李建武, 李灼非,戴 芳Δ
1.北京大學(xué)深圳醫(yī)院 輸血科(深圳 518036);2.北京大學(xué)深圳醫(yī)院 胃腸外科(深圳 518036)
輸血是手術(shù)患者重要的治療手段之一,同種異體輸血是臨床上最常用的方式,但異體輸血可能導(dǎo)致溶血、過敏和疾病傳播等不良反應(yīng),臨床報道一直較為謹(jǐn)慎。隨著先進(jìn)醫(yī)療技術(shù)的發(fā)展,自體輸血已經(jīng)發(fā)展成為一項(xiàng)重要的血液保護(hù)措施,其能避免輸錯血型導(dǎo)致的溶血和異體輸血引起的疾病傳播等,具有異體輸血無法比擬的優(yōu)點(diǎn)[1]。自然殺傷細(xì)胞(natural killer cell,NK)是淋巴細(xì)胞譜系中的一類大顆粒淋巴細(xì)胞,其不同于T、B淋巴細(xì)胞,無需抗原預(yù)先致敏即可發(fā)揮殺傷作用,是天然免疫系統(tǒng)的主要效應(yīng)細(xì)胞,其能通過早期分泌多種細(xì)胞因子和趨化因子來調(diào)節(jié)獲得性免疫,是機(jī)體抵御感染的第一道防線,也是連接天然免疫與獲得性免疫的橋梁[2]。本研究以圍手術(shù)期胃癌患者為研究對象,觀察異體NK細(xì)胞與預(yù)存式自體輸血NK細(xì)胞殺傷功能的不同,探討對患者細(xì)胞免疫功能的影響,分析兩種方法的聯(lián)合治療對腫瘤患者免疫功能的調(diào)控活性,為腫瘤患者術(shù)后采用該治療方法提供理論依據(jù)。
選取2013年4月至2015年4月于北京大學(xué)深圳醫(yī)院進(jìn)行治療的胃癌患者為研究對象。納入標(biāo)準(zhǔn): 1)符合西醫(yī)診斷[3];2)無內(nèi)分泌及免疫性疾病,Hb>120 g/L,Hct> 0.35,無放療、化療和激素治療史。排除標(biāo)準(zhǔn): 1)失血量>600 mL;2)手術(shù)時間>4 h;3)應(yīng)用血管活性藥物后持續(xù)時間>10 min,術(shù)中血壓超過基礎(chǔ)值40%。共納入符合標(biāo)準(zhǔn)的患者120例,其中男72例,女48例;年齡18~50歲,體質(zhì)量46~85 kg。按照隨機(jī)數(shù)字表法將120例患者分為對照組和觀察組,各60例。對照組采用異體輸血,觀察組采用預(yù)存式自體輸血聯(lián)合同種異體NK細(xì)胞輸注。本研究經(jīng)醫(yī)院倫理委員會批準(zhǔn),患者在術(shù)前均簽署知情同意書,
觀察組:經(jīng)患者同意并簽訂自體輸血同意書后,于手術(shù)前1周內(nèi)釆血400 mL,釆集后在血袋上標(biāo)記清楚并置血庫專用冰箱內(nèi)保存,在手術(shù)中止血完畢后用以回輸;同種異體NK細(xì)胞,委托深圳市北科生物公司(ISO9001質(zhì)量管理體系認(rèn)證;AABB認(rèn)證)提取、純化、培養(yǎng)、檢測后100 mL(106/mL細(xì)胞)輸注。對照組:采集親屬(子女、兄弟、姐妹)外周血,手術(shù)中止血完畢后回輸;手術(shù)前配濾白懸浮紅細(xì)胞400 mL,手術(shù)完畢后輸入。
1.3.1 體液免疫 檢測治療前后血清免疫球蛋白IgG、IgA、IgM水平采用速率散射比濁法,使用邁瑞生物醫(yī)療電子股份有限公司生產(chǎn)的BS-120全自動生化分析儀測定;補(bǔ)體C3、C4水平采用單向免疫擴(kuò)散法測定,使用北京生物制品研究所生產(chǎn)的標(biāo)準(zhǔn)血清和上海翊圣生物科技有限公司生產(chǎn)的(貨號:10208ES60)瓊脂糖凝膠。
1.3.2 T細(xì)胞亞群(CD3+、CD4+、CD8+及CD4+/CD8+) 治療前后采用貝克曼庫爾特商貿(mào)(中國)有限公司CytoFLEX流式細(xì)胞儀法檢測T細(xì)胞亞群,各檢測1次。
