• <tr id="yyy80"></tr>
  • <sup id="yyy80"></sup>
  • <tfoot id="yyy80"><noscript id="yyy80"></noscript></tfoot>
  • 99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

    微生物葡萄糖氧化酶的研究進展

    2018-04-23 07:25:53張慶芳遲乃玉
    中國釀造 2018年3期
    關(guān)鍵詞:葡萄糖氧化酶黑曲霉青霉

    李 蓉,張慶芳,遲乃玉*

    (1.大連大學 生命科學與技術(shù)學院,遼寧 大連 116622;2.遼寧省海洋微生物工程技術(shù)研究中心,遼寧 大連 116622)

    葡萄糖氧化酶(glucose oxidase,GOD)EC 1.1.3.4是一類含有黃素腺嘌呤二核苷酸(flavine adenine dinucleotide,F(xiàn)AD)的二聚體蛋白酶,能夠以分子氧為電子受體,特異性催化β-D-葡萄糖轉(zhuǎn)化為葡萄糖酸,并產(chǎn)生H2O2,具有廣泛的應用價值[1]。GOD作為制造葡萄糖檢測傳感器的重要酶制劑[2],在醫(yī)療領(lǐng)域和發(fā)酵工業(yè)應用較多。GOD作為食品添加劑,能夠抑菌、延長商品貨架期、防止食物褐變以及用于生產(chǎn)低酒精度紅酒[3]。此外,GOD還可用于生產(chǎn)燃料電池和飼料添加劑,在能源領(lǐng)域和養(yǎng)殖業(yè)中有潛在應用價值[4-5]。GOD廣泛存在于微生物及昆蟲體內(nèi),前者因繁殖快、操作簡單、成本低等優(yōu)點,已成為GOD資源開發(fā)的主要來源[6-7]。本文介紹了GOD的微生物來源、分離純化、發(fā)酵、克隆表達、應用方面的研究進展,并對研究前景進行了展望,旨在深入了解GOD,為其理論研究及生產(chǎn)應用提供參考。

    1 GOD的微生物來源[8-10]

    自黑曲霉(Aspergillusniger)中的GOD首次被發(fā)現(xiàn)以來,研究者在多種微生物中檢測到GOD,其中曲霉屬(Aspergillus sp.)、青霉屬(Penicillium sp.)為GOD的主要來源。近年,在一些酵母和細菌中也發(fā)現(xiàn)GOD。隨著高通量篩選技術(shù)的應用,相信會有更多產(chǎn)GOD菌株被發(fā)現(xiàn)。

    1.1 真菌來源

    MULLERD[11]在1928年首次于黑曲霉(A.niger)無細胞提取物中發(fā)現(xiàn)并命名了GOD;1936年又首次于灰綠青霉(Penicillium glaucum)中發(fā)現(xiàn)GOD[12]。之后,大量產(chǎn)GOD的曲霉和青霉屬真菌被發(fā)現(xiàn)。真菌因產(chǎn)酶量高,成為目前GOD研究的主要對象。2013年,F(xiàn)ARID M A等[13]首次從黑曲霉(A.niger)NRC中分離到GOD,將GOD生產(chǎn)推向海洋領(lǐng)域。2015年,KRIAA M等[14]從塔賓曲霉(Aspergillustubingensis)CTM 507中分離到GOD,該GOD在pH 3~9的范圍內(nèi)酶活穩(wěn)定,具有抗真菌活性,首次表明該GOD能夠用于農(nóng)業(yè)病原菌防治。2017年,YUIVARY等[15]檢測了多株南極酵母,從中篩選到5株產(chǎn)GOD菌株,其中,G.gastricus分泌的GOD酶活最高,催化效率達到1.4×107mol/(L·s);最適反應pH 5.6;最適反應溫度64℃,相比黑曲霉(A.niger)、尼崎青霉(Penicillium amagasakiense)等來源的GOD在25~40℃條件下有更高的酶活,并且在4℃仍保留約10%的酶活,拓寬了GOD的低溫真菌來源。

