史晴晴,黃寧,郭洋洋
(廊坊市第四人民醫(yī)院,河北 廊坊 065700)
腦血管病已經(jīng)逐漸發(fā)展成為危害人類(lèi)健康的主要疾病之一,其中缺血性腦血管病占80%左右,具有極高的致殘率和致死率[1]。認(rèn)知功能損傷是腦缺血病早期的主要臨床表現(xiàn),進(jìn)一步可能發(fā)展成為認(rèn)知與神經(jīng)功能障礙。Lee等[2]研究發(fā)現(xiàn)慢性腦血流灌注不足是認(rèn)知功能下降的重要觸發(fā)因素。白芍總苷為中藥白芍的主要活性成分之一,具有抑制自身免疫、抗炎、抗氧化等多種活性[3-4]。本課題組既往研究發(fā)現(xiàn),白芍總苷能夠通過(guò)抑制神經(jīng)元凋亡、氧化應(yīng)激損傷、炎癥反應(yīng)對(duì)腦缺血再灌注損傷具有一定的保護(hù)作用,并且對(duì)海馬CA1區(qū)神經(jīng)元具有保護(hù)作用[5-6]。
健康清潔級(jí)SD大鼠(雌雄不限),由河北醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,合格證號(hào):SCXK(冀)2013-1-003,適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
白芍總苷膠囊(寧波立華制藥有限公司,批號(hào):20161124)。HE、TUNEL試劑盒(北京博奧森生物技術(shù)有限公司);Bcl-2、Bax多克隆抗體和ABC-DAB試劑盒(北京博奧森生物技術(shù)有限公司);超氧化物歧化酶(SOD)、過(guò)氧化氫酶(CAT)、谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(GSH-Px)、丙二醛(MDA)試劑盒(安徽欣樂(lè)生物技術(shù)有限公司)。
將100只實(shí)驗(yàn)用大鼠隨機(jī)分為假手術(shù)組、模型對(duì)照組和白芍總苷(50、100、200 mg·kg-1)組,每組20只。參照羅偉等[7]報(bào)道的實(shí)驗(yàn)方法,通過(guò)結(jié)扎雙側(cè)頸總動(dòng)脈制備慢性腦缺血大鼠模型,假手術(shù)組游離頸總動(dòng)脈但不結(jié)扎。術(shù)后第二天,白芍總苷各劑量組分別灌胃給藥,假手術(shù)組和模型對(duì)照組大鼠均同步給予0.9%氯化鈉溶液,每天1次,共28 d。
給藥治療28 d后,每組隨機(jī)選取10只大鼠,行Morris水迷宮實(shí)驗(yàn)(Morris水迷宮視頻跟蹤分析系統(tǒng),成都泰盟科技有限公司)。水迷宮為直徑1.3 m、深0.5 m的圓柱形水桶裝置,置暗室中,設(shè)置水溫為25 ℃恒溫,劃分為I、II、III、IV共4個(gè)象限,將安全平臺(tái)(直徑10 cm,高30 cm)放于第3象限(水面下2 cm),水迷宮上方安置電腦系統(tǒng)相連接的攝像機(jī)以記錄大鼠運(yùn)動(dòng)軌跡。1)定位航行實(shí)驗(yàn):實(shí)驗(yàn)前1天適應(yīng)性訓(xùn)練2 min,實(shí)驗(yàn)歷時(shí)5 d,每天每只大鼠分別從I、II、III、IV象限面向水迷宮池壁放入,記錄大鼠120 s內(nèi)的游泳軌跡和站上平臺(tái)所需的時(shí)間(逃避潛伏期),站上平臺(tái)后停留30 s,若120 s內(nèi)未找到平臺(tái)則逃避潛伏期記為120 s。2)空間探索實(shí)驗(yàn):第6天撤去平臺(tái),大鼠于第II象限面向水迷宮池壁放入,觀察并記錄90 s內(nèi)大鼠穿越原來(lái)平臺(tái)位置次數(shù)。
取每組剩余的10只大鼠,實(shí)驗(yàn)前1天將大鼠置于反應(yīng)箱中適應(yīng)3 min,實(shí)驗(yàn)時(shí)將大鼠放在平臺(tái)上并接通銅柵電源,記錄各組大鼠3 min內(nèi)錯(cuò)誤次數(shù)和受電擊總時(shí)間;第2天,直接將大鼠放于接通銅柵電源的平臺(tái)上,記錄3 min內(nèi)錯(cuò)誤次數(shù)和受電擊總時(shí)間。