1.3.3 酶聯(lián)免疫吸附劑試劑盒測定 酶聯(lián)免疫吸附劑試劑盒由深圳欣博生物科技有限公司提供,檢測治療前后血清白細(xì)胞介素-10(interleukin-10,IL-10)、白細(xì)胞介素-2(interleukin-2,IL-2)、腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)水平。
治療后觀察組和對照組IgG、IgA、IgM、C3及C4異常例數(shù)較治療前都有減少趨勢,觀察組比對照組減少趨勢更明顯,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);治療后兩組血清C3和C4水平升高,IgG、IgA、IgM水平下降,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(表1~2)。
表1 兩組治療前后IgG、IgA、IgM、C3及C4檢測情況比較(例,n=60)
注:與治療前比較,*P<0. 05;與對照組比較,#P<0.05
表2 兩組治療前后IgG、IgA、IgM、C3及C4水平比較
注:與治療前比較,*P<0.05;與對照組比較,#P<0.05
觀察組治療后CD3+、CD4+、CD8+及CD4+/CD8+細(xì)胞異常例數(shù)均較治療前明顯減少,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);對照組治療后CD3+、CD4+、CD8+及CD4+/CD8+細(xì)胞異常例數(shù)較治療前明顯減少,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(表3)。治療后兩組CD8+細(xì)胞水平均下降,CD3+、CD4+及CD4+/CD8+細(xì)胞水平均升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(表4)。
表3 兩組治療前后CD3+、CD4+、CD8+及CD4+/CD8+檢測情況比較(例,n=60)
注:與治療前比較,*P<0.05;與對照組比較,#P<0.05
表4 兩組治療前后CD3+、CD4+、CD8+及CD4+/CD8+水平比較
注:與治療前比較,*P<0. 05;與對照組比較,#P<0. 05
兩組治療后血清TNF-α下降,IL-2、IL-10水平升高,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);觀察組治療后TNF-α水平低于對照組,IL-2、IL-10水平高于對照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(表5)。
組別時間IL-2/(μg/L)IL-10/(pg/mL)TNF-α/(μg/L)對照組治療前3.37±0.6432.52±7.782.24±0.38治療后4.23±0.72*64.49±9.81*1.58±0.26*觀察組治療前3.32±0.6733.57±7.862.21±0.40治療后4.85±0.75*#75.51±10.29*#1.20±0.27*#
注:與治療前比較,*P<0.05,與對照組比較,#P<0.05
隨著社會進(jìn)入老齡化階段及血液需求量日益增加,自體輸血已成為一項(xiàng)重要的血液保護(hù)措施,預(yù)存式自體輸血是在術(shù)前幾天或幾周前釆集自身的全血或者有效的血液,將成分保存到適當(dāng)?shù)沫h(huán)境下,當(dāng)患者需要輸血時再將保存的自體血進(jìn)行回輸以發(fā)揮治療作用[4-5]。
