鄒綺明,張玲
(廣西中醫(yī)藥大學(xué)附屬瑞康醫(yī)院,南寧530011)
miRNA是一類廣泛存在于真核細(xì)胞中的單鏈小分子RNA,不能直接參與轉(zhuǎn)錄、翻譯編碼蛋白質(zhì),通過靶向mRNA的3′端非翻譯區(qū)(UTR),達(dá)到降解mRNA或抑制其正常的轉(zhuǎn)錄、翻譯[1]。越來越多研究發(fā)現(xiàn),失調(diào)的miRNA參與多種疾病發(fā)生發(fā)展[2]。從血清到組織,miRNA在慢性乙型肝炎、肝硬化、肝癌患者體內(nèi)的表達(dá)均存在差異;細(xì)胞株、動(dòng)物等實(shí)驗(yàn)證實(shí)miRNA在HBV感染相關(guān)疾病的不同階段,同一種miRNA可發(fā)揮不同作用,不同的miRNA差異表達(dá)還可表現(xiàn)協(xié)同或拮抗作用,預(yù)示異常表達(dá)的miRNA與HBV-HCC的發(fā)生發(fā)展、侵襲、轉(zhuǎn)移和凋亡有重要聯(lián)系[3]。現(xiàn)就miRNA在乙肝相關(guān)性肝癌發(fā)生發(fā)展中的作用研究進(jìn)展綜述如下。
隨著有效抗病毒療法的出現(xiàn),HBV復(fù)制可完全被抑制,但我國絕大部分肝癌患者有HBV感染史,目前認(rèn)為HBV復(fù)制,尤其是持續(xù)高HBV-DNA可加速疾病進(jìn)程,甚至直接誘發(fā)HBV感染相關(guān)肝癌發(fā)生[4]。鮑春旸[5]利用生物芯片技術(shù)在HBV細(xì)胞模型中發(fā)現(xiàn)29個(gè)miRNA與HBV復(fù)制呈負(fù)相關(guān),并用生物信息學(xué)軟件預(yù)測(cè)其靶基因驗(yàn)證出4個(gè)miRNA能靶向調(diào)控HBV基因,如miR-15b可能通過與S基因﹙P基因﹚的編碼區(qū)結(jié)合并抑制其表達(dá),抑制病毒復(fù)制;miR-192與HBV編碼的蛋白(HBx)通過肝特異轉(zhuǎn)錄因子HNF-1α結(jié)合位點(diǎn)結(jié)合后,不但促進(jìn)自身表達(dá),同時(shí)抑制抑癌基因RB1的表達(dá)。雖然目前發(fā)現(xiàn)的miRNA能對(duì)HBV復(fù)制起到消極作用,似乎對(duì)抗HBV較為有利,但仍有患者能進(jìn)展為肝癌,與HBV使調(diào)節(jié)宿主基因表達(dá)相關(guān)的miRNA處于失衡狀態(tài)、利于維持HBV-DNA高水平復(fù)制相關(guān)[6]。
miR-122被認(rèn)為是一種肝臟的特異性miRNA,上調(diào)miR-122不但能抑制抗HBV的酶HO-1,抑制HBV感染[7];還能下調(diào)細(xì)胞周期蛋白G1(Cyclin G1),誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡和抑制增殖,上調(diào)p53蛋白與HBV復(fù)制的增強(qiáng)子元件特異性結(jié)合,抑制HBV DNA增殖[8]。陳素玲等[9]發(fā)現(xiàn)血清miR-122表達(dá)量在中度及重度CHB患者明顯升高,但在非活動(dòng)性HBV攜帶者、肝硬化、肝癌患者血清中往往處于低下水平,并未在HBV感染史中長期保持高表達(dá)以抵抗病毒復(fù)制。其次,miRNA還以負(fù)反饋調(diào)節(jié)形式限制HBV自身復(fù)制。miR-155是炎癥和腫瘤發(fā)展過程中的重要調(diào)節(jié)因子,在HBV慢性感染細(xì)胞模型HepG2.2.15中,miR-155過度表達(dá)抑制細(xì)胞因子信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)抑制因子1(SOCS1),負(fù)反饋性阻斷IL-10等相關(guān)通路,抑制HBsAg、HBeAg及HBV蛋白表達(dá)[10]。HBV這種限制自身病毒復(fù)制行為,尤其是在慢性化演變中,可能通過在人類先天抗病毒防御系統(tǒng)中發(fā)揮作用,借此避免因過度復(fù)制而被免疫系統(tǒng)攻擊,從而利于病毒持續(xù)復(fù)制、增加致癌性,可能是病毒進(jìn)化、腫瘤細(xì)胞逃逸中的一種機(jī)制。
