何 龍,馬 曦
(動物營養(yǎng)學國家重點實驗室,中國農(nóng)業(yè)大學動物科技學院,北京 100193 )
除環(huán)境和遺傳因素之外,營養(yǎng)是制約哺乳動物從受精卵、出生到發(fā)育成熟的重要因素。在動物生長發(fā)育和細胞代謝過程中,存在著一系列的營養(yǎng)攝取、消化、吸收、代謝、轉(zhuǎn)運和利用的進程和調(diào)節(jié),使機體實現(xiàn)內(nèi)部穩(wěn)態(tài)和適應不斷變化的外部環(huán)境。
包括人在內(nèi)的高等動物都是由細胞組成,為了深入揭示生命本質(zhì)和營養(yǎng)的意義,后續(xù)將以細胞作為研究靶標。從生物進化的角度看,隨著外界營養(yǎng)因素的不斷變化,動物機體進化出一套完善的營養(yǎng)感應(Nutrition Sensing)和營養(yǎng)應答(Nutrition Response)反饋系統(tǒng)。該系統(tǒng)首先讓細胞隨時感知外界營養(yǎng)水平:當營養(yǎng)素充足時,細胞感知并獲取養(yǎng)分來加速自身的生長和代謝;當營養(yǎng)素缺乏時,細胞通過調(diào)節(jié)自身代謝水平,激活自噬來達到養(yǎng)分的循環(huán)利用從而維持其存活;如果一種或多種營養(yǎng)素濃度過高或過低時,由于過高的代謝水平而誘發(fā)營養(yǎng)應激(Nutrition Stress),導致細胞損傷甚至死亡。近年來,細胞自噬的發(fā)現(xiàn)及其反饋調(diào)節(jié)機制的闡明為營養(yǎng)感應和營養(yǎng)應答反饋系統(tǒng)提供了全新模式。細胞自噬作為細胞感應營養(yǎng)水平的關(guān)鍵應答通路,對維持細胞的存活至關(guān)重要。當自噬被異常激活會引起細胞損傷,最終導致細胞死亡。營養(yǎng)應答和營養(yǎng)應激是細胞感知營養(yǎng)水平做出的2種截然不同的反應。營養(yǎng)應答是當細胞感知營養(yǎng)水平變化、激活下游的信號通路并最終達到細胞代謝平衡的過程。而營養(yǎng)應激是細胞由于外界的營養(yǎng)素水平異常引起代謝異常并最終引起細胞應激,此時細胞的代謝穩(wěn)態(tài)被打破,細胞受到損傷。
本綜述首次將營養(yǎng)感應、營養(yǎng)應答和營養(yǎng)應激的概念進行整合,并以自噬機理作為核心進行機理闡述,為開展營養(yǎng)與機體的互作研究提供新的思路和理論依據(jù)。
營養(yǎng)感應是細胞感知外界養(yǎng)分并做出反應的起始階段,其中最重要的2個營養(yǎng)感應復合體是AMPK和mTORC1。
AMPK復合體是細胞感知能量水平的關(guān)鍵性激酶,它的激活或抑制可以控制細胞對能量物質(zhì)的代謝。AMPK復合體由α、β和γ亞基組成,而γ亞基可以直接結(jié)合細胞質(zhì)中的AMP、ADP或ATP來控制AMPK的磷酸化水平。當細胞代謝水平不足或者葡萄糖缺乏時,AMP/ATP 或 ADP/ATP上升,從而激活AMPK通路加速分解代謝來增加ATP的合成;相反,當ATP充足時,AMPK受到抑制,細胞的分解代謝減慢[1]。所以,肌肉和肝臟的糖原分解和葡萄糖攝取受AMPK的嚴格調(diào)控以達到細胞能量水平的平衡。
mTORC1是細胞感受氨基酸和生長因子水平的一個關(guān)鍵激酶復合體,控制著蛋白合成、細胞分裂和分化[2]。當氨基酸水平充足時,mTORC1被激活,細胞生長加速。目前,研究發(fā)現(xiàn)谷氨酰胺、精氨酸和亮氨酸可分別通過ARF1[3]、CASTOR1[4]及SESTRIN[5]直接激活mTORC1,這3種氨基酸水平對mTORC1活性的調(diào)控至關(guān)重要。
細胞自噬作為一個獨立的研究領(lǐng)域,于2016年獲得諾貝爾生理學或醫(yī)學獎。為適應多變和復雜的外界環(huán)境,生物體進化出一套通過降解自身物質(zhì)來達到養(yǎng)分暫時供給的系統(tǒng),該系統(tǒng)在抵御微生物感染、清除異物方面也起到重要的作用。
自噬體和溶酶體是自噬的2個關(guān)鍵細胞器。當外界營養(yǎng)缺乏時,自噬被激活,參與自噬體組裝的蛋白被招募到自噬前體膜上,隨著膜的延伸和彎曲,特異或非特異地將內(nèi)容物包裹并形成閉合的雙層膜結(jié)構(gòu)。自噬體形成后,便會和溶酶體融合形成自噬溶酶體;溶酶體中的酸性水解酶可以降解自噬體包裹的內(nèi)容物,并進行回收利用[6]。在自噬的起始階段,ULK1和VPS34作為兩大關(guān)鍵的激酶復合體參與招募自噬相關(guān)蛋白ATGs和脂類的合成,從而實現(xiàn)膜的延伸。ULK1復合體由ULK1、ATG13、FIP200組 成。VPS34則 由 VPS34、P150、ATG14、Beclin1或UVRAG組成[7]。自噬體和溶酶體的融合過程稱為自噬體的成熟,該過程需要SNARE蛋白的參與,介導自噬體膜和溶酶體膜的接觸和融合,對于自噬體內(nèi)容物的降解至關(guān)重要。
自噬的水平受外界營養(yǎng)素水平的調(diào)控。AMPK和mTORC1作為細胞內(nèi)營養(yǎng)的中樞感受器,可以直接調(diào)節(jié)自噬的水平,從而達到調(diào)控細胞代謝的目的。
當細胞的能量水平不足時,AMPK感知能量水平不足而被激活,而AMPK可以直接作用ULK1和VPS34復合體來誘導自噬。同時,AMPK的激活可以抑制mTORC1的活性,從而通過TSC1/TSC2來誘導自噬[8]。研究表明,AMPK的激活可以直接磷酸化VPS34 和BECLIN1,加速自噬的起始和膜的延伸[9]。
