冉君, 李小明
近端肢體無(wú)力是肌病患者最常見(jiàn)的臨床表現(xiàn),臨床上糖原累積病(glycogen storage diseases,GSDs)和肌營(yíng)養(yǎng)不良(muscular dystrophies,MDs)患者均可表現(xiàn)為亞急性發(fā)病,逐漸加重,雙側(cè)對(duì)稱性近端肢體無(wú)力、疲勞、行走困難及血清肌酶升高。GSDs是以糖原代謝異常為特點(diǎn)的一組遺傳異質(zhì)性的代謝疾病[1],可引起劇烈疲勞,運(yùn)動(dòng)不耐受等癥狀,主要包括糖原合成、分解或酵解異常。GSDs主要分為肝臟型和肌肉型,而肌糖原過(guò)多是肌肉型GSDs的標(biāo)志[2]。臨床上,代謝性肌病具有診斷難、治療難的特點(diǎn),易被誤診為多發(fā)性肌炎、肌營(yíng)養(yǎng)不良、重癥肌無(wú)力等疾病。MDs是一組臨床及基因異質(zhì)性的神經(jīng)肌肉疾病,主要表現(xiàn)為近端肢體無(wú)力、肌萎縮、腱反射消失等[3]。肌肉MR成像是輔助診斷肌病的重要手段,肌病急性期或亞急性期可表現(xiàn)為相對(duì)對(duì)稱的局灶或彌漫性肌肉水腫。因此,各型肌病急性期或亞急性期在T2WI抑脂序列上均可表現(xiàn)為高信號(hào)[4],受累肌肉組織在T1WI上可表現(xiàn)為局灶性或彌漫性脂肪沉積,肌營(yíng)養(yǎng)不良患者常表現(xiàn)為肌肉組織的脂肪沉積[5,6],但是脂肪沉積并不是肌營(yíng)養(yǎng)不良的特異性表現(xiàn),它還可以見(jiàn)于其他類型肌病患者。MR相關(guān)新技術(shù)可能有助于對(duì)臨床表現(xiàn)相似的不同類型肌病進(jìn)行鑒別診斷。近年來(lái),定量T2值及擴(kuò)散加權(quán)成像(diffusion weighted imaging,DWI)技術(shù)被廣泛應(yīng)用于炎性肌病[7-9]。DWI作為一種特殊的MR成像技術(shù),能提供組織內(nèi)水分子的運(yùn)動(dòng)情況[9,10]。本研究通過(guò)對(duì)比分析正常對(duì)照組、GSDs組和MDs組患者的肌肉組織水分子的擴(kuò)散特點(diǎn),旨在探討雙指數(shù)模型DWI在診斷和鑒別診斷GSDs與MDs中的價(jià)值。
1.病例資料
2013年9月至2015年10月,根據(jù)Bohan和Peter診斷標(biāo)準(zhǔn)[11]結(jié)合患者血清學(xué)檢查、臨床表現(xiàn)、肌肉活檢結(jié)果,搜集明確診斷為肌病的19例患者,主要臨床癥狀為對(duì)稱性的相對(duì)近端肢體無(wú)力,血清肌酸激酶水平升高,其中GSDs患者7例(GSDs組,男5例,女2例,年齡18~42歲,平均28歲),MDs患者12例(MDs組,男6例,女6例,年齡20~51歲,平均29歲);同時(shí)搜集11例健康志愿者作為對(duì)照組,男7例,女4例,年齡24~40歲,平均32歲。本研究獲得本院道德倫理委員會(huì)的審核通過(guò),所有參與者檢查前均簽署知情同意書。
2.檢查方法
采用 GE 3.0T磁共振掃描儀(Signa Excite HD,Milwaukee,WI)行MRI檢查,8通道torso體線圈,取仰臥位對(duì)患者的雙側(cè)大腿行MRI掃描。掃描參數(shù):軸面T1WI序列,TR 420 ms,TE 7.2 ms;T2WI+FS序列,TR 3600 ms,TE 85.5 ms;平面回波DWI,TR 3600 ms,TE 85.5 ms,激勵(lì)次數(shù)為3次,矩陣128×128,層厚6 mm,視野38 cm×38 cm,b值包括0、20、50、100、200、300、400、500、600、700、800、900、1000、1100、1200 s/mm2,在MADC工作站(ADW4.4,GE HealthCare)上測(cè)量ADC值。每例患者完成所有掃描大約需要20 min。
3.圖像分析
由兩位有5年以上工作經(jīng)驗(yàn)的放射科醫(yī)生在不知患者信息的情況下對(duì)所有圖像進(jìn)行分析。在T2WI(b=0 s/mm2)圖像基礎(chǔ)上手動(dòng)勾畫雙側(cè)大腿七塊肌肉(股直肌、股中間肌、股外側(cè)肌、股內(nèi)側(cè)肌、大收肌、半腱肌及股二頭肌長(zhǎng)頭)的ROI范圍(面積55~70 mm2),然后在雙指數(shù)ADC圖上復(fù)制同樣大小的ROI,根據(jù)同層面的T1WI圖保證每個(gè)ROI盡量避開(kāi)皮下脂肪、血管和骨頭。分別計(jì)算3組樣本的雙指數(shù)模型的相關(guān)參數(shù)(包括ADCstandard,ADCfast和ADCslow),ADCstandard是指b值從0~1200 s/mm2的平均值。
4.統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
