常雙雙 馬貴達 張敏紅 石玉祥 馮京海
(1.中國農業(yè)科學院北京畜牧獸醫(yī)研究所,動物營養(yǎng)學國家重點實驗室,北京 100193;2.河北工程大學農學院,邯鄲 056021)
目前,關于高溫環(huán)境對肉雞影響的研究多集中在32 ℃以上[1],而實際生產中低于32 ℃的偏熱環(huán)境對肉雞帶來的影響也不容小覷,有研究表明偏熱環(huán)境對肉雞生理、行為、物質代謝、腸道菌群和生長性能等方面產生不利影響[2-4]。飼養(yǎng)密度同樣是家禽養(yǎng)殖行業(yè)關注的焦點,它不僅直接影響肉雞活動空間[5],還間接影響雞舍環(huán)境溫度以及雞只生長性能、行為、盲腸菌群及福利水平等[6-8]。研究表明短鏈脂肪酸(short chain fatty acid,SCFA)可降低腸道pH,達到促進益生菌的生長增殖并抑制特定病原菌定植的目的[9-11]。另外有研究表明腸道菌群與腦腸肽的分泌是相互作用的[12],如雙歧桿菌四聯(lián)活菌片可顯著升高血管活性腸肽(vasoactive intestinal peptide,VIP)的含量,降低P物質(SP)的含量[13]?,F(xiàn)已發(fā)現(xiàn)5-羥色胺(5-hydroxytryptamine,5-HT)、VIP和SP等腦腸肽與胃腸活動相關[14]。但是目前針對偏熱環(huán)境下飼養(yǎng)密度對肉雞盲腸菌群、揮發(fā)性脂肪酸以及血清腦腸肽的影響研究尚未見報道,因此本試驗旨在研究偏熱環(huán)境下飼養(yǎng)密度對肉雞盲腸菌群、揮發(fā)性脂肪酸以及血清腦腸肽的影響,以期為肉雞科學的飼養(yǎng)管理提供理論依據。
試驗采用單因素設計,選取22日齡健康、體重相近愛拔益加(AA)肉雞144只,隨機分成3個組,每組6個重復,每個重復單籠飼養(yǎng)。將3個組的肉雞轉入環(huán)境溫度為21 ℃、相對濕度為60%的環(huán)境控制艙適應7 d。29日齡時開始正式試驗,單個雞籠飼養(yǎng)面積為0.64 m2,飼養(yǎng)密度分別設置為每籠6只(公母各占1/2,Ⅰ組)、每籠8只(公母各占1/2,Ⅱ組)和每籠10只(公母各占1/2,Ⅲ組),環(huán)境溫度為31 ℃,相對濕度為60%,試驗條件維持至試驗結束,共計14 d。試驗在動物營養(yǎng)學國家重點實驗室環(huán)境控制艙內進行,溫度、相對濕度自動控制(精度分別為±1 ℃和±7%),無風,24 h光照。
采用玉米-豆粕型飼糧,所用飼糧為參照NRC(1994)營養(yǎng)需要配制的粉狀配合飼糧,基礎飼糧組成及營養(yǎng)水平見表1。
試驗肉雞均采用單層平養(yǎng),所選用籠具為本實驗室研發(fā)的單層平養(yǎng)籠具[15],自由采食與飲水,常規(guī)免疫。
1.4.1 血液采集與指標測定
分別于試驗第7天、第14天,每組隨機選取6只肉雞(公母各占1/2,每個重復1只肉雞),肉雞采用靜脈采血,靜置2 h后,3 000 r/min低溫離心10 min吸取血清,置于-80 ℃冰箱保存。
采用酶聯(lián)免疫吸附測定(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)法測定血清中5-HT、VIP和SP的含量。
1.4.2 盲腸內容物的采集與指標測定
1.4.2.1 盲腸內容物的采集
