陳妍潔, 吳 昊, 董 玲, 劉韜韜, 沈錫中*
1. 復(fù)旦大學(xué)附屬中山醫(yī)院消化科,上海 200032 2. 復(fù)旦大學(xué)附屬中山醫(yī)院上海肝病研究所,上海 200032
胃癌在全球占腫瘤發(fā)病率的第4位,致死率也較高[1-2]。其中,近年來(lái)每年約75%的新發(fā)病例來(lái)自于亞洲[1-2]。目前,臨床上胃癌的無(wú)創(chuàng)診斷標(biāo)志物如癌胚抗原(carcinoembryonic antigen,CEA)的靈敏性和特異性均不高,對(duì)胃癌早期診斷作用不明顯,而胃癌診斷的早晚決定患者的預(yù)后。因此,對(duì)于新型胃癌診斷標(biāo)志物的探索顯得尤為重要。MicroRNAs(以下簡(jiǎn)稱miRNAs)是一類保守的非編碼RNA分子,通常由18~24個(gè)核苷酸組成[3-4]。目前認(rèn)為其在胃癌的發(fā)病中起至關(guān)重要的作用。多項(xiàng)研究[5-12]發(fā)現(xiàn),一些miRNAs在胃癌組織和癌旁組織中的表達(dá)存在差異。有研究[13]發(fā)現(xiàn),miR-17、miR-18a、miR-20a、miR-21、miR-106b、miR-378和miR-638在胃癌組織中表達(dá)異常,其中6個(gè)miRNAs(miR-17, miR-18a, miR-20a, miR-21, miR-106b、miR-378)在胃癌及癌旁組織中的表達(dá)存在差異。
目前,多項(xiàng)研究[14-16]發(fā)現(xiàn),胃癌患者外周血及胃液中的癌癥相關(guān)miRNAs表達(dá)也發(fā)生了改變。由于胃液屬于胃癌腫瘤微環(huán)境的組成部分,因此胃液中miRNAs的表達(dá)與胃癌細(xì)胞的發(fā)生、發(fā)展聯(lián)系更加緊密,可反映胃癌細(xì)胞的旁分泌情況。因此,本研究選取上述6個(gè)胃癌相關(guān)miRNAs,分析其在胃癌患者胃液中的表達(dá),并探討其作為胃癌診斷標(biāo)志物的價(jià)值。
1.1 一般資料 選擇2013年1月至12月于復(fù)旦大學(xué)附屬中山醫(yī)院進(jìn)行胃鏡檢查的53例患者,包括24例胃腺癌患者、16例胃潰瘍患者和13例慢性胃炎患者。胃腺癌患者入選標(biāo)準(zhǔn):(1)病理確診為胃腺癌;(2)在胃鏡檢查前未接受化療或放療等腫瘤相關(guān)治療。胃潰瘍患者入選標(biāo)準(zhǔn):(1)病理診斷排除惡性潰瘍;(2)藥物治療后潰瘍愈合。慢性胃炎患者入選標(biāo)準(zhǔn):病理診斷包括慢性非萎縮性胃炎(伴或不伴腸化生)、慢性萎縮性胃炎(伴或不伴腸化生)。所有患者病灶無(wú)活動(dòng)性出血,檢查前12 h禁食。本研究經(jīng)醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn),患者知情同意并簽署知情同意書。
1.2 樣品處理和miRNAs提取 胃液在活檢前取出,4℃下 3 000×g離心10 min,取上清分裝后保存在-80℃冰箱中。Cel-miR-39(廣州市銳博生物科技有限公司)作為外源性內(nèi)參加入胃液中,濃度為1×10-2pmol/L。
胃液總miRNAs按照miRcute miRNAs Isolation Kit[天根生化科技(北京)有限公司]說(shuō)明書提取,具體過(guò)程如下:200 μL胃液中加入等體積裂解液MZ,震蕩器震蕩混勻30 s;室溫放置5 min,使核酸蛋白復(fù)合物完全分離;室溫13 400×g,離心10 min,取上清,轉(zhuǎn)入1個(gè)新的無(wú)酶離心管中;加入200 μL氯仿,蓋好管蓋,劇烈震蕩15 s,室溫放置5 min;室溫13 400×g離心15 min,取上層無(wú)色水相層至新管中;緩慢加入1/3體積的無(wú)水乙醇并混勻,將混勻液體轉(zhuǎn)入吸附柱miRspin,室溫放置2 min,室溫13 400×g離心30 s,保留流出液;加入流出液體積2/3的無(wú)水乙醇并混勻,轉(zhuǎn)入吸附柱miRelute,室溫放置2 min,13 400×g離心30 s,離心后棄去流出液,保留吸附柱;向吸附柱miRelute中加入500 μL去蛋白液MRD,靜置2 min,室溫13 400×g離心30 s,棄廢液;向吸附柱miRelute中加入600 μL漂洗液RW,靜置2 min,室溫13 400×g離心30 s,棄廢液;向吸附柱miRelute中加入600 μL漂洗液RW,靜置2 min,室溫13 400×g離心30 s,棄廢液;將吸附柱miRelute放入2 mL收集管中,室溫13 400×g離心1 min,去除殘余液體;將吸附柱miRelute轉(zhuǎn)入1個(gè)新的離心管中,加入30 μL無(wú)酶DD水,室溫放置2 min,13 400×g離心2 min。得到的總miRNAs保存在-80℃冰箱中。