肝臟是機(jī)體的免疫特惠器官,但在HBV感染慢性過程中,宿主免疫功能失調(diào),使抗病毒藥物應(yīng)答不充分,易向慢性炎癥損傷改變,病毒、腫瘤細(xì)胞逃避免疫系統(tǒng)的識(shí)別和攻擊,最終進(jìn)展為肝癌。研究發(fā)現(xiàn),miRNA分子差異表達(dá)與HBV感染后免疫耐受和病毒清除密切相關(guān),被認(rèn)為是HBV感染后免疫應(yīng)答的調(diào)節(jié)因子[11]。在人體,能對(duì)病毒感染的細(xì)胞、腫瘤細(xì)胞產(chǎn)生快速應(yīng)答的主要是NK細(xì)胞。而CHB和HCC患者的NK細(xì)胞功能往往處于下調(diào)狀態(tài),Xu等[12]進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)過表達(dá)的miR-146a通過下調(diào)細(xì)胞因子受體信號(hào)蛋白1(STAT1)表達(dá),使NK細(xì)胞的殺傷活性及分泌細(xì)胞因子的能力受抑,當(dāng)促進(jìn)STAT1表達(dá)后,可恢復(fù)部分患者的NK細(xì)胞功能,過度表達(dá)miR-146a對(duì)CHB患者的固有免疫發(fā)揮負(fù)向調(diào)控作用。Wang 等[13]還發(fā)現(xiàn)miR-146a通過靶向 STAT1還參與抗病毒細(xì)胞因子及CD4+和CD8+T細(xì)胞的產(chǎn)生,介導(dǎo)T細(xì)胞功能受損,影響獲得性免疫形成。HLA-G是一類非經(jīng)典的MHC-Ⅰ類分子,幾乎能作用于所有免疫反應(yīng)相關(guān)的細(xì)胞亞群,能在腫瘤、病毒感染細(xì)胞中表達(dá)并介導(dǎo)逃避機(jī)體免疫反應(yīng)。Bian等[14]發(fā)現(xiàn)在HBV感染后miR-152低表達(dá)參與了人白細(xì)胞抗原-G(HLA-G)表達(dá)上調(diào),高表達(dá)HLA-G使NK細(xì)胞對(duì)HBV、癌細(xì)胞殺傷活性降低,在肝癌腫瘤細(xì)胞逃避免疫清除中發(fā)揮重要作用。
肝星狀細(xì)胞(HSC)能被肝損傷相關(guān)的炎癥反應(yīng)激活,大量增殖分化,并分泌細(xì)胞外基質(zhì)(ECM),而過量的ECM又可以加重肝臟損傷,如此反復(fù)引起惡性循環(huán),最終引起肝纖維化(HF)。miRNA不但參與乙肝慢性化進(jìn)程,還參與HSC的激活,并促進(jìn)ECM積累,與肝纖維化(HF)的發(fā)生密切相關(guān)[15]。轉(zhuǎn)化生長因子β1(TGF-β1)不僅是活化HSC的主要信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,而且被激活的HSC促使 TGF-β1的分泌,促進(jìn)ECM合成并抑制其降解,在肝硬化的形成中發(fā)揮核心作用[16];TGF-β1作為一種多功能因子,還能與HNF4A相互作用,誘導(dǎo)上皮細(xì)胞-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)發(fā)生,使細(xì)胞間附著能力喪失,介導(dǎo)腫瘤轉(zhuǎn)移機(jī)制[17]。鄧國孫[18]在CCl4誘導(dǎo)小鼠的HF細(xì)胞模型中,發(fā)現(xiàn)miRNA-10a直接調(diào)控TGF-β1/Smads信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路促進(jìn)肝纖維化,間接參與HCC發(fā)生。此外, miRNA還參與調(diào)控ECM形成,加速肝硬化進(jìn)程?;|(zhì)金屬蛋白酶(MMP)作為ECM的主要降解物,由于在肝硬化進(jìn)程中常被TGF-β抑制,使ECM合成與降解平衡失調(diào)[19]。李耕[20]發(fā)現(xiàn)升高的miR-155與MMP-9靶向結(jié)合降低其表達(dá),調(diào)節(jié)ECM,協(xié)同TGF-β誘導(dǎo)HF進(jìn)程。陳征等[21]發(fā)現(xiàn),miR-375可使大鼠肝星狀細(xì)胞(HSC-T6) 中蛋白激酶 B(PKB)、丙酮酸脫氫酶激酶-1(PDK1)含量明顯下降,細(xì)胞停滯于G0/G1期的比例升高,抑制HSC的增殖,負(fù)性調(diào)控HF進(jìn)程。
