肖潤梅,肖晨曦
(1.湖北省中西醫(yī)結(jié)合醫(yī)院 藥劑科,湖北 武漢 430015;2.武漢大學(xué) 生命科學(xué)院,湖北武漢 430072)
細(xì)胞色素P450(cytrochrome P450,CYP450)是肝臟進(jìn)行Ⅰ相生物轉(zhuǎn)化的主要酶系[1-3]。對該酶的誘導(dǎo)或抑制可導(dǎo)致與其聯(lián)用的藥物清除率和毒性改變[4-6]。檳榔是僅次于酒精、煙草和咖啡,被廣泛使用的習(xí)慣性嗜好品,世界上約10%的人在使用它[7-8]。檳榔中含有多種嘧啶生物堿,檳榔堿占總生物堿的0.30%~0.63%[9-10]。檳榔堿對CYP450酶活性的影響未見報道,探討檳榔堿對肝臟代謝功能的影響,在藥理學(xué)、毒理學(xué)研究中有重要意義[11-13]。
氫溴酸檳榔堿(arecoline hydrobromide,AH)(上海阿拉丁試劑,批號:20140618,含量≥98%),6β-羥基睪酮、安非他酮、羥基安非他酮對照品購自美國Cayman Chemical公司,睪酮和甲苯磺丁脲(德國Dr.Ehrenstorfer公司),4-羥基甲苯磺丁脲、6-羥基氯唑沙宗和去甲基右美莎芬購自加拿大TRC公司,混合人肝微粒體(human liver microsome,HLM)(美國BD Gentest公司),右美莎芬(加拿大Toronto Research Chemicals Inc公司),非那西?。ㄉ虾lfa Aesar公司),對乙酰氨基酚(日本TCI公司),BCA蛋白試劑盒(美國Thermo Scientific公司),乙腈和甲醇色譜純(德國Merck公司)。
HPLC-20A高效液相色譜儀、LC-MS-8040三重四級桿液質(zhì)聯(lián)用儀購自日本島津公司,Vortex-5型漩渦震蕩器(天津儀器廠),BP211D電子天平(德國Sartorius公司),5417 R小型臺式高速冷凍離心機(jī)(德國Eppendorf公司),P型移液器(法國Gilson公司)。
以探針底物在HLM溫孵體系中對應(yīng)特征代謝物的生成量,評價各種CYP450亞型酶的活性,并在本實驗室現(xiàn)有基礎(chǔ)上優(yōu)化反應(yīng)條件[14]。本實驗探針底物的濃度選擇參考文獻(xiàn)[7-8],其濃度值均在其表觀Km值附近。各探針底物在HLM中的最佳溫孵反應(yīng)條件見表1。
CYP3A4、2E1、1A2、2C9探針底物代謝物的色譜檢測在柱溫25℃,進(jìn)樣量60μl條件下進(jìn)行,其他檢測條件見表2。CYP2D6、CYP2B6探針底物代謝物的色譜檢測在柱溫40℃,流速0.2 ml/min,進(jìn)樣量10μl條件下進(jìn)行線性梯度洗脫;質(zhì)譜條件:霧化器3 L/min,干燥氣15.0 L/min,離子噴霧電壓4.5 kV,碰撞氣壓力230 kPa,DL管溫度和加熱模塊溫度分別為250和400℃,進(jìn)樣量10μl;掃描方式為多反應(yīng)檢測;其他檢測條件見表3。
表1 探針底物在HLM中的最佳溫孵反應(yīng)條件
分別對 CYP1A2、2E1、3A4、2C9、2D6、2B6 6種亞型酶的特異性代謝產(chǎn)物的專屬性、線性、回收率和精密度測定進(jìn)行方法學(xué)考察。
數(shù)據(jù)分析采用SPSS 13.0統(tǒng)計軟件,計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,用方差分析,兩兩比較用LSD-t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
表2 CYP3A4、2E1、1A2、2C9探針底物代謝物的檢測條件
表3 CYP2D6、2B6探針底物代謝物的檢測條件