每組隨機(jī)取10只大鼠,參照葉志強(qiáng)等[8]報(bào)道的實(shí)驗(yàn)方法:麻醉后斷頭取腦,去除嗅球、小腦和低位腦干,置于4%多聚甲醛溶液中固定72 h,然后行石蠟包埋、切片、展片處理,行常規(guī)HE染色:75%乙醇梯度脫蠟水化、PBS洗滌、蘇木素染色5 min、水洗、0.5%乙醇鹽酸分色、尹紅染色20 s、水洗、75%乙醇梯度脫水、封片,然后通過(guò)倒置光學(xué)顯微鏡觀察大腦海馬CA1區(qū)神經(jīng)元形態(tài)(海馬CA1區(qū)范圍見(jiàn)圖1);在顯微鏡下計(jì)數(shù)海馬CA1區(qū)每個(gè)視野神經(jīng)元數(shù)(神經(jīng)元數(shù)/視野)。行TUNEL染色觀察海馬CA1區(qū)神經(jīng)元凋亡狀況。每只大鼠取5張切片,每張切片隨機(jī)選取互不重疊的5個(gè)視野,并分別計(jì)數(shù)細(xì)胞總數(shù)和凋亡細(xì)胞數(shù),然后按公式(1)計(jì)算凋亡指數(shù)(AI)。
AI(%)=(凋亡細(xì)胞數(shù)/細(xì)胞總數(shù))×100%
(1)
圖1 大鼠大腦海馬組織結(jié)構(gòu)圖
取2.4制備的大鼠腦組織石蠟切片,脫蠟水化處理后,參照試劑盒操作方法步驟,采用ABC-DAB法進(jìn)行染色:75%乙醇梯度脫蠟水化、PBS洗滌、3%過(guò)氧化氫-甲醇溶液孵育25 min、PBS洗滌、山羊血清封閉1.5 h、滴加一抗4 ℃過(guò)夜、PBS洗滌、滴加二抗室溫孵育1.5 h、PBS洗滌、滴加辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的鏈霉卵白素室溫孵育1 h、PBS洗滌、DAB顯色5 min、充分水洗、梯度脫水、封片,然后通過(guò)倒置光學(xué)顯微鏡觀察并照相保存。每只大鼠取5張切片,每張圖片同一部位選取互不重疊的5個(gè)視野,采用Image Pro plus圖像分析系統(tǒng)測(cè)定圖片灰度。
取每組剩余的10只大鼠,實(shí)施麻醉后斷頭取腦并剝?nèi)『qR組織,加入適量冷裂解液進(jìn)行研磨勻漿,離心(3000 r·min-1,10 min)取上清液,按照試劑盒方法測(cè)定海馬組織抗氧化酶(SOD、CAT、GSH-Px)活性和MDA含量。
3.1.1 Morris水迷宮實(shí)驗(yàn) 于給藥治療28 d完成后進(jìn)行定位航行實(shí)驗(yàn),連續(xù)5 d取平均值(第29~33天):模型對(duì)照組大鼠逃避潛伏期較假手術(shù)組顯著增加(P<0.01)、逃避路程顯著增長(zhǎng)(P<0.01);而與模型組比較,經(jīng)100、200 mg·kg-1白芍總苷干預(yù)治療28 d能夠顯著降低腦缺血大鼠逃避潛伏期并縮短逃避路程(P<0.05或P<0.01)。于給藥治療28 d并進(jìn)行定位航行實(shí)驗(yàn)5 d后,進(jìn)行空間探索實(shí)驗(yàn)(第34天):模型對(duì)照組大鼠穿越原平臺(tái)位置次數(shù)較假手術(shù)組顯著增多(P<0.01);而與模型組比較,經(jīng)100、200 mg·kg-1白芍總苷干預(yù)治療28 d能夠顯著降低腦缺血大鼠穿越原平臺(tái)位置次數(shù)(P<0.05或P<0.01)。結(jié)果見(jiàn)表1。
3.1.2 跳臺(tái)實(shí)驗(yàn) 給藥治療28 d完成后,連續(xù)兩天進(jìn)行跳臺(tái)實(shí)驗(yàn)(第29~30天),取跳臺(tái)第二天實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù):模型對(duì)照組大鼠錯(cuò)誤次數(shù)較假手術(shù)組顯著增多(P<0.01),受電擊總時(shí)間顯著延長(zhǎng)(P<0.01);而與模型組比較,經(jīng)100、200 mg·kg-1白芍總苷干預(yù)治療28 d能夠顯著減少腦缺血大鼠錯(cuò)誤次數(shù)并縮短受電擊時(shí)間(P<0.05或P<0.01)。結(jié)果見(jiàn)表2。