miRNAs可通過調(diào)控多個(gè)癌基因和抑癌基因的表達(dá),影響細(xì)胞再生增殖、凋亡、分化等生物學(xué)功能,參與肝癌的發(fā)生發(fā)展[22]。原癌蛋白c-myc在多種組織和細(xì)胞中均有表達(dá),其功能的異常與多種腫瘤的發(fā)生和預(yù)后密切相關(guān),其可被細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(ERK1/2)通路所激活,使HSC誘導(dǎo)出現(xiàn)EMT及肝癌增殖等惡性化生物學(xué)行為[23]。謝聰?shù)萚24]成功構(gòu)建has-miR-146a真核過表達(dá)載體pmR-146a,并將has-miR-146a的前體基因片段轉(zhuǎn)染乙肝相關(guān)肝癌株HepG2.2.15,得出has-miR-146a可以下調(diào)c-myc表達(dá),抑制肝癌細(xì)胞增殖。miR-375可通過調(diào)控MAPK、Wnt、AKT、p53、PDK1等多個(gè)靶基因,發(fā)揮抑癌基因的作用。研究發(fā)現(xiàn),miR-375在乙肝相關(guān)性肝癌患者腫瘤組織中的表達(dá)低于癌旁正常組織,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,腫瘤組織中低水平的miR-375表達(dá),與血清高AFP水平、晚期肝癌病情進(jìn)展及肝癌細(xì)胞低分化程度具有顯著相關(guān)性,反映低表達(dá)的miR-375未能影響HBV復(fù)制,在HCC中未能通過靶向多個(gè)致癌基因發(fā)揮腫瘤抑制作用,并影響晚期肝癌患者的預(yù)后[25]。
HBx是病毒反式作用因子,被人們公認(rèn)為能影響宿主基因表達(dá),干擾信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、細(xì)胞凋亡和細(xì)胞周期調(diào)控等過程,介導(dǎo)腫瘤的發(fā)生,當(dāng)中機(jī)制可能與HBx可影響部分miRNA表達(dá)譜,使相應(yīng)抑癌基因失活或癌基因活化相關(guān)[26]。miR-132在HBV相關(guān)的肝癌組織中表達(dá)明顯低于癌旁正常組織,且miR-132與HBx呈負(fù)相關(guān),進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),HBx可誘導(dǎo)miR-132啟動(dòng)子甲基化,降低miR-132表達(dá),使miR-132未能促進(jìn)抑癌基因PTEN表達(dá),達(dá)到激活A(yù)kt/mTOR信號(hào)通路發(fā)揮抑制肝癌細(xì)胞增殖和誘導(dǎo)凋亡作用[27]。miR-16家族被認(rèn)為是一類抑癌基因,可靶向調(diào)控細(xì)胞周期蛋白CCND1、c-myc表達(dá),使細(xì)胞停留于G1期,在HepG2、SK-HEP-1及Huh7肝癌細(xì)胞模型中miR-16均表現(xiàn)為低表達(dá)狀態(tài)[28]。
5miRNA與肝癌遺傳易感性的相關(guān)性
單核苷酸多態(tài)性(SNP)是遺傳變異中最常見的類型,位于miRNA種子區(qū)的SNP可發(fā)生于初級(jí)miRNAs(primary miRNAs)、前體miRNAs(precursormiRNAs) 及miRNAs的生成過程中,引起的miRNA結(jié)構(gòu)異?;蚴フ{(diào)控靶基因能力,不能正常發(fā)揮原有功能。Alqahtani等研究發(fā)現(xiàn)miR-149 rs2292832、miR-30a rs1358379、miR-196a2 rs11614913等多種miRNAs SNPs與HBV-HCC發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)[29]。李蕓等[30]研究發(fā)現(xiàn),miR-146a G>C(rs2910164)與中國原發(fā)性肝癌患者的遺傳易感性密切相關(guān),攜帶G等位的個(gè)體有更高的發(fā)病風(fēng)險(xiǎn)。