采用SPSS 19.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。雙指數(shù)模型DWI的相關(guān)參數(shù)采用中位數(shù)和25%~75%的可信區(qū)間表示。采用非參數(shù)Kruskal-Wallis檢驗(yàn)比較三組間相關(guān)參數(shù)的差異。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
正常對(duì)照組與肌病組在年齡和性別上差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。對(duì)照組、GSDs和MDs三組右側(cè)大腿水腫肌群于b=0、20、300、600、1000 s/mm2上均表現(xiàn)為高信號(hào)(圖1)。病變肌肉組織與正常組織在偽彩圖上可見(jiàn)顏色分布的差異(圖2)。
正常對(duì)照組,所選肌肉的平均ADCstandard(H=11.944,P=0.063)、 ADCfast(H=1.968,P=0.923)和ADCslow(H=11.002,P=0.088)差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。正常對(duì)照組ADCstandard的平均值為1.68(1.54~1.79)×10-3mm2/s,GSDs組為1.48(1.36~1.63)×10-3mm2/s,MDs 組為1.60(1.48~1.70)×10-3mm2/s。對(duì)照組ADCslow的平均值為1.37(1.26~1.50)×10-3mm2/s,GSDs組為1.22(1.14~1.34)×10-3mm2/s,MDs組為1.34(1.23~1.48)×10-3mm2/s。正常對(duì)照組ADCfast的平均值為7.42(6.53~8.81)×10-3mm2/s,GSDs組為7.92(6.21~10.56)×10-3mm2/s,MDs組為8.06(6.02~12.50)×10-3mm2/s,三組間ADCstandard(H=19.748,P=0.000)和ADCslow(H=15.982,P=0.000)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,ADCfast差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(H=2.541,P=0.281)。對(duì)于三組ADCstandard的平均值,GSDs組水腫肌肉明顯低于對(duì)照組(P=0.000)和MDs組(P=0.034),GSDs組水腫肌肉的ADCslow平均值亦明顯低于對(duì)照組(P=0.000)和MDs組(P=0.003,圖3)。
近年來(lái),DWI的雙指數(shù)模型越來(lái)越多應(yīng)用于中樞神經(jīng)系統(tǒng),特別是診斷神經(jīng)系統(tǒng)疾病[12,13]。事實(shí)上,組織內(nèi)水分子的擴(kuò)散是一個(gè)非常復(fù)雜的過(guò)程,有學(xué)者通過(guò)研究提出,DWI雙指數(shù)模型應(yīng)該包括細(xì)胞內(nèi)和細(xì)胞外的成分[14,15]。多數(shù)研究認(rèn)為ADCslow指細(xì)胞內(nèi)水分子的擴(kuò)散而ADCfast則反映的是細(xì)胞外水分子的擴(kuò)散[16,17]。有學(xué)者利用DWI的不同b值進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)細(xì)胞內(nèi)和細(xì)胞外的確有兩種不同的表觀擴(kuò)散系數(shù),即慢速擴(kuò)散和快速擴(kuò)散[18]。筆者未檢索到利用雙指數(shù)模型DWI鑒別診斷炎性肌病的相關(guān)報(bào)道,同時(shí)本研究也證實(shí)了雙指數(shù)模型DWI非常有助于分析肌肉組織內(nèi)水分子的運(yùn)動(dòng)情況。
圖1 對(duì)照組、GSDs組和MDs組一側(cè)大腿肌群在不同b值下的DWI圖像。
圖2 單側(cè)大腿肌群經(jīng)工作站后處理得到的雙指數(shù)模型參數(shù)的偽彩圖。