圖2顯示,假手術(shù)組海馬CA1區(qū)神經(jīng)元未見(jiàn)異常:層次清晰(3~5層),排列整齊,形態(tài)完整,胞質(zhì)染色均勻,核膜、核仁清晰;模型對(duì)照組海馬CA1區(qū)神經(jīng)元形態(tài)結(jié)構(gòu)呈現(xiàn)明顯異常:層次紊亂,神經(jīng)元數(shù)量減少、排列稀疏、間隙增大,膠質(zhì)細(xì)胞增加,部分神經(jīng)元胞核固縮或溶解,核仁消失等;與模型對(duì)照組比較,白芍總苷各劑量干預(yù)治療組海馬CA1區(qū)神經(jīng)元病變呈不同程度減輕,該藥理學(xué)作用呈現(xiàn)一定的劑量依賴性,以白芍總苷200 mg·kg-1組效果最為顯著。計(jì)數(shù)各組大鼠海馬CA1區(qū)神經(jīng)元數(shù),放大倍數(shù)為400倍(10×40),視野面積0.16 mm2,正常對(duì)照組海馬CA1區(qū)神經(jīng)元數(shù)/視野為(66.7±8.2)個(gè),模型組神經(jīng)元數(shù)/視野為(25.3±4.1)個(gè),較正常對(duì)照組顯著降低(P<0.01),白芍總苷50、100、200 mg·kg-1組神經(jīng)元數(shù)/視野分別為(31.6±4.5)、(40.7±4.9)、(48.6±6.2)個(gè),較模型組顯著升高(P<0.05或P<0.01)。
表1 白芍總苷對(duì)腦缺血大鼠學(xué)習(xí)記憶能力的影響-Morris水迷宮實(shí)驗(yàn)
注:與假手術(shù)組比較,**P<0.01;與模型對(duì)照組比較,△P<0.05,△△P<0.01;下同。
表2 白芍總苷對(duì)腦缺血大鼠學(xué)習(xí)記憶能力的影響-跳臺(tái)實(shí)驗(yàn)
注:A.假手術(shù)組;B.模型對(duì)照組;C.白芍總苷50 mg·kg-1組;D.白芍總苷100 mg·kg-1組;E.白芍總苷200 mg·kg-1組。圖2 各組大腦海馬CA1區(qū)神經(jīng)元形態(tài)(HE,×400)
圖3顯示,假手術(shù)組大鼠海馬CA1區(qū)僅見(jiàn)少量凋亡細(xì)胞(TUNEL染色陽(yáng)性著色:細(xì)胞核黃褐色);模型對(duì)照組海馬CA1區(qū)神經(jīng)元凋亡細(xì)胞數(shù)較假手術(shù)組明顯增多;與模型對(duì)照組比較,白芍總苷各劑量干預(yù)組海馬CA1區(qū)凋亡細(xì)胞數(shù)呈不同程度減少,以白芍總苷200 mg·kg-1組最為顯著。計(jì)算并比較各組大鼠海馬CA1區(qū)神經(jīng)元凋亡指數(shù)(AI):假手術(shù)組AI為(2.7±1.1)%,模型對(duì)照組AI為(64.9±8.6)%,白芍總苷(50、100、200 mg·kg-1)組AI分別為(59.3±10.4)%、(41.1±6.8)%、(15.6±3.5)%;模型對(duì)照組AI較假手術(shù)組顯著升高(P<0.01),經(jīng)100、200 mg·kg-1白芍總苷干預(yù)治療能夠顯著降低腦缺血大鼠海馬CA1區(qū)神經(jīng)元AI(P<0.01)。
注:A.假手術(shù)組;B.模型對(duì)照組;C.白芍總苷50 mg·kg-1組;D.白芍總苷100 mg·kg-1組;E.白芍總苷200 mg·kg-1組。圖3 各組大鼠海馬CA1區(qū)神經(jīng)元凋亡狀況(TUNEL,×400)
