠腦組織Kir6.2、SUR1蛋白表達(dá)下調(diào)。
細(xì)胞凋亡是腦缺血再灌注損傷主要形式,是指在一定生理和病理條件下,為維護(hù)內(nèi)外環(huán)境穩(wěn)定,機(jī)體通過調(diào)控多種基因的表達(dá),使細(xì)胞主動死亡[21]。細(xì)胞內(nèi)鈣失穩(wěn)態(tài)、氧自由基生成、炎癥反應(yīng)、能量代謝障礙等能導(dǎo)致細(xì)胞凋亡[22]。腦缺血再灌注發(fā)生后,線粒體損傷后,細(xì)胞色素C被誘導(dǎo)釋放到胞質(zhì)中,打破了ATP與dATP之間的平衡,細(xì)胞色素C結(jié)合凋亡蛋白酶激活因子1,激活caspase-9、caspase-3等,導(dǎo)致細(xì)胞凋亡,這與KATP通道開放相關(guān)[23]。本研究顯示,缺血前運(yùn)動訓(xùn)練可改善細(xì)胞內(nèi)膜mitoKATP通道的通透性,減少細(xì)胞凋亡。
綜上所述,運(yùn)動預(yù)處理可下調(diào)腦缺血再灌注大鼠缺血側(cè)皮質(zhì)Kir6.2、SUR1蛋白表達(dá),改善細(xì)胞內(nèi)膜mitoKATP通道的通透性,降低缺血側(cè)皮質(zhì)的細(xì)胞凋亡。結(jié)合行為學(xué)評價,我們認(rèn)為,運(yùn)動預(yù)處理能通過調(diào)節(jié)Kir6.2、SUR1蛋白表達(dá),從而改善腦缺血后神經(jīng)功能損傷。
本研究僅從Kir6.2、SUR1蛋白的角度研究運(yùn)動預(yù)處理的腦保護(hù)作用。下一步我們將圍繞mitoKATP通道介導(dǎo)的信號通路,深入探討其作用機(jī)制,為缺血性腦卒中運(yùn)動預(yù)處理臨床防治方案的制定,提供良好的理論基礎(chǔ)。
[參考文獻(xiàn)]
[1]陳曉鋒,徐英妹.中醫(yī)治未病理論在腦中風(fēng)預(yù)防中的運(yùn)用初探[J].陜西中醫(yī),2008,29(8):1040-1042.
[2]Zhang F,Wu Y,Jia J.Exercise preconditioning and brain ischemic tolerance[J].Neuroscience,2011,177:170-176.
[3]Jia J,Hu YS,Wu Y,et al.Pre-ischemic treadmill training affects glutamate and gamma aminobutyric acid levels in the striatal dialysate of a rat model of cerebral ischemia[J].Life Sci,2009,84(15-16):505-511.
[4]Liebelt B,Papapetrou P,Ali A,et al.Exercise preconditioning reduces neuronal apoptosis in stroke by up-regulating heat shock protein-70 and extracellular-signal-regulated-kinase1/2[J].Neuroscience,2010,166(4):1091-1100.
[5]朱路文,葉濤,吳孝軍,等.運(yùn)動預(yù)處理對腦缺血再灌注大鼠血清炎癥因子水平的影響[J].中國康復(fù)理論與實(shí)踐,2015,21(1):22-25.
[6]吳孝軍,葉濤,李宏玉,等.運(yùn)動預(yù)處理對腦缺血再灌注大鼠缺血半暗區(qū)細(xì)胞凋亡及相關(guān)蛋白P53表達(dá)的影響[J].中國康復(fù)理論與實(shí)踐,2016,22(10):1117-1120.
[7]Zhu L,Ye T,Tang Q,et al.Exercise preconditioning regulates the Toll-like receptor 4/nuclear factor-κB signaling pathway and reduces cerebral ischemia/reperfusion inflammatory injury:a study in rats[J].J Stroke Cerebrovasc Dis,2016,25(11):2770-2779.
[8]Sun HS,Xu B,Chen W,et al.Neuronal K(ATP)channels mediate hypoxic preconditioning and reduce subsequent neonatal hypoxic-ischemic brain injury[J].Exp Neurol,2015,263:161-171.
[9]Longa EZ,Weinstein PR,Carlson S,et al.Reversible middle cerebral artery occlusion and reperfusion without craniectomy in rats[J].Stroke,1989,20(1):84-91.
[10]Del Zoppo GJ.Stroke and neurovascular protection[J].N Engl J Med,2006,354(6):553-555.
[11]莊微,吳顥昕.《黃帝內(nèi)經(jīng)》“治未病”理論的臨床應(yīng)用概述[J].遼寧中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報,2008,10(11):158-159.
[12]劉萬宏.中醫(yī)治未病思想在中風(fēng)防治中的運(yùn)用[J].河北中醫(yī),2016,38(5):764-768.
[13]Blauenfeldt RA,Hougaard KD,Mouridsen K,et al.High prestroke physical activity is associated with reduced infarct growth in acute ischemic stroke patients treated with intravenous tPA and randomized to remote ischemic preconditioning[J].Cerebrovasc Dis,2017,44(1-2):88-95.
[14]陳立英,王會軍,陶小雪,等.不同預(yù)處理方式對大鼠局灶性腦缺血再灌注損傷的神經(jīng)保護(hù)作用[J].中西醫(yī)結(jié)合心腦血管病雜志,2015,13(3):312-314.
[15]吳孝軍,朱路文,李宏玉,等.運(yùn)動預(yù)處理誘導(dǎo)腦缺血耐受機(jī)制的研究進(jìn)展[J].中國康復(fù)理論與實(shí)踐,2015,21(6):657-661.
[16]Wang X,Zhang M,Yang SD,et al.Pre-ischemic treadmill training alleviates brain damage via GLT-1-mediated signal pathway after ischemic stroke in rats[J].Neuroscience,2014,274:393-402.
[17]Sun HS,Feng ZP.Neuroprotective role of ATP-sensitive potassium channels in cerebral ischemia[J].Acta Pharmacol Sin,2013,34(1):24-32.
[18]Wang L,Zhu QL,Wang GZ,et al.The protective roles of mitochondrial ATP-sensitive potassium channels during hypoxia-ischemia reperfusion in brain[J].Neurosci Lett,2011,491(1):63-67.
[19]Dong YF,Wang LX,Huang X,et al.Kir6.1 knockdown aggravates cerebral ischemia/reperfusion-induced neural injury in mice[J].CNS Neurosci Ther,2013,19(8):617-624.
[20]Zhao K,Wen R,Wang X,et al.EPAC inhibition of SUR1 receptor increases glutamate release and seizure vulnerability[J].J Neurosci,2013,33(20):8861-8865.
[21]Weng X,Wang L,Chen H,et al.Ischemic postconditioning inhibits apoptosis in an in vitro proximal tubular cell model[J].Mol Med Rep,2015,12(1):99-104.
[22]Liu QS,Deng R,Li S,et al.Ellagic acid protects against neuron damage in ischemic stroke through regulating the ratio of Bcl-2/Bax expression[J].Appl Physiol Nutr Metab,2017,42(8):855-860.
[23]Mironova GD,Shigaeva MI,Gritsenko EN,et al.Activity of mitochondrial ATP-dependent potassium channel in animals with different resistance to hypoxia before and after the course of hypoxic training[J].Bull Exp Biol Med,2011,151(1):25-29.