    國內(nèi)對GOD的系統(tǒng)研究始于20世紀70年代。葡萄糖氧化酶協(xié)作組[16]從367株青霉和曲霉中篩選到GOD高產(chǎn)菌點青霉(Penicillium notatum)AS 3.3871,以蔗糖為碳源,NaNO3為氮源,振蕩培養(yǎng)后經(jīng)靜置,酶活達到15~18 U/mL。發(fā)酵液經(jīng)弱酸性陽離子交換柱層析后濃縮,得到GOD酶制劑,用于處理蛋清,能夠除去其中的葡萄糖,有效防止干蛋白片的褐變。2013年,朱運平等[17]從全國120余份土樣中篩選到高產(chǎn)GOD的黑曲霉(A.niger)1504,該菌株同時合成胞外GOD(55.08 U/mL)和胞內(nèi)GOD(80.58 U/mL),經(jīng)紫外-亞硝酸鈉復合誘變,獲得遺傳穩(wěn)定性高的突變菌UNⅡ021,其胞外GOD酶活達到186.32 U/mL。江南大學酶工程實驗室長期從事GOD研究,從最初的菌株篩選,到黑曲霉(A.niger)Z-25的god基因異源表達于巴斯德畢赤酵母(Pichia pastoris)提高產(chǎn)量,再到對重組菌進行改造,于2015年使GOD酶活達到1 634.7 U/mL,為有史以來報道的最高值[18]。

    1.2 細菌來源

    目前關(guān)于產(chǎn)GOD細菌的報道較少。2013年,雷湘南等[10]從2 835株細菌中初篩出490株產(chǎn)酸菌,后經(jīng)發(fā)酵復篩出7株產(chǎn)GOD細菌。經(jīng)鑒定,6株為桿菌,1株為球菌(見表1)[12-14]。其中4株分泌胞外GOD,有2株為蒼白桿菌,蒼白桿菌B2059酶活最高,為0.1779μmol/mL。2014年,石漱鈺等[19]首次報道了產(chǎn)GOD的海洋假單胞桿菌(Pseudomonas aeruginosa),該菌株所產(chǎn)GOD酶活達5.51 U/mL,最適催化溫度20℃,為低溫酶,最適反應pH 7.0,在低溫保鮮、食品低溫加工中有潛在應用價值。

    表1 葡萄糖氧化酶微生物來源Table 1 Microbial source of glucose oxidase

    2 GOD的克隆表達及發(fā)酵生產(chǎn)

    2.1 GOD的克隆表達

    通常野生菌株GOD產(chǎn)量較低,發(fā)酵時伴隨其他酶的分泌,增加了GOD的分離純化難度,對GOD產(chǎn)業(yè)化造成了嚴重影響。隨著分子生物學技術(shù)的發(fā)展,基因克隆和表達成為提高GOD產(chǎn)量的重要措施。目前,多種來源的GOD被克隆,并在釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)、畢赤酵母(P.pastoris)、多形漢遜酵母(Hansenula polymorpha)以及青霉屬(Penicillium sp.)等宿主中成功表達[20-21]。

    1995年,GEISEN R[22]將黑曲霉(A.niger)的god基因插入pSK+3.Sma載體,導入納地青霉(P.nalgiovense)ATCC 66742后獲得成功表達,GOD酶活得到提高。之后有研究發(fā)現(xiàn)[3],霉菌在發(fā)酵過程中,菌絲會影響攪拌效果,導致菌體與發(fā)酵液接觸不良,造成GOD產(chǎn)量低。繼而酵母菌憑借蛋白產(chǎn)量高、產(chǎn)物與菌體易分離等優(yōu)點成為深層發(fā)酵的最佳宿主[23]。2003年,MALHERBED F等[3]將黑曲霉(A.niger)的god基因成功表達于釀酒酵母(S.cerevisiae),并研究了GOD在低酒精度紅酒生產(chǎn)中的應用。過去幾十年,釀酒酵母(S.cerevisiae)被認為是GOD異源表達的有效體系,但最近研究發(fā)現(xiàn),以S.cerevisiae為表達系統(tǒng),會引起重組GOD的高糖基化表達[12,24]。畢赤酵母(P.pastoris)系統(tǒng)可有效表達蛋白,而不會導致GOD的過度糖基化,已成為應用最廣泛的表達系統(tǒng)之一[25-26]。2014年,GAOZW等[1]首先克隆了點青霉(P.notatum)F4的god基因,根據(jù)畢赤酵母(P.pastoris)密碼子偏好優(yōu)化基因,然后插入pPIC9載體,并導入畢赤酵母(P.pastoris)GS115表達,發(fā)酵后,GOD酶活達到615U/mL,蛋白質(zhì)量濃度達2.5 g/L,超過發(fā)酵液上清中總蛋白濃度的80%。2017年,陳楠等[26]將黑曲霉(A.niger)PCTC的god基因插入具有AOX1強啟動子的pPICZαA表達載體,后導入畢赤酵母(P.pastoris)SMD1168,經(jīng)篩選、產(chǎn)酶條件優(yōu)化,最高酶活達到32 U/mL。