當總氨基酸缺乏,特別是谷氨酰胺、精氨酸和亮氨酸缺乏時,mTORC1不能被招募到溶酶體膜上,其活性被抑制。有研究表明,mTORC1的激活依賴于其定位到溶酶體膜上[10]。mTORC1通過CASTOR、RagGTPase等蛋白最終招募到溶酶體膜,溶酶體膜上的Rheb活化mTORC1,從而激活mTORC1[11],此轉(zhuǎn)位過程依賴于谷氨酰胺、精氨酸和亮氨酸。
營養(yǎng)應激是由于外界特殊的營養(yǎng)環(huán)境、細胞內(nèi)代謝的失衡甚至紊亂引起的應激。自噬作為細胞感應營養(yǎng)物質(zhì)的下游通路,可以通過循環(huán)利用營養(yǎng)素來維持胞內(nèi)代謝的相對平衡。但是當細胞的養(yǎng)分過多或者過少造成應激導致自噬過度激活時,會造成細胞器損傷甚至細胞自噬性死亡。
研究發(fā)現(xiàn),在饑餓狀態(tài)下,細胞會出現(xiàn)區(qū)別于壞死和凋亡的第3種細胞死亡類型,這種死亡的細胞中含有大量的自噬體、溶酶體及內(nèi)質(zhì)網(wǎng)碎片。當人為激活自噬時,這種細胞死亡也會發(fā)生,且通過抑制細胞自噬可以緩解細胞死亡。當動物體或者細胞處于饑餓狀態(tài)時間過長,自噬處于持續(xù)激活,自噬性死亡就會發(fā)生。在臨床上,也發(fā)現(xiàn)了脂肪肝病人中的自噬性肝細胞死亡。通過高通量測序發(fā)現(xiàn),Na+-K+-ATPase是造成自噬性壞死的關(guān)鍵蛋白,而抑制該蛋白的活性能緩解自噬性壞死[11]。
以豬的營養(yǎng)研究為例,如何更加均衡、有效地為哺乳和斷奶階段仔豬供給營養(yǎng)是養(yǎng)殖領(lǐng)域的一個尚未解決的問題。初生仔豬生長發(fā)育快,營養(yǎng)素需求量更大。同時,該階段仔豬很容易出現(xiàn)營養(yǎng)應激,且易出現(xiàn)較高的死亡率。仔豬在出生和斷奶時,營養(yǎng)應激會誘導自噬。研究自噬的發(fā)生和應激以及仔豬死亡的關(guān)系有利于闡明仔豬死亡的生理學基礎(chǔ),從而為靶向性地開發(fā)功能性營養(yǎng)活性物質(zhì)和營養(yǎng)干預措施奠定理論基礎(chǔ)。
[1] He L, Eslamfam S, Ma X, et al. Autophagy and the nutritional signaling pathway[J]. Front Agr Sci Eng, 2016, 3(3): 222-230.
[2] Blenis J. TOR, the gateway to cellular metabolism, cell growth,and disease[J]. Cell, 2017, 171(1): 10-13.
[3] Jewell J L, Kim Y C, Russell R C,et al. Differential regulation of mTORC1 by leucine and glutamine[J]. Science, 2015,347(6218): 194-198.
[4] Saxton R A, Chantranupong L, Knockenhauer K E,et al.Mechanism of arginine sensing by CASTOR1 upstream of mTORC1[J]. Nature, 2016, 536(7615): 229-233.
[5] Wolfson R L, Chantranupong L, Saxton R A,et al. Sestrin2 is a leucine sensor for the mTORC1 pathway[J]. Science, 2016,351(6268): 43-48.
[6] Ma X, Zhang S, He Let al. MTORC1-mediated NRBF2 phosphorylation functions as a switch for the class III PtdIns3K and autophagy[J]. Autophagy, 2017, 13(3):592-607.
[7] Lin M G, Hurley J H. Structure and function of the ULK1 complex in autophagy[J]. Curr Opin Cell Biol, 2016, 39: 61-68.
[8] Menon S, Dibble C C, Talbott G,et al. Spatial control of the TSC complex integrates insulin and nutrient regulation of mTORC1 at the lysosome[J]. Cell, 2014, 156(4): 771-785.
[9] Kim J, Kim Y C, Fang C,et al. Differential regulation of distinct Vps34 complexes by AMPK in nutrient stress and autophagy [J]. Cell, 2013, 152(1): 290-303.
[10] Raiborg C, Schink K O, Stenmark H. Suppressing mTORC1 on the lysosome[J]. EMBO J, 2017: e201797469.
[11] Yang H, Jiang X, Li B,et al. Mechanisms of mTORC1 activation by RHEB and inhibition by PRAS40[J]. Nature,2017, 552(7685): 368.