總miRNAs采用miRcute miRNAs First-Strand cDNA Synthesis Kit試劑盒[天根生化科技(北京)有限公司]反轉(zhuǎn)錄成cDNA:(1)在miRNAs的3′端加入Poly(A)尾;(2)將Poly(A)尾修飾過(guò)的miRNAs反轉(zhuǎn)錄成為cDNA。
1.3 qRT-PCR半定量miRNAs miRNAs的PCR反應(yīng)采用miRcute miRNAs qPCR Detection Kit試劑盒[天根生化科技(北京)有限公司]。miRNAs的引物序列見表1。將每個(gè)樣品進(jìn)行40個(gè)周期的循環(huán)反應(yīng):94℃變性20 s,60℃退火30 s,72℃擴(kuò)增32 s。相對(duì)miRNAs計(jì)算公式為2-ΔCt[ΔCt = Ct (miRNAs) - Ct (內(nèi)參)][17]。
表1 miRNAs的引物序列
1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析。兩組間miRNAs的表達(dá)采用非參數(shù)檢驗(yàn)Mann-Whitney。用ROC曲線下面積(AUC)對(duì)miRNAs的診斷效能進(jìn)行評(píng)估。檢驗(yàn)水準(zhǔn)(α)為0.05。
2.1 患者基本信息 24例胃癌患者中,男性17例,女性7例;年齡38~86歲,平均(65.92±11.03)歲。13例慢性胃炎患者年齡為28~82歲,平均(65±8.01)歲;16例胃潰瘍患者年齡為34~80歲,平均(66±11.88)歲。由慢性胃炎和胃潰瘍患者組成的對(duì)照組中,男性21例,女性8例。胃癌組和對(duì)照組患者年齡和性別差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。24例胃癌患者CEA、CA199、CA724這3項(xiàng)腫瘤指標(biāo)中至少有1項(xiàng)為陽(yáng)性,其中19例患者CEA陽(yáng)性、1例CA724陽(yáng)性、1例CEA和CA199陽(yáng)性、2例CEA和CA724陽(yáng)性、1例3項(xiàng)指標(biāo)均為陽(yáng)性;對(duì)照組中有6例至少有1項(xiàng)腫瘤標(biāo)志物為陽(yáng)性,其中1例為CEA陽(yáng)性,5例為CA724陽(yáng)性。
2.2 兩組間6個(gè)胃液miRNAs的表達(dá)差異 結(jié)果(圖1)顯示:胃癌患者胃液中miR-17、miR-18a、miR-20a、miR-21和miR-378較對(duì)照組上調(diào)(P<0.05;兩組胃液miR-106b差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.3 ROC曲線分析miRNAs診斷效能 結(jié)果(圖2、表 2)顯示:miR-17、miR-18a、miR-21和miR-378診斷胃癌的效能中等;miR-20a和miR-106b診斷胃癌的效能較低。
圖1 胃癌相關(guān)miRNAs在胃液中的表達(dá)
圖2 胃癌相關(guān)miRNAs的診斷效能
miRNAAUC95%CI上限95%CI下限敏感性特異性miR-170.7100.5700.8500.5830.793miR-18a0.7390.6060.8710.4580.931miR-20a0.6840.5410.8270.7920.552miR-210.7170.5780.8560.4580.966miR-106b0.6410.4920.7900.8750.414miR-3780.7210.5850.8580.7500.586