    2.2 GOD的發(fā)酵優(yōu)化

    GOD可由固態(tài)或深層發(fā)酵法生產(chǎn),其發(fā)酵研究有近30年[27]的歷史。雖然大量菌株可合成GOD,但因低產(chǎn)量問題無法直接用于工業(yè)生產(chǎn)。發(fā)酵優(yōu)化是提高酶產(chǎn)量的重要方式,隨著專業(yè)軟件的發(fā)展,GOD發(fā)酵優(yōu)化從傳統(tǒng)的單因素優(yōu)化法逐漸發(fā)展到統(tǒng)計優(yōu)化法。2001年,KONA RP等[28]對黑曲霉(A.niger)進行GOD發(fā)酵優(yōu)化,以玉米漿為唯一營養(yǎng)物質(zhì),使GOD酶活從(580±30)U/mL提高至(850±45)U/mL。2016年,郭云瑕等[29]對紫外誘變后的黑曲霉進行單因素發(fā)酵條件優(yōu)化,以5%接種量,在30℃、160 r/min條件下發(fā)酵72 h,酶活達到優(yōu)化前的9.56倍。2013年,F(xiàn)ARID M A等[10]對海洋黑曲霉(A.niger)NRC9進行GOD發(fā)酵培養(yǎng)基優(yōu)化,首先利用單因素設(shè)計,篩選出對GOD發(fā)酵最為重要的4個因素:葡萄糖、CaCO3、(NH4)2HPO4和MgSO4,之后利用部分析因設(shè)計和響應面法,確定最適發(fā)酵培養(yǎng)基。經(jīng)過發(fā)酵優(yōu)化,酶活從(109.81±1.38)U/mL提高至(170±0.88)U/mL。

    大量研究結(jié)果表明[30],在GOD發(fā)酵生產(chǎn)中,碳源是主要的誘導劑,最適碳源通常是葡萄糖、蔗糖或糖漿,在發(fā)酵過程中控制高碳氮比通常會得到更高的GOD產(chǎn)量。CaCO3也為發(fā)酵所必需,可誘導GOD合成,防止發(fā)酵過程中pH降低、提高GOD產(chǎn)量。此外,F(xiàn)e2+、Zn2+等金屬離子也可作為誘導劑誘導GOD的產(chǎn)生[31]。而GOD生產(chǎn)過程中,H2O2會抑制GOD的合成。

    3 GOD的分離純化

    為研究酶的結(jié)構(gòu)和功能以及推動商品化,20世紀40年代即開始對GOD的純化。GOD分子質(zhì)量為130~175 ku,其純化過程應用到了沉淀法、超濾、層析法[32]。1964年,PAZURJH等[33]通過硫酸銨鹽析、DEAE-纖維素層析純化到黑曲霉(A.niger)GOD,研究了該酶對不同底物的催化速率,對不同能力做了解釋。近年,超濾因不會對酶造成破壞,酶回收率高等優(yōu)點受到重視。繩狀青霉(P.funiculosum)46分泌兩種GOD,SEMASHKO T V等[34]開發(fā)了一種超濾膜分離法對兩種GOD進行純化。發(fā)酵液離心后經(jīng)0.2μm尼龍膜過濾,分別使用截留分子質(zhì)量為100 ku、50 ku和20 ku的超濾膜超濾,最終GOD濃度占起始濃度的90%,比活914~956 IU,純化效果理想。目前國內(nèi)生產(chǎn)的GOD存在嚴重的純度不高問題,使用的GOD主要依賴于進口,價格昂貴,GOD的純化仍是我國未來研究的重點。