分別于試驗第7天、第14天,每組隨機選取6只肉雞(公母各占1/2,每個重復1只肉雞)剪斷頸靜脈處死,全身消毒后剖開腹腔,分離腸道,結扎回盲交界處,剪下盲腸迅速移至超凈工作臺,用無菌剪刀剪開腸壁,收集盲腸內容物,將同一組的6個樣品迅速混勻(用于揮發(fā)性脂肪酸測定的無需混勻),裝置于無菌離心管中,液氮速凍,-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
表1 基礎飼糧組成及營養(yǎng)水平(飼喂基礎)
1)預混料為每千克飼糧提供 Premix provided the following per kg of the diet:VA 10 000 IU,VD33 400 IU,VE 16 IU,VK32.0 mg,VB12.0 mg,VB26.4 mg,VB62.0 mg,VB120.012 mg,泛酸鈣 pantothenic acid calcium 10 mg,煙酸 nicotinic acid 26 mg,葉酸 folic acid 1 mg,生物素 biotin 0.1 mg,膽堿 choline 500 mg,Zn (ZnSO4·7H2O) 40 mg,F(xiàn)e (FeSO4·7H2O) 80 mg,Cu (CuSO4·5H2O) 8 mg,Mn (MnSO4·H2O) 80 mg,I (KI) 0.35 mg,Se (Na2SeO3) 0.15 mg。
2)計算值 Calculated values。
1.4.2.2 揮發(fā)性脂肪酸含量測定
稱取2 g左右盲腸食糜置于離心管中,然后準確加入5 mL超純水,旋渦振蕩3~5 min,5 000×g離心10 min;取上清液1 mL置于塑料安培管中,加入0.2 mL的25%偏磷酸溶液,蓋緊蓋子,振蕩搖勻,并置冰水浴中30 min;10 000×g離心10 min,取上清液,上機測定盲腸內容物中乙酸、丙酸和丁酸的含量。
1.4.2.3 DNA的提取
采用Fast DNATMSPIN Kit For Soil提取樣品基因組DNA。
1.4.2.4 細菌16S rDNA片段的PCR擴增
以樣品基因組DNA為模板,采用細菌通用引物GC-338F和518R擴增樣品16S rDNA高變區(qū)序列,引物信息見表2。
表2 引物信息
PCR擴增體系(50 μL)為:10×PCR buffer 5 μL;dNTP Mixture(2.5 mmol/L)3.2 μL;ExTaq(5 U/μL)0.4 μL;GC-338F(20 μmol/L)1 μL;518R(20 μmol/L)1 μL;模板DNA 50 ng;補ddH2O至50 μL。PCR擴增程序為:94 ℃預變性5 min;94 ℃變性1 min,55 ℃復性45 s,72 ℃延伸1 min,30個循環(huán);最終72 ℃延伸10 min。PCR產物采用OMEGA公司DNA Gel Extraction Kit純化回收。PCR儀為Biometra公司生產的T-gradient,凝膠成像儀為Bio-Rad公司的Gel-Doc2000凝膠成像系統(tǒng)。
1.4.2.5 PCR產物的變性梯度凝膠電泳(DGGE)分析
取10 μL PCR的產物進行DGGE分析。采用變性梯度為35%~55%、濃度為7%的聚丙烯酰胺凝膠在1×TAE緩沖液中150 V、60 ℃下電泳5 h。DGGE完畢后,采用銀染法染色,步驟如下:1)固定液(乙醇50 mL、冰醋酸2.5 mL,定容至500 mL)固定15 min;2)Milli-Q純水清洗20 s和2 min各1次;3)銀染液(硝酸銀1 g、37%甲醛0.75 mL,定容至500 mL)染色15 min;4)Milli-Q純水清洗20 s和2 min各1次;5)顯色液(氫氧化鈉7.5 g、37%甲醛2.5 mL,定容至500 mL)顯色5~7 min;6)最后用終止液(乙醇50 mL、冰醋酸2.5 mL,定容至500 mL)終止反應。