本研究結(jié)果顯示雙指數(shù)模型DWI可用于研究肌肉組織。Daniel等[17]同樣利用雙指數(shù)模型DWI研究了人體運(yùn)動(dòng)前后肌肉組織的擴(kuò)散信號(hào)特點(diǎn),肌肉的ADC值反映了水分子在組織內(nèi)的運(yùn)動(dòng)情況,正常對(duì)照組肌肉的平均ADC值為1.68(1.54~1.79)×10-3mm2/s,稍高于Qi等[10]的研究結(jié)果,筆者分析造成這種差異的原因可能與掃描參數(shù)和樣本量的差異有關(guān)。本研究通過(guò)表觀擴(kuò)散系數(shù)雙指數(shù)模型對(duì)GSDs和MDs患者的水腫肌肉進(jìn)行定量分析研究,從而鑒別診斷GSDs和MDs。本研究中MDs組的ADCstandard值明顯高于GSDs組,造成這種差異的原因可能包括以下幾個(gè)方面:①ADCstandard值反映的是水分子通過(guò)毛細(xì)血管灌注、細(xì)胞間隙及穿過(guò)細(xì)胞膜的整體情況,ADCstandard值的差異反映了這兩種肌病炎性程度不同,盡管他們?cè)赥2WI上均表現(xiàn)為水腫信號(hào),本研究結(jié)果提示MDs患者的炎性水腫程度可能高于GSDs;②在肌病的一系列病理變化中,炎癥水腫和脂肪沉積可同時(shí)存在于肌病組織中,造成GSDs組的ADCstandard值明顯低于MDs組的原因可能是因?yàn)镚SDs患者更容易出現(xiàn)脂肪沉積[19, 20]。Qi等[10]通過(guò)研究發(fā)現(xiàn)在肌病的病理過(guò)程中,肌肉組織內(nèi)脂肪的沉積可以減少水的含量并限制水分子的擴(kuò)散,同時(shí)有研究發(fā)現(xiàn)肌肉組織脂肪沉積的含量越多,組織的ADC值越低,脂肪細(xì)胞可以較密實(shí)地填充在組織內(nèi)從而導(dǎo)致組織內(nèi)自由水含量減少;③對(duì)肌病的病理進(jìn)行分析,學(xué)者們發(fā)現(xiàn)伴隨有炎性浸潤(rùn)、纖維化的退變及再生的肌纖維呈彌散分布[21,22]。不同表型肌病的ADCstandard值的差異提示肌纖維退化和再生的無(wú)規(guī)律性,因?yàn)镈WI的表觀擴(kuò)散系數(shù)和肌纖維的方向也具有相關(guān)性[23]。
圖3 三組間ADCstandard 、ADCslow、ADCfast值比較示意圖。a) ADCstandard 值比較示意圖(★差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義); b) ADCslow值比較示意圖(★差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義); c) ADCfast值比較示意圖,三組間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
值得一提的是,本研究結(jié)果顯示GSDs組的ADCslow值明顯低于MDs組。本研究更進(jìn)一步證實(shí)了ADCslow值可以鑒別MDs和GSDs,GSDs患者的ADCslow值明顯低于MDs,基于水分子的擴(kuò)散具有區(qū)室差異,組織ADCslow值與細(xì)胞內(nèi)水分子的狀態(tài)和含量有關(guān),造成這種差異的原因可能是GSDs的肌纖維內(nèi)沉積了糖原空泡[24],造成細(xì)胞內(nèi)水分子的容積減少并限制了自由水分子的移動(dòng)。另一種解釋是糖原分子沉積在細(xì)胞內(nèi),從而使水分子以結(jié)合態(tài)的形式存在[2],從而影響了ADCslow值。肌營(yíng)養(yǎng)不良蛋白連接細(xì)胞膜構(gòu)成細(xì)胞骨架,在細(xì)胞膜的穩(wěn)定性中具有重要作用[3]。肌營(yíng)養(yǎng)不良的細(xì)胞膜受損,導(dǎo)致細(xì)胞通透性增加,可使細(xì)胞內(nèi)水分子和其他小分子含量增加。因此,ADCstandard和ADCslow值可聯(lián)合起來(lái)鑒別診斷GSDs與MDs。本研究發(fā)現(xiàn)三組的ADCfast值差異不具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,這與Liu等[25]認(rèn)為乳腺良性腫瘤和惡性腫瘤的ADCfast值差異不具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義相一致。
本研究的主要不足是病例數(shù)相對(duì)較少,推斷結(jié)果的穩(wěn)定性值得商榷,我們將收集更多的病例進(jìn)行后續(xù)研究;另一不足之處在于沒(méi)有利用DWI的單指數(shù)模型進(jìn)行對(duì)照研究,單指數(shù)模型DWI可能也具有較高的價(jià)值,此外,本研究對(duì)每類肌病的發(fā)展程度沒(méi)有進(jìn)行詳盡地描述。
[1] Angelin Ci.State of the art in muscle glycogenoses[J].Acta Myol,2010,29(2):339-342.
[2] Ribeiro WP,Valberg SI,Pagan JD,et al.The effect of varying dietary starch and fat content on serum creatine kinase activity and substrate availability in equine polysaccharide storage myopathy[J].J Vet Intern Med,2004,18(6):887-894.