綜上所述,在HBV誘導(dǎo)的致癌過程中,涉及到細(xì)胞周期活動(dòng)、細(xì)胞凋亡、原癌基因、抑癌基因、免疫系統(tǒng)等方面調(diào)控異常。miRNA是具有重要調(diào)控作用的小分子RNA。目前研究已發(fā)現(xiàn)一系列能調(diào)控HBV感染→HL→HCC發(fā)生發(fā)展相關(guān)miRNA,為乙肝相關(guān)肝癌診斷、治療提供了新思路。
參考文獻(xiàn):
[1] Gregory RI, Chendrimada TP, Shiekhattar R. MicroRNA Protocols[M]. Totowa: Humana Press, 2006:33.
[2] Melo CA, Melo SA. Non-coding RNAs and Cancer[M] . New York:Springer Press, 2014:5-24.
[3]Xie KL, Zhang YG, Liu J, et al. MicroRNAs associated with HBV infection and HBV-related HCC[J]. Theranostics, 2014,4(12):1176.
[4] 吳孟超,湯釗猷,葉勝龍,等.HBV/HCV相關(guān)性肝細(xì)胞癌抗病毒治療專家共識(shí)[J].中華肝臟病雜志,2013,33(2):76-81.
[5] 鮑春旸.HBV復(fù)制相關(guān)miRNA表達(dá)譜的分析及miR-192的生物學(xué)功能研究[D].中國人民解放軍軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院,2011.
[6] Wang Y, Jiang L, Ji X, et al. Hepatitis B Viral RNA Directly Mediates Down-regulation of the Tumor Suppressor MicroRNA miR-15a/miR-16-1 in Hepatocytes[J]. J Biol Chem, 2013,288(25):18484-18493.
[7] Qiu L, Fan H, Jin W, et al. R-122-induced down-regulation of HO-1 negatively affects miR-122-mediated suppression of HBV. Biochem Biophys Res Commun[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2010,398(4):771-777.
[8] 莊鵬,曾慧瓊,王湘郴,等.miR-122在乙肝相關(guān)性肝癌發(fā)病機(jī)制中的作用[J].熱帶醫(yī)學(xué)雜志,2015,15(6):724-727,863.
[9] 陳素玲,李芳,柴海云,等.微小RNA-122在HBV感染慢性肝臟疾病中的表達(dá)及其臨床意義[J].中華實(shí)驗(yàn)和臨床感染病雜志(電子版),2015,9(6):68-72.
[10] Qayum AA, Paranjape A, Abebayehu D, et al. IL-10-Induced miR-155 Targets SOCS1 To Enhance IgE-Mediated Mast Cell Function[J]. J Immunol, 2016,196(11):4457.
[11] 邢同京,徐洪濤,余文慶,等.微小RNA在不同時(shí)期慢性乙型肝炎病毒感染者的異常表達(dá)譜及其臨床意義[J].中華傳染病雜志,2013,31(10):586-592.
[12] Xu D, Han Q, Hou Z, et al. miR-146a negatively regulates NK cell functions via STAT1 signaling[J]. Cell Mol Immunol, 2016,14(8):712.