觀察IHC染色切片發(fā)現(xiàn),Bax和Bcl-2主要于細(xì)胞質(zhì)中表達(dá);與假手術(shù)組比較,模型組大鼠海馬Bcl-2表達(dá)明顯下調(diào)、灰度顯著降低(P<0.01),Bax表達(dá)顯著上調(diào)、灰度顯著升高(P<0.01);而與模型組比較,白芍總苷各劑量干預(yù)組海馬Bcl-2表達(dá)上調(diào)、Bax表達(dá)下調(diào),上述作用呈一定劑量依賴性,以白芍總苷200 mg·kg-1組效果最為顯著;白芍總苷(100、200 mg·kg-1)組Bcl-2表達(dá)灰度較模型對(duì)照組均顯著升高(P<0.05或P<0.01),Bax表達(dá)灰度較模型對(duì)照組均顯著降低(P<0.01),Bcl-2/Bax值顯著升高(P<0.01)。結(jié)果見(jiàn)圖4、5和表3。
模型對(duì)照組抗氧化酶活性較假手術(shù)組顯著降低且MDA含量顯著升高(P<0.01);經(jīng)100、200 mg·kg-1白芍總苷干預(yù)治療能夠顯著提高抗氧化酶(SOD、CAT、GSH-Px)活性并顯著降低MDA含量(P<0.05或P<0.01)。結(jié)果見(jiàn)表4。
注:A.假手術(shù)組;B.模型對(duì)照組;C.白芍總苷50 mg·kg-1組;D.白芍總苷100 mg·kg-1組;E.白芍總苷200 mg·kg-1組。圖4 各組大鼠海馬Bcl-2表達(dá)(IHC,×400)
注:A.假手術(shù)組;B.模型對(duì)照組;C.白芍總苷50 mg·kg-1組;D.白芍總苷100 mg·kg-1組;E.白芍總苷200 mg·kg-1組。圖5 各組大鼠海馬Bax表達(dá)(IHC,×400)
組別動(dòng)物/只Bcl?2BaxBcl?2/Bax假手術(shù)組10137 2±54 986 9±25 11 6±1 1模型對(duì)照組1049 6±21 5??207 5±56 8??0 3±0 2??白芍總苷50mg·kg-1組治療組1068 4±29 0183 4±47 60 5±0 2白芍總苷100mg·kg-1組1089 5±37 2△141 3±42 8△0 8±0 5△白芍總苷200mg·kg-1組10112 6±46 7△△124 8±35 2△△1 0±0 6△△
表4 各組大鼠腦組織抗氧化酶活性和MDA含量 /U·mg-1
慢性腦缺血引發(fā)的能量代謝障礙、蛋白合成異常、神經(jīng)元缺失等是導(dǎo)致血管性癡呆(Vascular Dementia,VD)、皮質(zhì)下動(dòng)脈硬化性腦病(Binswanger)等多種腦血管疾病的病理通路[9],甚至可能導(dǎo)致認(rèn)知功能障礙[10],臨床表現(xiàn)主要為漸進(jìn)性癡呆、學(xué)習(xí)能力和記憶能力顯著下降,目前臨床上尚無(wú)針對(duì)性的治療藥物,主要采取擴(kuò)張血管、抗凝溶栓、改善腦循環(huán)等治療方案[11]。
海馬結(jié)構(gòu)不僅與多種神經(jīng)性和精神性疾病相關(guān),而且與空間學(xué)習(xí)記憶密切相關(guān),海馬對(duì)缺血缺氧十分敏感,尤其CA1區(qū)椎體系細(xì)胞極易受缺血缺氧損傷,宿寶貴等[12]和李長(zhǎng)天等[13]研究報(bào)道腦部血流低灌注引起海馬CA1區(qū)神經(jīng)元損傷可能是導(dǎo)致學(xué)習(xí)記憶能力障礙的病理基礎(chǔ)。Burda等[14]研究發(fā)現(xiàn)腦缺血所致神經(jīng)功能損傷與海馬神經(jīng)元繼發(fā)性凋亡有關(guān),及時(shí)恢復(fù)腦血流供應(yīng)挽救缺血半影區(qū)神經(jīng)元,對(duì)缺血性腦損傷具有積極的保護(hù)作用。Bcl-2基因家族是一系列原癌基因蛋白,在細(xì)胞凋亡過(guò)程中發(fā)揮著重要的調(diào)控作用,其中Bcl-2和Bax具有較高的同源性,但功能相反[15]。