    4 GOD的應用

    20世紀40年代國外開始出現(xiàn)GOD產(chǎn)品,到70年代對GOD的應用已十分普遍。我國緊跟市場需求,1960年,河南省輕化工業(yè)廳研究設(shè)計院將GOD應用于蛋品加工,1966年,中科院微生物研究所將篩選的GOD優(yōu)良菌株投入生產(chǎn),用于干蛋白片加工、尿糖試紙生產(chǎn)及實驗室分析。1999年,GOD被我國農(nóng)業(yè)部列入允許使用的飼料添加劑,用于維持畜禽腸道菌群、抑制霉菌生長、降解毒素等[35]。進入21世紀后,隨著個體化醫(yī)療的加快,使得葡萄糖檢測傳感器成為研究熱點?,F(xiàn)今,傳感器生產(chǎn)已成為GOD應用研究的主要領(lǐng)域,國內(nèi)外研究數(shù)量顯示,我國在該方面取得豐碩成果。

    4.1 在醫(yī)藥行業(yè)中的應用

    糖尿病是世界第三大疾病,血糖的檢測是病情護理的重要部分。從1962年首次提出GOD電極概念至今,GOD傳感器已發(fā)展至第三代,成為檢測葡萄糖的主要工具[36]。GOD傳感器以GOD特異催化葡萄糖為基礎(chǔ),通過檢測GOD上電子的變化來測定溶液中葡萄糖濃度,也可通過熒光檢測GOD分子中黃素腺嘌呤二核苷酸(flavin adenine dinucleotide,F(xiàn)AD)的變化來作用。何順珍等[37]利用GOD與羅丹明6G建立了一種測定恒量葡萄糖的新型熒光猝滅法,用于血糖測定,操作簡便,結(jié)果可靠。近年,多種納米材料被用于固定GOD以改善傳感器功能。WUC等[38]研制出一種納米多孔金固定化的GOD電極,對葡萄糖有很高的敏感性,對膽固醇,三丁酸甘油酯、抗壞血酸等有很強的抗干擾能力,使用壽命長,用于人血清葡萄糖檢測,結(jié)果與全自動分析儀一致。另外,GOD催化產(chǎn)生的葡萄糖酸可用于生產(chǎn)葡萄糖酸鹽類保健品。

    4.2 在食品行業(yè)中的應用

    傳統(tǒng)食品加工中通常使用化學添加劑保持食品新鮮、延長貨架期,但其使用不當會對人體造成危害。GOD作為食品添加劑,能夠分解葡萄糖,防止食品氧化并有抑菌作用。1998年,VEMULAPALLIV等[39]將GOD加入面團,發(fā)現(xiàn)產(chǎn)生的H2O2使面團更有彈性,黏性更大,開創(chuàng)了GOD作為食品添加劑的應用。VALENCIA PL等[40]在紅酒釀造中使用GOD/過氧化氫酶(catalase,CAT)酶系統(tǒng),降低了葡萄糖的濃度,生產(chǎn)出低酒精度紅酒,抑制了腐敗菌的生長。食物中添加GOD,還可防止美拉德反應的發(fā)生,避免食物褐化和保持食品風味。此外,南美白對蝦經(jīng)GOD處理后于4℃貯藏120 h,色澤、氣味、咀嚼性、彈性等品質(zhì)指標都顯著優(yōu)于對照組[41],表明GOD有一定的保鮮作用。

    4.3 開發(fā)生物燃料

    能源危機和環(huán)境污染問題日益嚴重,使得以酶為主體的燃料電池開發(fā)受到廣泛關(guān)注。GOD用于生物燃料生產(chǎn)已取得卓越成果。鄒瓊等[42]利用E-TEK Pt/C陰極和新型燃料電池陽極(GOD/CNTs-β-CD-Fc/GC)構(gòu)建了燃料電池,最大功率密度(33μW/cm,0.18 V),連續(xù)工作9 h,仍有92%開路電位,穩(wěn)定性好,為燃料電池設(shè)計提供了新思路。