大量研究[14-16]發(fā)現(xiàn),組織和血液中的miRNAs可作為胃癌的診斷和預(yù)測(cè)標(biāo)志物。但是,對(duì)于胃液中miRNAs的研究目前還較少。胃液作為直接接觸胃癌組織的體液,屬于胃癌的腫瘤微環(huán)境組成之一,可直接反映腫瘤的發(fā)生、發(fā)展、侵襲、遷移,且臨床上較易獲得。因此,胃液中所含的小分子物質(zhì)有較高的診斷特異性,可成為胃癌早期的診斷標(biāo)志物。另外,也有研究[18-19]顯示,不同的溫度、時(shí)間、pH值、酶消化及凍融循環(huán)都難以改變體液中miRNAs的含量,提示體液中miRNAs具有相對(duì)穩(wěn)定和抗降解的特性。雖然,目前尚未證明miRNAs在胃液中也具有同樣的穩(wěn)定性,但是我們?cè)趯?shí)驗(yàn)過(guò)程中發(fā)現(xiàn),離心取上清后采用-80℃的保存方式并不影響后續(xù)的qRT-PCR實(shí)驗(yàn),且miRNAs的相對(duì)表達(dá)量較為恒定,提示胃液中的miRNAs也有較好的穩(wěn)定性,可能成為未來(lái)胃癌無(wú)創(chuàng)診斷的標(biāo)志物之一。
本研究選取了系統(tǒng)綜述胃癌組織中表達(dá)有明顯差異的6個(gè)miRNAs在胃液中進(jìn)行驗(yàn)證[13],并探討其對(duì)胃癌的診斷價(jià)值。本研究發(fā)現(xiàn),這6個(gè)miRNAs在胃癌患者的胃液中表達(dá)均有升高,其中,miR-17、miR-18a、miR-21和miR-378在癌和癌旁組織中的表達(dá)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),且具有中等診斷效能。這些結(jié)果初步表明,胃液中的miRNAs可作為胃癌早期診斷的標(biāo)志物。但是,本研究進(jìn)行Logistic回歸時(shí)未能將6個(gè)miRNAs整合。
胃癌患者胃液中miRNAs變化趨勢(shì)與胃癌組織中miRNAs的表達(dá)不完全一致。文獻(xiàn)[13]報(bào)道,miR-378在胃癌組織中表達(dá)較正常癌旁組織有所降低,而本研究結(jié)果相反。有研究[20]認(rèn)為,一方面,胃癌細(xì)胞在生長(zhǎng)過(guò)程中伴隨大量壞死,壞死細(xì)胞被動(dòng)釋放大量的miRNAs于胃液中;另一方面,腫瘤細(xì)胞會(huì)主動(dòng)釋放含有miRNAs的微囊泡至胃液中,以精細(xì)調(diào)控腫瘤微環(huán)境,并向遠(yuǎn)處的細(xì)胞傳遞細(xì)胞信號(hào),促進(jìn)腫瘤的發(fā)生、發(fā)展和轉(zhuǎn)移。但這些理論還有待進(jìn)一步研究。
將胃液miRNAs作為胃癌診斷標(biāo)志物的優(yōu)勢(shì)在于:首先,胃液由胃黏膜直接分泌,相比于血清或者血漿中的miRNAs,受全身其他疾病的影響較小,因此對(duì)于胃癌的診斷更具特異性;其次,胃液可通過(guò)胃鏡和胃管獲得,適用于長(zhǎng)期服用抗凝藥物不能活檢、早期胃癌胃鏡下難以識(shí)別以及無(wú)法行胃鏡檢查的患者;再次,目前miRNAs的提取和檢測(cè)手段越來(lái)越成熟。
然而,胃液中miRNAs的檢測(cè)也面臨許多挑戰(zhàn)。首先,試驗(yàn)前飲水、唾液分泌、病灶活動(dòng)性出血等使胃液的質(zhì)控較難,進(jìn)而改變胃液中miRNAs的表達(dá);其次,胃液中miRNAs對(duì)胃酸環(huán)境的穩(wěn)定性要求及其儲(chǔ)存條件尚未標(biāo)準(zhǔn)化;再次,幽門螺桿菌的感染是否影響胃液中miRNAs的表達(dá)水平目前尚不明確。
綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn),胃液中的miRNAs可作為早期胃癌的診斷標(biāo)志物。雖然本研究的樣本量較少,但采用了系統(tǒng)綜述的結(jié)果,選取胃癌患者表達(dá)陽(yáng)性率最高的6個(gè)miRNAs,且對(duì)照組同時(shí)納入了胃潰瘍和慢性胃炎的患者,結(jié)果的準(zhǔn)確性較高。另外,實(shí)驗(yàn)對(duì)于胃液的儲(chǔ)存和處理都嚴(yán)格質(zhì)控,及時(shí)處理,減少不同胃液質(zhì)量所造成的偏差,可保證結(jié)果的可靠性。在后續(xù)實(shí)驗(yàn)中,將擴(kuò)大樣本量,并在對(duì)照中加入其他胃癌癌前病變(如中高級(jí)別上皮內(nèi)瘤變)或間質(zhì)瘤、平滑肌瘤等病變,以期提高胃液miRNAs作為胃癌診斷指標(biāo)的特異性,并進(jìn)一步研究胃液中miRNAs的改變與腫瘤分化、侵襲、轉(zhuǎn)移的相關(guān)性及其調(diào)控機(jī)制。
[ 1 ] SHEN L, SHAN Y S, HU H M, et al. Management of gastric cancer in Asia: resource-stratified guidelines[J]. Lancet Oncol,2013,14(12):e535-e547.