[13] Wang S, Zhang X, Ju Y, et al. MicroRNA-146a feedback suppresses T cell immune function by targeting Stat1 in patients with chronic hepatitis B[J]. J Immunol, 2013,191(1):293.
[14] Bian X, Si Y, Zhang M, et al. Down-expression of miR-152 lead to impaired anti-tumor effect of NK via upregulation of HLA-G[J]. Tumour Biol, 2016,37(3):3749-3756.
[15] Chen R, Wu JC, Liu T, et al. MicroRNA profile analysis in the liver fibrotic tissues of chronic hepatitis B patients[J]. J Dig Dis, 2017,18(2):115-124.
[16] 付玲珠,鄭婷,張永生.TGF-β/Smad信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路與肝纖維化研究進(jìn)展[J].中國臨床藥理學(xué)與治療學(xué),2014,19(10):1189-1195.
[17] 李杰克,方冠,葉偉康,等.TGF-β、HNF-4α在原發(fā)性肝癌中的表達(dá)及臨床意義[J].肝膽胰外科雜志,2017,29(3):224-228.
[18] 鄧國孫,李鎮(zhèn)伽.miRNA-10a對(duì)小鼠肝纖維化細(xì)胞增殖及TGFβ1/Smads信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路表達(dá)的影響[J].海軍醫(yī)學(xué)雜志,2017,38(3):222-225.
[19] 戈宏焱,張仕華.基質(zhì)金屬蛋白酶與肝纖維化關(guān)系的研究進(jìn)展[J].臨床肝膽病志,2017,33(3):563-566.
[20] 李耕.miRNA-155靶向調(diào)控MMP-9對(duì)肝纖維化的作用及機(jī)制[J].檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)與臨床,2017,14(8):1090-1091.
[21] 陳征,劉曉峰,麻樹霖. microRNA-375在肝纖維化中的作用及其調(diào)控信號(hào)通路的研究[J].國際消化病雜志,2016,36(6):355-359.
[22] Xie KL, Zhang YG, Liu J, et al. MicroRNAs Associated With HBV Infection And HBV-related HCC[J]. Theranostics, 2014,4(12):1176.
[23] 俞今晶,來純?cè)?c-Myc在腫瘤中的表達(dá)及功能[J].國際腫瘤學(xué)雜志,2017,44(4):278-280.
[24] 謝聰,任廣立,許蔓春,等. miR-146a在HepG2.2.15細(xì)胞中對(duì)c-Myc基因表達(dá)影響的研究[J].重慶醫(yī)學(xué),2017,46(17):2030-2033.
[25] Na Z, Wu J, Xiang W, et al. Low-level expression of microRNA-375 predicts poor prognosis in hepatocellular carcinoma[J]. Tumor Biology, 2016,37(2):2145-2152.
[26] 申曉賀,衛(wèi)志遠(yuǎn),倪兵,等.HBV病毒X蛋白誘導(dǎo)肝細(xì)胞miRNA表達(dá)譜變化的研究[J].免疫學(xué)雜志,2016,32(3):185-191.
[27] Wei X, Tan C, Tang C, et al. Epigenetic repression of miR-132 expression by the hepatitis B virus x protein in hepatitis B virus-related hepatocellular carcinoma[J]. Cell Signal, 2013,25(5):1037-1043.
[28] 伍剛,鄭波,黃銳,等.HBx下調(diào)miR-16家族表達(dá)促進(jìn)肝癌細(xì)胞惡性轉(zhuǎn)化[J].中國普外基礎(chǔ)與臨床雜志,2017,24(4):412-419.
[29] Alqahtani AA, Alanazi MR, Nazir N, et al. Association of Single Nucleotide Polymorphisms in MicroRNAs with Susceptibility to Hepatitis B Virus Infection and HBV-related Liver Complications: A Study in a Saudi Arabian Population[J]. J Viral Hepat, 2017,24(12):1132-1142.
[30] 李蕓,李兵勝,張衛(wèi)芳,等.miR-146a G>C基因多態(tài)性與中國原發(fā)性肝癌患者遺傳易感性的Meta分析[J].中國臨床藥理學(xué)與治療學(xué),2017,22(7):779-786.