[3] Guiraud S,Aartsma-Rus A,Vieira NM,et al.The pathogenesis and therapy of muscular dystrophies[J].An Rev Genomics Hum Genet,2015,16(7):281-308.
[4] Kumar Y,Wadhwa V,Lauren P,et al.MR imaging of skeletal muscle signal alterations:systematic approach to evaluation[J].Eur J Radiol,2016,85(8):922-935.
[5] Bihan DL,Turner R,Douek P,et al.Diffusion MR imaging:clinical applications[J].AJR,1992,159(6):591-599.
[6] Bihan DL,Breton E,Lallemand D,et al.MR imaging of intravoxel incoherent motions:application to diffusion and perfusion in neurologic disorders[J].Radiology,1986,161(2):401-407.
[7] Yao L,Yip AL,Shrader JA,et al.Magnetic resonance measurement of muscle T2,fat-corrected T2and fat fraction in the assessment of idiopathic inflammatory myopathies [J].Rheumatology,2016,55(3):441-449.
[8] Ababneh Z,Beloeil H,Berde CB,et al.Biexponential parameterization of diffusion and T2relaxation decay curves in a rat muscle edema model:decay curve components and water compartments[J].Magn Reson Med,2005,54(3):524-531.
[9] Tuor UI,Kozlowski P,Del Bigio MR,et al.Diffusion- and T2-weighted increases in magnetic resonance images of immature brain during hypoxia-ischemia:transient reversal posthypoxia[J].Exp Neurol,1997,150(2):321-328.
[10] Qi J,Olsen NJ,Price RR,et al.Diffusion-weighted imaging of inflammatory myopathies:polymyositis and dermatomyositis[J].J Magn Reson Imaging,2008,27(1):212-217.
[11] Iaccarino L,Pegoraro E,Bello L,et al.Assessment of patients with idiopathic inflammatory myopathies and isolated creatin-kinase elevation[J].Auto Immun Highlights,2014,5(3):87-94.
[12] Schwarcz A,Ursprung Z,Berente Z,et al.In vivo brain edema classification:New insight offered by large b-value diffusion-weighted MR imaging[J].J Magn Reson Imaging,2007,25(1):26-31.
[13] Steier R,Aradi M,Pal J,et al.A biexponential DWI study in rat brain intracellular oedema[J].Eur J Radiol,2012,81(8):1758-1765.
[14] Dalakas MC,Hohlfeld R.Polymyositis and dermatomyositis[J].Lancet,2003,362(9388):971-982.
[15] Van Zijl PC,Moonen CT,Faustino P,et al.Complete separation of intracellular and extracellular information in NMR spectra of perfused cells by diffusion-weighted spectroscopy[J].Proc Natl Acad Sci USA,1991,88(8):3228-3232.
[16] Bihan DL,Breton E,Lallemand D,et al.Separation of diffusion and perfusion in intravoxel incoherent motion MR imaging[J].Radiology,1998,168(4):497-505.
[17] Daniel M.In vivo measurement of diffusion and pseudo-diffusion in skeletal muscle at rest and after exercise[J].Magn Reson Imaging,1995,13(2):193-199.
[18] Mulkern RV,Zengingonul HP,Robertson RL,et al.Multi-component apparent diffusion coefficients in human brain:relationship to spin-lattice relaxation[J].Magn Reson Med,2000,44(5):292-300.
[19] Gershen LD,Prayson BE,Prayson RA.Pathological characteristics of glycogen storage disease III in skeletal muscle[J].J Clin Neurosci,2015,22(10):1674-1675.
[20] Heinicke K,Dimitrov IE,Romain N,et al.Reproducibility and absolute quantification of muscle glycogen in patients with glycogen storage disease by13C NMR spectroscopy at 7Tesla[J].PloS One,2014,9(10):e108706.
[21] Bertini E,D'Amico A,Gualandi F,et al.Congenital muscular dystrophies:a brief review[J].Semin Pediatr Neurol,2011,18(4):277-288.
[22] McMillan AB,Shi D,Pratt SJ,et al.Diffusion tensor MRI to assess damage in healthy and dystrophic skeletal muscle after lengthening contractions[J].J Biomed Biotechnol,2011,2011:970726.
[23] Robertson RL,Ben-Sira L,Barnes PD,et al.MR line-scan diffusion-weighted imaging of term neonates with perinatal brain ischemia[J].AJNR,1999,20(9):1658-1670.
[24] Shin YS.Glycogen storage disease:clinical,biochemical,and molecular heterogeneity[J].Semin Pediatr Neurol,2006,13(2):115-120.
[25] Liu C,Liang C,Liu Z,et al.Intravoxel incoherent motion (IVIM) in evaluation of breast lesions:comparison with conventional DWI[J].Eur J Radiol,2013,82(12):e782-789.