1.4.2.6 DGGE圖譜中優(yōu)勢電泳條帶的序列測定
DGGE凝膠條帶回收后,以338F/518R為引物進行PCR擴增,PCR產物純化后連接到pMD18-T載體上,轉化至DH5α感受態(tài)細胞中,篩選陽性克隆測序。測序結果與GenBank中的序列進行比對,得到條帶所代表的細菌類型。每個回收條帶選取3個克隆進行序列測定。
試驗數據使用SAS 9.2統(tǒng)計分析軟件進行單因素分析(one-way ANOVA),采用Duncan氏法進行多重比較,P<0.05為差異顯著;采用軟件Quantity One分析DGGE圖譜多樣性。
2.1.1 肉雞盲腸菌群PCR-DGGE擴增指紋圖譜分析
由圖1和圖2可知,試驗第7天和第14天,偏熱環(huán)境下飼養(yǎng)密度對肉雞盲腸菌群條帶數產生影響,且Ⅱ組肉雞盲腸菌群條帶數高于Ⅰ組和Ⅲ組。由表3可知,同一階段,偏熱環(huán)境下不同飼養(yǎng)密度間肉雞盲腸菌群相似性指數為44.3%~61.0%,其中Ⅰ組和Ⅱ組間盲腸菌群相似性最低僅為44.3%,Ⅱ組和Ⅲ組間盲腸菌群結構相似性最高僅為61.0%,這表明偏熱環(huán)境下Ⅱ組肉雞盲腸菌群豐富度最高,此外Ⅱ組與Ⅰ組間比Ⅲ組與Ⅰ組間盲腸菌群相似性低,即Ⅱ組與Ⅰ組間比Ⅲ組與Ⅰ組間盲腸菌群結構差異大。
2.1.2 肉雞盲腸菌群結構多樣性分析
由表4可知,偏熱環(huán)境下飼養(yǎng)密度對肉雞盲腸菌群結構多樣性產生一定的影響。試驗第7天,Ⅰ組肉雞盲腸菌群香農指數和辛普森指數分別為2.20和0.88,Ⅱ組分別為2.36和0.90,Ⅲ組分別為2.12和0.87。試驗第14天,Ⅰ組肉雞盲腸菌群香農指數和辛普森指數分別為2.59和0.92,Ⅱ組分別為2.70和0.93,Ⅲ組分別為2.57和0.92。由此可見,偏熱環(huán)境下Ⅱ組肉雞盲腸菌群多樣性高于其他2個組。
2.1.3 肉雞盲腸特異性菌群和共性菌群分析
從肉雞盲腸菌群16S rDNA V3區(qū)PCR-DGGE指紋圖譜中分別割膠回收了1條特異性條帶和4條共性條帶,由圖1和表5可知,試驗第7天和第14天3個組肉雞盲腸內容物中均檢測出共性條帶2號菌條帶[單形擬桿菌(Bacteroidesuniformis)]、3號菌條帶(Eisenbergiellamassiliensis)、4號菌條帶(Clostridiumstraminisolvens)和5號菌條帶(Ruminococcusfaecis),僅Ⅱ組肉雞盲腸內容物中檢測出1號菌條帶[普通擬桿菌(Bacteroidesvulgatus)]。
圖譜左側條帶編號2、5和6分別為試驗第7天Ⅱ組、Ⅲ組和Ⅰ組,圖譜右側條帶編號2、5和6分別為試驗第14天Ⅱ組、Ⅲ組和Ⅰ組。
The left band numbered 2, 5, 6 were groups Ⅱ, Ⅲ and Ⅰ on the 7thday of the experiment, and the right band numbered 2, 5, 6 were groups Ⅱ, Ⅲ and Ⅰ on the 14thday of the experiment, respectively.