實驗得到各代謝產(chǎn)物的專屬性色譜分離圖(空白肝微粒體溫孵液對照組色譜圖、各探針底物的特異性代謝產(chǎn)物標(biāo)準(zhǔn)品溶液色譜圖,以及各探針底物經(jīng)肝微粒體代謝后產(chǎn)生代謝產(chǎn)物的色譜圖)。實驗結(jié)果表明,各代謝產(chǎn)物測定專屬性良好,代謝產(chǎn)物峰無明顯干擾。見圖1。
圖1 加入不同探針底物的HLM孵育體系
HLM各代謝產(chǎn)物的標(biāo)準(zhǔn)曲線、精密度和相對回收率見表4。在檢測范圍內(nèi),各代謝產(chǎn)物檢測方法準(zhǔn)確度較高,檢測精密度良好。
與對照組比較,CYP1A2、2E1、3A4、2C9、2D6、2B6 6種CYP450亞型的酶活性出現(xiàn)輕微抑制現(xiàn)象,抑制現(xiàn)象隨著AH濃度的升高而增強(qiáng),當(dāng)濃度達(dá)到160μmol/L時,HLM中CYP3A4、2D6、2B6、2E1、1A2和2C9的酶活性分別降低17.6%、36.2%、38.3%、35.0%、14.6%和 35.4%。見圖2。
表4 HLM各代謝產(chǎn)物的標(biāo)準(zhǔn)曲線、精密度和相對回收率
圖2 AH對HLM中CYP450酶活性的體外影響
目前,已確定人類CYP450基因有18個家族、44個亞家族,已有57種人類CYP450酶亞型被克隆和確認(rèn)[9],尤其是肝臟中的CYP2D6、2C、1A2、2E1、2B6、3A4,分別占 1.0%、20.0%、120.%、6.0%、0.2%~6.0%和29.0%人肝總量,分別參與30%、17%、4%、2%、2%~10%和50%藥 物 代謝[10]。實驗發(fā)現(xiàn)中、低劑量(80和40μmol/L)AH對體外HLM中6種CYP450亞型酶活性僅有極弱抑制作用,且抑制作用隨AH濃度的升高而增強(qiáng)。當(dāng)AH為160μmol/L時,對HLM中CYP2D6、2B6、2E1和2C9酶活性的抑制率分別為36.2%、38.3%、35.0%和35.4%。體外HLM孵育結(jié)合混合探針底物法測定酶活性是一個常用的評價藥物對CYP450酶抑制作用的方法[11]。HLM的實驗結(jié)果比動物肝微粒體更接近人體內(nèi)實驗,體外研究不僅能提供各CYP450酶對底物藥物的代謝狀況,而且可以排除體內(nèi)其他因素的干擾,具有明確、高通量、操作簡便等優(yōu)點,在為整體實驗提供理論依據(jù)方面具有較大優(yōu)勢。但是體外實驗的結(jié)果在選擇探針底物的種類和濃度、受試物濃度設(shè)定、酶蛋白濃度,以及微粒體來源等因素方面有可能受到影響,不同實驗的結(jié)果可能會有一定的差異[12],因此在討論藥物可能存在的基于CYP450酶代謝相互作用風(fēng)險時,應(yīng)當(dāng)結(jié)合體內(nèi)實驗進(jìn)行評價。本實驗提示,中、低劑量組咀嚼檳榔可能不會造成嚴(yán)重代謝相互作用。本實驗室前期研究表明,灌胃AH能誘導(dǎo)大鼠肝臟CYP2E1的體內(nèi)活性,但隨口服AH劑量增加,出現(xiàn)不同程度的抑制,且抑制作用隨AH濃度的升高而增強(qiáng)[13],與本實驗高劑量組結(jié)果一致。古桂花等[14]從病理學(xué)及細(xì)胞生物學(xué)的角度探討檳榔堿對小鼠肝細(xì)胞凋亡的影響,發(fā)現(xiàn)檳榔堿組的肝細(xì)胞及其周邊有炎癥,嚴(yán)重的還會導(dǎo)致細(xì)胞凋亡。肝臟是藥物代謝的主要器官,這可能是檳榔嗜好者使用CYP1A2、2E1、3A4、2C9、2D6、2B6 6個CYP450亞型酶的底物藥物時,存在代謝相互作用的風(fēng)險,其具體機(jī)制有待進(jìn)一步研究。
[1] LYNCH T, PRICE A. The effect of cytochrome P450 metabolism on drug response, interactions, and adverse effects[J]. Am Fam Physician, 2007, 76(3): 391-396.