    4.4 在其他方面的應用

    在其他方面,GOD也發(fā)揮著重要作用。作為飼料添加劑,具有除氧、產(chǎn)酸、排除毒素、抑菌和維持腸道微生態(tài)平衡等獨特作用[43]。我國在這方面研究較多,取得了豐碩成果。侯振平等[44]在斷奶仔豬飼料中添加180 U/kg GOD后,相比對照組,仔豬對干物質(zhì)和粗蛋白的消化率顯著提高,腹瀉率顯著降低,提高了仔豬生長性能。除此之外,GOD催化產(chǎn)生的H2O2可用于漂白織物。GOD具有很大的應用潛力,開發(fā)催化效率高、穩(wěn)定性強的GOD在實際的應用中至關(guān)重要。

    5 展望

    目前國內(nèi)外報道的GOD酶活普遍較低,不利于工業(yè)化生產(chǎn)。海洋資源的開發(fā),為尋找高活性GOD提供了新途徑。研究人員也在不斷努力優(yōu)化發(fā)酵過程和純化步驟,提高GOD的產(chǎn)量,降低生產(chǎn)成本。此外,隨著生物和其他學科技術(shù)的發(fā)展,提高GOD的異源表達水平,對酶進行修飾改善活性,擴大GOD的應用領(lǐng)域,深入酶的應用機理研究也將是今后的發(fā)展方向。

    參考文獻:

    [1]GAOZ W,LIZF,ZHANGY H,et al.High-level expression of the Penicillium notatum glucoseoxidasegenein Pichiapastoris using codon optimization[J].Biotechnol Lett,2012,34(3):507-514.

    [2]YIN B,YUAN R,CHAI YQ,et al.Amperometric glucose biosensors based on layer-by-layer assembly of chitosan and glucose oxidase on the Prussian blue-modified gold electrode[J].Biotechnol Lett,2008,30(2):317-322.

    [3]MALHERBE D F,TOIT M D,OTERO R R C,et al.Expression of the Aspergillus niger glucose oxidase gene in Saccharomyces cerevisiae and its potential applications in wine production[J].Appl Microbiol Biot,2003,61(5-6):502-511.

    [4]宋榮斌,朱俊杰.酶生物燃料電池自供能傳感器的研究現(xiàn)狀及應用[J].分析科學學報,2017,33(5):686-690.

    [5]侯振平,蔣桂韜,李 闖,等.不同葡萄糖氧化酶對斷奶仔豬生長性能、血清生化指標及養(yǎng)分消化率的影響[J].中國飼料,2017(23):25-28.

    [6]賀 璐,龍承星,劉又嘉,等.微生物乳糖酶研究進展[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2017,43(6):268-273.

    [7]BODADERG,KHOBRAGADECN,ARFEENS.Optimizationof culture conditionsfor glucose oxidase production by a Penicillium chrysogenum SRT 19 strain[J].Eng Life Sci,2010,10(1):35-39.

    [8]BANKAR SB,BULE M V,SINGHAL R K,et al.Glucose oxidase-an overview[J].Biotechnol Adv,2009,27(4):489-501.

    [9]DUBEY M K,ZEHRA A,AAMIRM,et al.Improvement strategies,cost effective production,and potential applicationsof fungal glucose oxidase(GOD):current updates[J].Front Microbiol,2017,8(8):1032.

    [10]雷湘南,沈 微,樊 游,等.產(chǎn)葡萄糖氧化酶細菌的篩選和鑒定[C]//中國微生物學會微生物資源專業(yè)委員會、國家微生物資源平臺.第五屆全國微生物資源學術(shù)暨國家微生物資源平臺運行服務(wù)研討會論文摘要集.中國微生物學會微生物資源專業(yè)委員會、國家微生物資源平臺,2013:137-143.

    [11]MULLER D.Oxidation von glukose mit extrakten aus Aspegillus niger[J].Biochem Z,1928,199(1):136-170.

    [12]KEILIN D,HARTREEEF.Properties of glucose oxidase(notatin)[J].Biochem J,1948,42(2):221-229.

    [13]FARID M A,GHONEIMY E A,El-KHAWAGA M A,et al.Statistical optimizationof glucoseoxidaseproductionfrom Aspergillusniger NRC9 under submerged fermentation using response surface methodology[J].Ann Microbiol,2013,63(2):523-531.

    [14]KRIAA M,HAMMAMII,SAHNOUN M,et al.Purification,biochemical characterization and antifungal activity of a novel Aspergillus tubingensis glucoseoxidasesteady on broad rangeof pH and temperatures[J].Bioprocess Biosystem Eng,2015,38(11):2155-2166.