圖1肉雞盲腸內容物菌群DGGE圖譜
Fig.1 DGGE profiles of microflora in cecal contents of broilers
圖2 3個組間盲腸菌群條帶數比較
在5個測序結果中,條帶序列大部分分布于厚壁菌門(Firmicutes)和擬桿菌門(Bacteroidetes),與GenBank數據庫中細菌的相似度均在92%以上。
由表6可知,試驗第7天和第14天,偏熱環(huán)境下飼養(yǎng)密度對肉雞盲腸揮發(fā)性脂肪酸(乙酸、丙酸和丁酸)含量的影響無顯著差異(P>0.05)。
由表7可知,試驗第7天,偏熱環(huán)境下Ⅱ組肉雞血清5-HT含量顯著高于Ⅰ組(P<0.05),而偏熱環(huán)境下飼養(yǎng)密度對肉雞血清VIP和SP含量的影響無顯著差異(P>0.05);試驗第14天,偏熱環(huán)境下飼養(yǎng)密度對肉雞血清5-HT、VIP和SP含量的影響無顯著差異(P>0.05)。
腸道菌群是肉雞體內環(huán)境中不可缺少的組成部分,在平衡狀態(tài)時,對其宿主是有益無害的[16]。而家禽在生長發(fā)育過程中,環(huán)境應激可改變家禽腸道菌群結構[17]。研究報道,持續(xù)偏熱環(huán)境(26和31 ℃)下肉雞盲腸細菌條帶數和菌群多樣性下降[4];在3周齡時飼養(yǎng)密度顯著影響肉雞消化道菌群變化,變化最顯著的是嗉囊和盲腸菌群(相似性分析的R值分別為0.77和0.69,P≤0.05);6周齡時飼養(yǎng)密度對嗉囊和盲腸菌群的影響存在顯著差異(相似性分析的R值分別為0.52和0.27,P≤0.05)[18]。本試驗研究表明偏熱環(huán)境下Ⅱ組肉雞盲腸菌群豐富度和相似性高于其他2個組,進而說明偏熱環(huán)境下0.64 m2飼養(yǎng)8只雞的飼養(yǎng)密度有利于肉雞盲腸菌群的生長。
研究表明,肉雞盲腸內主要以厚壁菌門為主,其次為變形菌門、擬桿菌門和放線菌門[19-20]。隨著飼養(yǎng)密度增加,即飼養(yǎng)密度高于450 cm2/只時,籠養(yǎng)蛋雞十二指腸中有益菌(Lactobacillusgastricus和Lactobacillusalvi)消失,并對腸道菌群平衡產生不利影響[21]。本試驗研究發(fā)現(xiàn),Ⅱ組肉雞盲腸中檢測出特異性菌群Bacteroidesvulgatus,而另外2個組并未發(fā)現(xiàn)。Bacteroidesvulgatus屬于擬桿菌門,擬桿菌門是腸道革蘭氏陰性菌中數量最大的一類細菌,產降解植物細胞壁的酶,參與植物細胞壁的降解,從而與腸道的消化功能有關[4]。
表3 戴斯系數比較PCR-DGGE圖譜的相似性
表4 肉雞盲腸菌群結構多樣性分析
表5 DGGE圖譜中條帶的基因片段序列比對
SCFA是腸道菌群的主要代謝產物,主要包括乙酸、丙酸和丁酸,是由纖維和抗性淀粉(指在小腸中難以被消化的淀粉及其降解產物)在腸道中經厭氧菌發(fā)酵產生[22]。SCFA可降低腸道pH達到促進益生菌生長增殖并抑制特定病原菌定植的目的[9-11]。另有研究表明,腸道菌群以SCFA為介質作用于腸嗜鉻細胞,影響腸道重要信息分子5-HT的合成和釋放[23]。而本試驗研究發(fā)現(xiàn),偏熱環(huán)境下飼養(yǎng)密度對肉雞盲腸揮發(fā)性脂肪酸含量的影響無顯著差異。
表6 肉雞盲腸揮發(fā)性脂肪酸含量
同行數據肩標無字母或相同字母表示差異不顯著(P>0.05),不同字母表示差異顯著(P<0.05)。下表同。
In the same row, values with no letter or the same letter superscripts mean no significant difference (P>0.05), while with different letter superscripts mean significant difference (P<0.05). The same as below.