Bcl-2能夠通過(guò)抑制線粒體細(xì)胞色素C釋放,抑制半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶(caspase)激活,表現(xiàn)出抑制細(xì)胞凋亡的作用;Bax能夠促進(jìn)細(xì)胞色素C釋放,激活caspase-9,并且能夠與Bcl-2形成二聚體而抑制Bcl-2活性,因此Bax具有促凋亡的作用,而B(niǎo)ax/bcl-2比值更加能夠體現(xiàn)Bcl-2基因家族對(duì)細(xì)胞凋亡的調(diào)控作用[16]。正常生理狀態(tài)下,體內(nèi)生產(chǎn)的氧自由基(ROS)在SOD和CAT、GSH-Px的催化作用下最終被還原為對(duì)人體無(wú)害的H2O和O2[17];不飽和脂肪酸是細(xì)胞膜的主要組成之一,極易被ROS攻擊而氧化最終生成MDA,因此MDA的含量水平能夠間接反應(yīng)機(jī)體氧化應(yīng)激損傷程度[18],此外氧化應(yīng)激損傷是誘發(fā)細(xì)胞凋亡的重要因素[19]。
張華龍等[4,20]和鄭亞萍等[21]研究發(fā)現(xiàn)白芍總苷能夠通過(guò)改善抗氧化酶活性而抑制心肌缺血再灌注后氧化應(yīng)激損傷、通過(guò)調(diào)節(jié)凋亡相關(guān)蛋白表達(dá)而抑制心肌缺血再灌注后細(xì)胞凋亡,從而表現(xiàn)出對(duì)心肌缺血再灌注損傷的保護(hù)作用;此外,劉瑋等[22]和吳華璞等[23]研究發(fā)現(xiàn)白芍總苷能夠通過(guò)抑制氧化應(yīng)激損傷對(duì)大鼠局灶性腦缺血再灌注損傷以及全腦缺血再灌注損傷均具有一定的保護(hù)作用。本研究中,Morris水迷宮實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,100~200 mg·kg-1白芍總苷能夠顯著降低腦缺血大鼠逃避潛伏期并縮短逃避路程,顯著降低腦缺血大鼠穿越原平臺(tái)位置次數(shù);跳臺(tái)實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,100~200 mg·kg-1白芍總苷治療能夠顯著減少腦缺血大鼠錯(cuò)誤次數(shù)并縮短受電擊時(shí)間。經(jīng)白芍總苷治療能夠明顯上調(diào)海馬Bcl-2表達(dá)、下調(diào)Bax表達(dá)、提高Bcl-2/Bax值,改善抗氧化酶(SOD、CAT、GSH-Px)活性并降低MDA含量;提示白芍總苷對(duì)腦缺血后學(xué)習(xí)記憶能力有一定的改善作用,可能與白芍總苷調(diào)控海馬凋亡相關(guān)基因(Bcl-2、Bax)表達(dá)、降低氧化應(yīng)激損傷、抑制海馬神經(jīng)元凋亡有關(guān)。
[1] Liu L,Wang D,Wong K S,et al.Stroke and stroke care in China:huge burden,significant workload,and a national priority [J].Stroke,2011(42):3651-3656.
[2] Lee J H,Park S Y,Shin Y W,et al.Neuroprotection by cilostazol,a phosphordiesterase type3 inhibitor,against apoptotic white matter changes in rat after chronic cerebral hypoperfusion [J].Brain Res,2006,1082(1):182-191.
[3] 李艷梅.白芍總苷佐治系統(tǒng)性紅斑狼瘡的臨床效果觀察[J].臨床合理用藥,2013,8(6):68-69
[4] 張華龍,張友良,魏慶民.白芍總苷對(duì)大鼠心肌缺血再灌注損傷后心肌細(xì)胞凋亡的影響[J].中藥藥理與臨床,2015,31(4):79-83.
[5] 史晴晴,杜歡,于紅梅,等.白芍總苷對(duì)全腦缺血再灌注損傷保護(hù)作用的研究[J].中國(guó)中醫(yī)急癥,2017,26(7):1172-1174.