[2] WANG B, YANG S, HU J, et al. Multifaceted interaction of the traditional Chinese medicinal herb schisandra chinensis with cytochrome P450-mediated drug metabolism in rats[J].Ethnopharmacol, 2014, 155(3): 1473-1482.
[3] 謝海棠, 賈元威, 譚志榮, 等, 豆腐果苷對人肝微粒體CYP450酶體外抑制作用研究[J]. 中國醫(yī)院藥學(xué)雜志, 2011, 31(17):1404-1407.
[4] 冷欣夫, 邱星輝. 細(xì)胞色素P450酶系的結(jié)構(gòu)、功能與應(yīng)用前景[M]. 北京: 科學(xué)出版社, 2001.
[5] MüLLER D J, BRANDL E J, HWANG R, et al. The AmpliChip?CYP450 test and response to treatment in schizophrenia and obsessive compulsive disorder: a pilot study and focus on cases with abnormal CYP2D6 drugmetabolism[J]. Genet Test Mol Biomarkers, 2012, 16(8): 897-903.
[6] 石亮, 張遠(yuǎn)冬, 王二豪, 等. 沒食子酸及其氧化產(chǎn)物對大鼠肝微粒體CYP3A的抑制效應(yīng)[J]. 第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報, 2014, 36(2):130-134.
[7] GUPTA P C, WARNAKULASURIYA S. Global epidemiology of areca nut usage[J]. Addict Biol, 2002, 7(1): 77-83.
[8] TSAI J F, CHUANG L Y, JENG J E. et al. Betel quid chewing as a risk factor for hepatocellular carcinoma: a case-control study[J]. Br J Cancer, 2001, 84(5): 709-713.
[9] YANG X, ZHANG B, MOLONY C, et al. Systematic genetic and genomic analysis of cytochrome P450 enzyme activities in human liver[J]. Genome Res, 2010, 20(8): 1020-1036.
[10] WARREN B L, BELLWARD G D. Cytochrome P450 dependent biotransformation: some recent developments concluding remarks: the multiplicity of cytochromes P-450[J]. Proc West Pharmacol Soc, 1980(23): 7-9.
[11] UTSUNOMIYA H, TILAKARATNE W M, OSHIRO K, et al.Extracellular matrix remodeling in oral submucous fibrosis: its stage-specific modes revealed by immuuohisto chemistry and in situhybfidization[J]. Oral Pathol Med, 2005, 34(8): 498-507.
[12] TSAI C H, YANG S F, LEE S S, et al. Augmented heme oxygenase-1 expression in areca quid chewing-associated oral submucousfibrosis[J]. Oral Dis, 2009, 15(4): 281-286.
[13] TILAKARATNE W M, KLINIKOWSKI M F, SAKU T, et al. Oral submucous·fibrosis: review on aetiology and pathogenesis[J].Oral Oncol, 2005, 42(6): 561-568.
[14] 古桂花, 曾薇, 胡虹. 檳榔粗提物及檳榔堿對小鼠肝細(xì)胞凋亡的影響[J]. 中藥藥理與臨床, 2013, 29(2): 56-58.