表7 肉雞血清腦腸肽含量
腦腸肽可以直接作用于中樞神經系統(tǒng),由血液所攜帶的腦腸肽是胃腸道向腦內傳遞的重要化學信號,這些信號物質可以通過腦干的最后區(qū)直接入腦而作用于腦干迷走復合體,進而影響迷走神經的傳出功能,參與胃腸運動、食欲及攝食功能的調節(jié)[24]。
5-HT又名血清素(serotonin),是一種神經遞質,也是重要的腸道生理調節(jié)器,主要由腸內分泌細胞產生,參與調解腸道運動和感覺,直接或間接刺激腸道分泌。研究報道,在生命早期缺乏菌群的時候,會導致血漿色氨酸水平的升高[25]。還有研究表明雙歧桿菌則可以影響色氨酸的代謝,口服嬰兒雙歧桿菌可誘導大鼠神經遞質多巴胺、5-HT血漿濃度升高[26]。VIP是一種非膽堿能非腎上腺素能抑制系統(tǒng)的神經遞質,對胃腸活動起抑制性調節(jié)作用,引起全胃腸環(huán)形肌松弛[27],還能改善腸黏膜組織微循環(huán)及內環(huán)境,為腸上皮細胞提供營養(yǎng)物質和氧,并清除過多的氧自由基等有害物質[28],減少脂多糖對腸黏膜的損傷,促進有益菌的定植使菌群比例恢復正常[29]。SP本身又是一種速激肽,可增加胃腸蠕動,強烈促消化道平滑肌收縮,加強結腸的集團推進運動,刺激小腸、結腸黏膜分泌水和電解質,使胃腸道的血管擴張,通透性增高,血漿外滲,并參與炎癥過程和免疫反應[30]。
本試驗研究發(fā)現(xiàn),偏熱環(huán)境下Ⅱ組肉雞血清5-HT含量顯著高于Ⅰ組,而偏熱環(huán)境下飼養(yǎng)密度對肉雞血清VIP和SP含量的影響無顯著差異,這可能與肉雞腸道菌群的變化相關,有待進一步試驗探究。
綜上所述,偏熱環(huán)境下飼養(yǎng)密度可改變肉雞盲腸菌群多樣性與結構以及血清腦腸肽5-HT的含量,但不影響盲腸揮發(fā)性脂肪酸的含量,各檢測指標間的確切關系有待進一步探究。
① 偏熱環(huán)境下Ⅱ組肉雞盲腸菌群豐富度和多樣性高于Ⅰ組和Ⅲ組,同時該組飼養(yǎng)密度有利于盲腸Bacteroidesvulgatus的定植。
② 偏熱環(huán)境下飼養(yǎng)密度對肉雞盲腸揮發(fā)性脂肪酸含量的影響無顯著差異。
③ Ⅱ組肉雞血清5-HT含量顯著高于Ⅰ組,但偏熱環(huán)境下飼養(yǎng)密度對血清VIP和SP含量的影響無顯著差異。
[1] DHABHAR F S,SAUL A N,DAUGHERTY C,et al.Short-term stress enhances cellular immunity and increases early resistance to squamous cell carcinoma[J].Brain,Behavior,and Immunity,2010,24(1):127-137.
[2] 胡春紅,張敏紅,馮京海,等.偏熱刺激對肉雞休息行為、生理及生產性能的影響[J].動物營養(yǎng)學報,2015,27(7):2070-2076.
[3] 蘇紅光,張敏紅,馮京海,等.持續(xù)冷熱環(huán)境對肉雞生產性能、糖代謝和解偶聯(lián)蛋白mRNA表達的影響[J].動物營養(yǎng)學報,2014,26(11):3276-3283.
[4] 彭騫騫,王雪敏,張敏紅,等.持續(xù)偏熱環(huán)境對肉雞盲腸菌群多樣性的影響[J].中國農業(yè)科學,2016,49(1):186-194.
[5] 白水莉.飼養(yǎng)密度和環(huán)境富集材料對肉雞福利狀況、生產性能和肉品質的影響[D].碩士學位論文.揚州:揚州大學,2009.
[6] TüRKYILMAZ M K.The effect of stocking density on stress reaction in broiler chickens during summer[J].Turkish Journal of Veterinary & Animal Sciences,2008,32(1):31-36.
[7] BUIJS S,KEELING L,RETTENBACHER S,et al.Stocking density effects on broiler welfare:identifying sensitive ranges for different indicators[J].Poultry Science,2009,88(8):1536-1543.
[8] 趙乾宇.飼養(yǎng)密度對籠養(yǎng)蛋雞小腸組織結構和盲腸細菌種群的影響[D].碩士學位論文.大慶:黑龍江八一農墾大學,2015.
[9] ESWARAN S,MUIR J,CHEY W D.Fiber and functional gastrointestinal disorders[J].The American Journal of Gastroenterology,2013,108(5):718-727.
[10] SILK D B A,DAVIS A,VULEVIC J,et al.Clinical trial:the effects of a trans-galactooligosaccharide prebiotic on faecal microbiota and symptoms in irritable bowel syndrome[J].Alimentary Pharmacology & Therapeutics,2009,29(5):508-518.