    [15]YUIVARY,BARAHONA S,ALCAINOJ,et al.Biochemical and thermodynamical characterization of glucose oxidase,invertase,and alkalinephosphatasesecreted by antarctic yeasts[J].Front Mol Biosci,2017,4(1):86.

    [16]葡萄糖氧化酶協(xié)作組.點青霉(Penicillium notatum)AS3.3871葡萄糖氧化酶的研究[J].微生物學通報,1974,1(1):1-5.

    [17]朱運平,褚文丹,李秀婷,等.產(chǎn)胞外葡萄糖氧化酶菌株的分離鑒定及其誘變育種研究[J].中國食品學報,2014,14(4):96-103.

    [18]GU L,ZHANG J,LIU B H,et al.High-level extracellular production of glucoseoxidaseby recombinant Pichiapastoris usingacombined strategy[J].Appl Biochem Biotechnol,2015,175(3):1429-1447.

    [19]石淑鈺,張慶芳,遲乃玉,等.一株海洋低溫葡萄糖氧化酶菌株的篩選、鑒定及部分酶學性質(zhì)[J].微生物學通報,2014,41(5):832-838.

    [20]SHAIKHS,TRIVEDIR.Cloning&expression of glucoseoxidasefrom Aspergillusniger[J].Int J Pharm Biol Sci,2016,265(7):685-688.

    [21]劉曉筱.黑曲霉葡萄糖氧化酶在解脂耶氏酵母中的表達[D].無錫:江南大學,2016.

    [22]GEISENR.Expression of the Aspergillusniger glucoseoxidase genein Penicillium nalgiovense[J].World J Microbiol Biot,1995,11(3):322-325.

    [23]PAPPT,VELAYOSA,BARTOK T,et al.Heterologous expression of astaxanthin biosynthesisgenesin Mucor circinelloides[J].Appl Microbiol Biot,2006,69:526-531.

    [24]KAPAT A,JUNGJ,PARK Y H.Improvement of extracellular recombinant glucose oxidase production in fed-batch culture of Saccharomyces cerevisiae:Effect of different feeding strategies[J].Biotechnol Lett,1998,20(3):319-23.

    [25]COURJEAN O,MANO N.Recombinant glucose oxidase from Penicillium amagasakiense for efficient bioelectrochemical applications in physiological conditions[J].J Biotechnol,2011,151(1):122-129.

    [26]陳 楠,肖成建,范新蕾,等.黑曲霉葡萄糖氧化酶基因在畢赤酵母SMD1168 中的表達[J].食品與生物技術(shù)學報,2017,36(9):975-981.

    [27]辛國芹,董佩佩,汪祥燕,等.產(chǎn)葡萄糖氧化酶菌株的誘變篩選及遺傳穩(wěn)定性研究[J].中國釀造,2016,35(11):69-72.

    [28]KONA RP,QURESHIN,PAIJS.Production of glucoseoxidaseusing Aspergillusniger and corn steep liquor[J].Bioresource Technol,2001,78(2):123-126.

    [29]郭云瑕,孫鈺婷,辛 穎,等.葡萄糖氧化酶產(chǎn)生菌的紫外誘變及發(fā)酵條件優(yōu)化[J].食品科技,2016,41(5):2-6.

    [30]PETRUCCIOLI M,FENICEENICE M,PICCIONI P,et al.Effect of stirrer speed and buffering agents on the production of glucode oxidase and catalase by Penicillium variabile(P16)in benchtop bioreactor[J].Enzyme Microbial Technol,1995,17(4):336-339.

    [31]SONGH T,XIAOWJ,YANGY M,et al.Improving theanti-oxidation of glucoseoxidasewith computer-aided structureoptimization[J].J Adv Biotechnol,2016,5(3):736-740.

    [32]ZIA M A,RIAZ A RASUL S,ABBASRZ.Evaluation of antimicrobial activity of glucoseoxidasefrom Aspergillusniger EBLAand Penicillium notatum[J].Brazil Arch Biol Tech,2013,56(6):956-961.

    [33]PAZUR J H,KLEPPE K.The oxidation of glucose and related compoundsby glucoseoxidasefrom Aspergillusniger[J].Biochemistry,1964,3(4):578.