[6] 史晴晴,于紅梅.白芍總苷對(duì)腦缺血再灌注后細(xì)胞凋亡抑制作用的研究[J].中國(guó)中醫(yī)急癥,2017,26(6):973-975.
[7] 羅偉,壯榮,吳昊,等.阿司匹林對(duì)全腦缺血大鼠記憶功能的影響[J].中國(guó)行為醫(yī)學(xué)科學(xué),2004,13(2):142-143.
[8] 葉志強(qiáng),閆樺.熊果酸對(duì)大鼠永久性局灶性腦缺血損傷的保護(hù)作用及機(jī)制研究[J].中華中醫(yī)藥學(xué)刊,2015,33(10):2484-2486.
[9] 陳濤,章軍建,余芬,等.促紅細(xì)胞生成素對(duì)慢性腦缺血大鼠空間學(xué)習(xí)記憶能力的影響[J].武漢大學(xué)學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版,2006,27(2):225-228.
[10] 薛慎伍,徐玲玲,張兆巖,等.尼麥角林對(duì)慢性腦缺血鼠腦源性神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子、神經(jīng)生長(zhǎng)因子陽(yáng)性表達(dá)的影響[J].中華保健醫(yī)學(xué)雜志,2008,10(4):265-267.
[11] 湯偉,彭康,朱傳武,等.烏龍丹對(duì)慢性腦缺血大鼠學(xué)習(xí)記憶功能的影響[J].南方醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2009,29(12):2421-2424.
[12] 宿寶貴,許鹿希.大鼠海馬結(jié)構(gòu)在學(xué)習(xí)記憶活動(dòng)時(shí)的細(xì)胞形態(tài)學(xué)可塑性研究[J].解剖學(xué)雜志,1999,22(2):141-145.
[13] 李長(zhǎng)天,吳國(guó)泰,王雅莉,等.葛根素對(duì)去卵巢大鼠學(xué)習(xí)記憶能力和海馬結(jié)構(gòu)的保護(hù)作用[J].中藥藥理與臨床,2012,28(5):36-38.
[14] Burda J,Matiasova M,Gottlieb M.Evidence for a role of second pathophysiological stress in prevention of delayed neuronal death in the hippocampal CA1 region[J].Neurochem Res,2005,30(11):1397-1405.
[15] Saeedi Borujeni M J,Hami J,Haghir H,et al.Evaluation of Bax and Bcl-2 Proteins Expression in the Rat Hippocampus due to Childhood Febrile Seizure[J].Iran J Child Neurol,2016,10(1):53-60.
[16] Renault T T,Dejean L M,Manon S,et al.A brewing understanding of the regulation of Bax function by Bcl-xL and Bcl-2[J].Mech Ageing Dev,2016,161(PtB):201-210.
[17] Lartigue A,Burlat B,Coutard B,et al.The Megavirus chilensis Cu,Zn-superoxide dismutase:the first viral structure of a typical cellular copper chaperone-independent hyperstable dimeric enzyme[J].J Virol,2015,89(1):824-832.
[18] 張曉雪,孫慧君,李士軍,等.穿山龍多糖影響NADPH氧化酶/ROS信號(hào)通路抗H2O2誘導(dǎo)的HUVECs細(xì)胞損傷作用研究[J].大連醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2017,39(3):214-219.
[19] 廖永暉,湯雨,千年松,等.氧化應(yīng)激與細(xì)胞凋亡[J].新鄉(xiāng)醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2011,28(1):110-113.
[20] 張華龍,張友良,魏慶民.白芍總苷對(duì)大鼠心肌缺血再灌注損傷保護(hù)作用及其機(jī)制研究[J].中藥藥理與臨床,2015,31(4):117-120.
[21] 鄭亞萍,劉春杰.白芍總苷對(duì)心肌缺血再灌注大鼠心肌細(xì)胞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激及凋亡的影響[J].中國(guó)實(shí)驗(yàn)方劑學(xué)雜志,2016,22(17):108-112.
[22] 劉瑋,吳華璞,祝曉光,等.白芍總苷對(duì)全腦缺血再灌損傷的保護(hù)作用[J].中國(guó)藥理學(xué)通報(bào),2004,20(2):211-214.
[23] 吳華璞,祝曉光.白芍總昔對(duì)大鼠局灶性腦缺血的保護(hù)作用[J].中國(guó)藥理學(xué)通報(bào),2001,17(2):223-225.