[11] FUKUDA S,TOH H,HASE K,et al.Bifidobacteria can protect from enteropathogenic infection through production of acetate[J].Nature,2011,469(7331):543-547.
[12] 白宇,胡云霞,陳俊偉,等.細菌-腦-腸軸理論體系的建立[J].東南大學學報(醫(yī)學版),2016 35(5):781-785.
[13] 傅麗霞.雙歧桿菌四聯(lián)活菌片治療腹瀉型腸易激綜合征患者的療效及對血清腦腸肽水平的影響[J].中國微生態(tài)學雜志,2017,29(2):179-181.
[14] 陳倩.隔藥灸臍法對脾氣虛型腸易激綜合征患者血清腦腸肽影響的臨床研究[D].碩士學位論文.濟南:山東中醫(yī)藥大學,2004.
[15] 張敏紅,蘇紅光,馮京海,等.采集用于建立肉雞生活環(huán)境舒適性評價模型數據的方法和專用裝置:中國,CN103404447A[P].2015-11-18.
[16] 馬治宇.乳酸菌及其培養(yǎng)液對肉雞生產性能、腸道菌群及腸道結構的影響[D].碩士學位論文.楊凌:西北農林科技大學,2008.
[17] BURKHOLDER K M,THOMPSON K L,EINSTEIN M E,et al.Influence of stressors on normal intestinal microbiota,intestinal morphology,and susceptibility toSalmonellaenteritidiscolonization in broilers[J].Poultry Science,2008,87(9):1734-1741.
[18] GUARDIA S,KONSAK B,COMBES S,et al.Effects of stocking density on the growth performance and digestive microbiota of broiler chickens[J].Poultry Science,2011,90(9):1878-1889.
[19] GONG J H,SI W D,FORSTER R J,et al.16S rRNA gene-based analysis of mucosa-associated bacterial community and phylogeny in the chicken gastrointestinal tracts:from crops to ceca[J].FEMS Microbiology Ecology,2006,59(1):147-157.
[20] 王麗鳳.益生菌L.plantarumP-8對肉雞腸道菌群、腸道免疫和生長性能影響的研究[D].博士學位論文.呼和浩特:內蒙古農業(yè)大學,2014.
[21] 于江明,王秋菊,劉勃麟,等.不同飼養(yǎng)密度對籠養(yǎng)蛋雞十二指腸腸道菌群的影響[J].動物營養(yǎng)學報,2016,28(3):899-907.
[22] 徐萬里,陸高,梁世杰,等.短鏈脂肪酸介導的菌群-宿主互動與腸易激綜合征的研究進展[J].世界華人消化雜志,2015,23(36):5815-5822.
[23] YANO J M,YU K,DONALDSON G P,et al.Indigenous bacteria from the gut microbiota regulate host serotonin biosynthesis[J].Cell,2015,161(2):264-276.
[24] WANG L J,ZHOU L,TIAN R.Role of the area postrema of medullaoblongata in the regulation of canine interdigesting migrating motorcomple[J].Chinese Medical Journal,2002,115(3):384-388.
[25] DESBONNET L,GARRETT L,CLARKE G,et al.The probioticBifidobacteriainfantis:an assessment of potential antidepressant properties in the rat[J].Journal of Psychiatric Research,2008,43(2):164-174.
[26] DESBONNET L,GARRETT L,CLARKE G,et al.Effects of the probioticBifidobacteriuminfantisin the maternal separation model of depression[J].Neuroscience,2010,170(4):1179-1188.
[27] 崔莉紅.胃腸激素對結腸運動的調節(jié)作用[J].醫(yī)學綜述,2008,14(3):380-382.
[28] 吳美玉,胡團敏.血管活性腸肽與消化系疾病的研究進展[J].世界華人消化雜志,2012,20(16):1453-1457.
[29] CAMPOS-SALINAS J,CAVAZZUTI A,O’VALLE F,et al.Therapeutic efficacy of stable analogues of vasoactive intestinal peptide against pathogens[J].Journal of Biological Chemistry,2014,289(21):14583-14599.
[30] 陳曉敏,張燕華,吳躍龍.腸易激綜合征結腸黏膜P物質和血管活性腸肽變化的研究[J].實用臨床醫(yī)藥雜志,2008,12(11):31-33.