[ 2 ] FERLAY J, SHIN H R, BRAY F, et al. Estimates of worldwide burden of cancer in 2008: GLOBOCAN 2008[J]. Int J Cancer,2010,127(12):2893-2917.
[ 3 ] BARTEL D P. MicroRNAs: Genomics, biogenesis, mechanism, and function[J]. Cell,2004,116(2):281-297.
[ 4 ] AMBROS V. The functions of animal microRNAs[J]. Nature,2004,431(7006):350-355.
[ 5 ] GUO J, MIAO Y, XIAO B, et al. Differential expression of microRNA species in human gastric cancer versus non-tumorous tissues[J]. J Gastroenterol Hepatol,2009,24(4):652-657.
[ 6 ] YAO Y, SUO A L, LI Z F, et al. MicroRNA profiling of human gastric cancer[J]. Mol Med Rep,2009,2(6):963-970.
[ 7 ] UEDA T, VOLINIA S, OKUMURA H, et al. Relation between microRNA expression and progression and prognosis of gastric cancer: a microRNA expression analysis[J]. Lancet Oncol,2010,11(2):136-146.
[ 8 ] TSUKAMOTO Y, NAKADA C, NOGUCHI T, et al. MicroRNA-375 is downregulated in gastric carcinomas and regulates cell survival by targeting PDK1 and 14-3-3zeta[J]. Cancer Res,2010,70(6):2339-2349.
[ 9 ] JIN Z, SELARU F M, CHENG Y, et al. MicroRNA-192 and -215 are upregulated in human gastric cancer in vivo and suppress ALCAM expression in vitro[J]. Oncogene,2011,30(13):1577-1585.
[10] OH H K, TAN A L, DAS K, et al. Genomic loss of miR-486 regulates tumor progression and the OLFM4 antiapoptotic factor in gastric cancer[J]. Clin Cancer Res,2011,17(9):2657-2667.
[11] LI X, LUO F, LI Q, et al. Identification of new aberrantly expressed miRNAs in intestinal-type gastric cancer and its clinical significance[J]. Oncol Rep,2011,26(6):1431-1439.
[12] WU W Y, XUE X Y, CHEN Z J, et al. Potentially predictive microRNAs of gastric cancer with metastasis to lymph node[J]. World J Gastroenterol,2011,17(31):3645-3651.
[13] WANG J L, HU Y, KONG X, et al. Candidate microRNA biomarkers in human gastric cancer: a systematic review and validation study[J]. PLoS One,2013,8(9):e73683.
[14] ZHANG X, CUI L, YE G, et al. Gastric juice microRNA-421 is a new biomarker for screening gastric cancer[J]. Tumour Biol,2012,33(6):2349-2355.
[15] YU X, LUO L, WU Y, et al. Gastric juice miR-129 as a potential biomarker for screening gastric cancer[J]. Med Oncol,2013,30(1):365.
[16] CUI L, ZHANG X, YE G, et al. Gastric juice microRNAs as potential biomarkers for the screening of gastric cancer[J]. Cancer, 2013,119(9):1618-1626.
[17] LIVAK K J, SCHMITTGEN T D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) Method[J].Methods,2001,25(4):402-408.
[18] LI Y, XU J L, YAO H, et al. Stability analysis of liver cancer-related microRNAs[J]. Acta Biochim Biophys Sin (Shanghai),2011,43(1):69-78.
[19] GRASEDIECK S, SCHOLER N, BOMMER M, et al. Impact of serum storage conditions on microRNA stability[J].Leukemia,2012,26(11):2414-2416.
[20] CHEN X, LIANG H, ZHANG J, et al. Horizontal transfer of microRNAs: molecular mechanisms and clinical applications[J]. Protein Cell,2012,3(1):28-37.