NK細(xì)胞無需抗原預(yù)先致敏,是天然免疫系統(tǒng)的主要效應(yīng)細(xì)胞,可發(fā)揮殺傷作用,是機(jī)體抵御感染的第一道防線,在機(jī)體免疫調(diào)節(jié)、造血調(diào)控、抗腫瘤和抗感染等方面發(fā)揮著重要作用,其又能分泌多種細(xì)胞因子和趨化因子來調(diào)節(jié)獲得性免疫[6-7]。機(jī)體抗腫瘤免疫中細(xì)胞免疫是關(guān)鍵,細(xì)胞的數(shù)量及質(zhì)量是宿主對腫瘤細(xì)胞免疫監(jiān)控異常重要的指標(biāo)[8]。本研究在前期研究基礎(chǔ)上,觀察預(yù)存式自體輸血和增強(qiáng)其對同種異體NK細(xì)胞殺傷“自亡和它殺”相結(jié)合的方法。通過對患者治療前后細(xì)胞免疫功能檢測發(fā)現(xiàn),兩種方法聯(lián)合治療對腫瘤免疫功能具有調(diào)控活性,為腫瘤患者術(shù)后采用該方法治療提供了理論依據(jù),對腫瘤患者術(shù)后免疫調(diào)控具有重要意義。
免疫細(xì)胞的數(shù)量及質(zhì)量是宿主對腫瘤細(xì)胞免疫監(jiān)控異常重要的指標(biāo),在機(jī)體抗腫瘤免疫中細(xì)胞免疫是關(guān)鍵,手術(shù)抑制了機(jī)體免疫功能,腫瘤患者免疫狀態(tài)低下,加之可能導(dǎo)致術(shù)后感染和腫瘤擴(kuò)散,易造成多器官功能衰竭[9-11]。在免疫調(diào)節(jié)方面本研究結(jié)果顯示,兩組血清C3和C4水平升高,IgG、IgA、IgM水平下降;觀察組IgG、IgA、IgM、C3及C4異常例數(shù)少于對照組;觀察組C3和C4高于對照組,IgG水平低于對照組;觀察組CD8+低于對照組,CD3+,CD4+及CD4+/CD8+水平高于對照組;兩組TNF-α下降,觀察組低于對照組;觀察組CD3+、CD4+、CD8+及CD4+/CD8+異常例數(shù)均少于對照組;治療后兩組血清IL-2、IL-10水平升高,觀察組高于對照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。
血液中血紅細(xì)胞的ATP及2.3-DPG含量均高于庫血,有較好的攜氧功能,自體輸血已經(jīng)發(fā)展成為一項(xiàng)重要的血液保護(hù)措施,其能避免異體輸血引起的艾滋病、肝炎的傳播;輸錯血型導(dǎo)致的溶血危險[12-14];避免操作過程中配型及疾病檢驗(yàn)出現(xiàn)的失誤,同時可避免異體輸血所致高鉀、低鉀血癥及代謝性酸中毒[15-16]。NK細(xì)胞是天然免疫系統(tǒng)的主要效應(yīng)細(xì)胞,即可發(fā)揮殺傷作用,無需抗原預(yù)先致敏,能通過早期分泌多種細(xì)胞因子和趨化因子來調(diào)節(jié)獲得性免疫,是機(jī)體抵御感染的第一道防線,同時也是連接天然免疫與獲得性免疫的橋梁,在機(jī)體造血調(diào)控、免疫調(diào)節(jié)、抗腫瘤和抗感染等方面發(fā)揮著重要作用。在自體輸血的同時聯(lián)合輸注NK細(xì)胞可增強(qiáng)患者的免疫力,利于疾病的康復(fù),抵抗術(shù)中、術(shù)后可能出現(xiàn)的感染風(fēng)險[17]。
綜上所述,預(yù)存式自體輸血聯(lián)合同種異體NK細(xì)胞輸注能調(diào)節(jié)腫瘤手術(shù)患者體液免疫,還能調(diào)節(jié)炎性細(xì)胞因子水平,促進(jìn)其平衡,調(diào)節(jié)T細(xì)胞亞群,有利于疾病的康復(fù)。
[1]石艷芬, 陳梅英, 蘇文芳. 腫瘤患者外周血T淋巴細(xì)胞亞群和自然殺傷細(xì)胞數(shù)目的變化及其臨床意義[J]. 檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)與臨床, 2012, 9(22): 2888-2889.