    [34]SEMASHKO T V,MIKHAILOVA R V,EREMIN A N.Extracellular glucose oxidase of Penicillium funiculosum 46.1[J].Appl Biochem Microbiol,2003,39(4):368-374.

    [35]張谷楠.黑曲霉葡萄糖氧化酶基因在畢赤酵母和黑曲霉中的分泌表達[D].哈爾濱:東北農(nóng)業(yè)大學,2012.

    [36]孫 凱,周 華,楊膺琨,等.血糖監(jiān)測系統(tǒng)的研究進展[J].中國激光,2018,45(2):0207003.

    [37]何順珍,李菲菲,陸一松,等.酶催化熒光猝滅法測定痕量葡萄糖[J].應用化工,2017,46(12):1-8.

    [38]WU C,SUN H H,LI Y F,et al.Biosensor based on glucose oxidasenanoporousgold co-catalysisfor glucosedetection[J].Biosens Bioelectr,2015,66(1):350-355.

    [39]VEMULAPALL V,MILLERK A,HOSENEY RC.Glucose oxidase in breadmaking systems[J].Cereal Chem,1998,75(4):439-442.

    [40]VALENCIA PL,ESPINOZA K,RAMIREZC,etal.Technical feasibility of glucoseoxidase as aprefermentation treatment for lowering the alcoholic degreeof red wine[J].Am J Enol Viticult,2017,68(3):386-389.

    [41]徐德峰,葉日英,李彩虹,等.Bacillus sp.CAMT22370源葡萄糖氧化酶對南美白對蝦貯藏性能的影響[J].食品科學,2017,38(21):259-264.

    [42]鄒 瓊,劉 娟,朱剛兵,等.一種新型酶生物燃料電池陽極構(gòu)建及性能研究[J].化學學報,2013,71(8):1154-1160.

    [43]于會民,王瑞生,陳寶江,等.葡萄糖氧化酶及糞腸球菌對肉仔雞生長性能、血液抗氧化指標及養(yǎng)分表觀消化率的影響[J].中國畜牧雜志,2016,52(23):60-64.

    [44]侯振平,蔣桂韜,吳端欽,等.葡萄糖氧化酶對斷奶仔豬生長性能、血清生化指標和抗氧化功能及養(yǎng)分消化率的影響[J].動物營養(yǎng)學報,2017,29(10):3482-3488.

    猜你喜歡
    葡萄糖氧化酶黑曲霉青霉
    葡萄糖氧化酶的研究進展及其在豬生產(chǎn)中的應用分析
    飼料博覽(2019年7期)2019-02-12 22:28:15
    齒輪狀SBA-15的制備及其對葡萄糖氧化酶的吸附行為研究
    陶瓷學報(2019年5期)2019-01-12 09:17:42
    葡萄糖氧化酶在斷奶仔豬日糧上的應用研究進展
    復合誘變選育耐高溫高產(chǎn)葡萄糖酸鹽的黑曲霉菌株
    中國釀造(2016年12期)2016-03-01 03:08:22
    黑曲霉產(chǎn)纖維素酶混合發(fā)酵條件的研究
    中國釀造(2016年12期)2016-03-01 03:08:20
    酶法制備黑曲霉原生質(zhì)體的條件
    碳青霉烯類抗生素耐藥機制的研究進展
    三種方法聯(lián)合檢測在非HIV感染兒童馬爾尼菲青霉病的臨床應用
    產(chǎn)IMP-1型碳青霉烯酶非脫羧勒克菌的分離與鑒定
    拮抗擴展青霉菌株的篩選及其抗菌活性物質(zhì)分離
    铜鼓县| 永平县| 环江| 临潭县| 威海市| 灵川县| 鸡东县| 金昌市| 凤凰县| 神农架林区| 渝北区| 夹江县| 右玉县| 静海县| 吕梁市| 河池市| 娄底市| 东源县| 宣武区| 邢台市| 洛浦县| 会东县| 瓮安县| 西乌珠穆沁旗| 资中县| 同江市| 沧州市| 海盐县| 宁安市| 务川| 荔浦县| 渝中区| 县级市| 太保市| 洛阳市| 东海县| 盐山县| 色达县| 额敏县| 青州市| 永宁县|