[2]耿長輝, 王錫山. 圍手術(shù)期輸血對惡性腫瘤患者的影響[J]. 國際外科學(xué)雜志, 2010, 37(10): 703-705.
[3]Elkord E, Alcantar-Orozco E M, Dovedi S J,etal. T regulatory cells in cancer: recent advances and therapeutic potential[J]. Expert Opin Biol Ther, 2010, 10(11): 1573-1586.
[4]Kalinski P, Edington H, Zeh H J,etal. Dendritic cells in cancer immunotherapy: vaccines or autologous transplants[J]. Immunol Res, 2011, 50(2/3): 235-247.
[5]馮利得. 外周血T細(xì)胞亞群檢測在惡性腫瘤中的價值[J]. 當(dāng)代醫(yī)學(xué), 2012, 18(3): 111-113.
[6]Bamett C C Jr, Beck A W, Holloway S E,etal. Intravenous delivery of the plasma fraction of stored packederythrocytes promotes pancreatic cancer growth in immunocompetent mice[J]. Cancer, 2010, 116(16): 3862-3874.
[7]屈常偉,駱喜寶,劉志貴, 等.預(yù)存式自體輸血對結(jié)直腸癌患者圍術(shù)期細(xì)胞免疫功能的影響[J].實(shí)用醫(yī)學(xué)雜志,2013,29(18):2986-2988.
[8]Singbartl G. Preoperative autologous blood donation-part I. Only two clinical parameters determine efficacy of the autologous predeposit.[J]. Minerva Anestesiologica, 2007(3): 143-151.
[9]Frietsch T, Fessler H, Kirschfink M,etal. Immune response to autologous transfusion in healthy volunteers: WB versus packed RBCs and FFP[J]. Transfusion, 2001, 41(4): 470-476.
[10] 駱喜寶, 屈常偉, 劉志貴, 等. 控制性降壓聯(lián)合血液稀釋及回收式自體輸血在神經(jīng)外科手術(shù)中的應(yīng)用[J]. 廣東醫(yī)學(xué), 2013, 34(17): 2672-2674.
[11] Samborska-Sablik A, Sablik Z, Gaszyński W,etal. Inflammatory cytokines and long-term prognosis after cardiac arrest[J]. Anestezjol Intens Ter, 2010, 42(2): 75-79.
[12] Damgaard S, Nielsen C H, Andersen L W,etal. Cell saver for on-pump coronary operations reduces systemic inflammatory markers: a randomized trial[J]. Ann Thorac Surg, 2010, 89(5): 1511-1517.
[13] Yanaba K, Yoshizaki A, Asano Y,etal. IL-10-Producing Regulatory B10 Cells Inhibit Intestinal Injury in a Mouse Model[J]. Am J Pathol,2011, 178(2): 735-743.
[14] 曹銘輝, 何慧燕, 紀(jì)鳳濤. 術(shù)中自體血回輸對脊柱手術(shù)炎性因子的影響[J]. 中華醫(yī)院感染學(xué), 2011, 12(17): 3571-3572.
[15] Bryceson Y T, Ljunggren H G. Natural killer cells: biology, physiology and medicine--part 1[J]. J Innate Immun, 2011, 3(3): 213-215.
[16] Campbell K S, Hasegawa J. Natural killer cell biology: an update and future directions[J]. J Allergy Clin Immunol, 2013, 132(3): 536-544.
[17] Moretta L, Locatelli F, Pende D,etal. Killer Ig-like receptor-mediated control of natural killer cell alloreactivity in haploidentical hematopoietic stem cell transplantation[J]. Blood, 2011, 117(3): 764-771.