蔣惠莉
(青海省西寧市第一人民醫(yī)院檢驗(yàn)科 青海 西寧 810000)
基因擴(kuò)增技術(shù)是分子生物學(xué)領(lǐng)域中非常重要的實(shí)驗(yàn)方法。近年來發(fā)展迅速,從最初采用凝膠電泳法對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行定性或半定量分析[1],到目前廣泛使用的根據(jù)熒光探針信號(hào)實(shí)時(shí)觀察和已知標(biāo)準(zhǔn)品來推算未知樣本拷貝量的實(shí)時(shí)熒光定量PCR法(qPCR)[2],現(xiàn)在已發(fā)展到可以對(duì)核酸的拷貝數(shù)進(jìn)行絕對(duì)定量的數(shù)字PCR(Digital PCR,dPCR)。數(shù)字PCR不依賴于擴(kuò)增曲線的循環(huán)閾值(CT)和標(biāo)準(zhǔn)曲線等參數(shù),與常規(guī)定量PCR技術(shù)相比,具有更高的重復(fù)性、靈敏性及準(zhǔn)確性[3-5]。本文主要從dPCR方法的原理,優(yōu)勢及其在醫(yī)學(xué)應(yīng)用方面進(jìn)行了闡述。
1999年,美國學(xué)者Kenneth Kinzler與Bert Vogelstein首次提出了“數(shù)字 PCR”的概念[6]。dPCR的基本原理大致分為三個(gè)步驟,第一步將PCR反應(yīng)體系分配到大量微小的反應(yīng)單元中,使每個(gè)微反應(yīng)單元中不包含或包含一個(gè)或多個(gè)拷貝的目標(biāo)分子,其目的是為了實(shí)行單分子模板擴(kuò)增。第二步,進(jìn)行擴(kuò)增反應(yīng),擴(kuò)增結(jié)束后檢測每個(gè)反應(yīng)單元熒光信號(hào)的有無。第三步,最終根據(jù)泊松分布原理,通過統(tǒng)計(jì)分析陽性反應(yīng)單元的個(gè)數(shù)與比例,計(jì)算出目的核酸序列的拷貝數(shù)[7]。根據(jù)對(duì)反應(yīng)體系的分配方式不同,數(shù)字PCR主要分為微流體芯片式數(shù)字PCR(cdPCR )和微滴式數(shù)字PCR(ddPCR )兩大類[7]。
dPCR采用終點(diǎn)熒光檢測和陽性反應(yīng)單元比例進(jìn)行定量分析,與qPCR相比較不需要標(biāo)準(zhǔn)品,也不需制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,實(shí)現(xiàn)真正意義上的絕對(duì)定量[1]。
dPCR在反應(yīng)體系分配的過程中,不僅使目的序列分配到每個(gè)反應(yīng)單元,同時(shí)其反應(yīng)抑制物也被被均勻分配到每個(gè)反應(yīng)單元,從而降低了抑制劑對(duì)反應(yīng)的干擾。所以,dPCR較適合檢測復(fù)雜樣品中核酸的絕對(duì)定量。
dPCR是將PCR反應(yīng)分割在數(shù)萬個(gè)獨(dú)立單元中進(jìn)行降低了抑制物影響,從而提高了檢測的靈敏度,可以精確地檢測出變化很小的目的序列。并且分割的獨(dú)立反應(yīng)單元數(shù)目越多,其靈敏度與準(zhǔn)確度也越高[2]。
隨著對(duì)癌癥的不斷認(rèn)識(shí),大量研究表明癌癥是由于癌基因及抑癌基因的突變、插入或缺失等的一種基因(染色體)異常變化引起的疾病[8]。篩查患者外周血中游離的循環(huán)腫瘤DNA(cell-free circulating tumor DNA,ctDNA),對(duì)發(fā)現(xiàn)早期腫瘤,及腫瘤的發(fā)展及復(fù)發(fā)進(jìn)行觀測有著重要的意義[9]。不過,循環(huán)腫瘤DNA含量低,通常與大量正常細(xì)胞同時(shí)存在,對(duì)檢測手段的靈敏度及抗干擾有著更高的要求。數(shù)字PCR的檢測靈敏度可達(dá)到0.0001%~0.001%[10],特別適合在復(fù)雜樣本中檢測稀有突變。Kinugasa H等學(xué)者利用dPCR技術(shù)對(duì)75例胰腺癌患者血清K-ras基因突變進(jìn)行分析,并將其結(jié)果與生存率進(jìn)行比較,ctDNA分析可作為檢測胰腺癌患者基因突變的一種非侵入性檢測方法,也可作為診斷胰腺癌和預(yù)測生存的新策略[11]。
產(chǎn)前診斷是優(yōu)生和預(yù)防缺陷兒的出生的非常重要的手段,通過羊水及母血清篩檢胎兒遺傳物質(zhì)是否有異常是目前產(chǎn)前篩查較長用的方法,尤其是無創(chuàng)產(chǎn)前診斷能夠更早、更快、更安全的進(jìn)行產(chǎn)前診斷。然而,胎兒游離DNA在母體血漿DNA占10%~20%[12],極低含量的胎兒游離 DNA混雜于大量母體DNA中[7],選擇合適的方法學(xué)尤為重要。dPCR可從高背景母體DNA中識(shí)別少量胎兒DNA分子,在介入性產(chǎn)前診斷及無創(chuàng)產(chǎn)前基因診斷胎兒非整倍體疾病、單基因病等方面都具有重要作用[13],而且能夠檢測到存在的嵌合體或污染母體DNA的信號(hào)[14]。Tsui NB等利用dPCR技術(shù)研究胎兒血友病突變基因,在12例樣本中準(zhǔn)確識(shí)別出7個(gè)具有突變基因的胎兒[15]。
目前,對(duì)病原微生物核酸的檢測,應(yīng)用于臨床多為實(shí)時(shí)熒光定量PCR,定量檢測需要依賴標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立,不同廠家及不同批次的標(biāo)準(zhǔn)品均有可能影響定量結(jié)果。數(shù)字PCR結(jié)果分析不需要標(biāo)準(zhǔn)曲線,結(jié)果重復(fù)性較好,并且其高靈敏的特點(diǎn)更加適用于對(duì)低拷貝的目的基因檢測。Sedlak RH等進(jìn)行了人類巨細(xì)胞病毒對(duì)造血細(xì)胞或器官移植患者的發(fā)病和死亡的研究,發(fā)現(xiàn)dPCR技術(shù)能夠更早的檢測到患者外周血中的巨細(xì)胞病毒,從而能盡早治療,減低移植失敗率[16]。
患者接受器官移植后自身免疫系統(tǒng)可能把移植器官當(dāng)做異物,引起排異反應(yīng)。傳統(tǒng)監(jiān)測指標(biāo)多數(shù)為檢測患者血液中各類蛋白、酶類、代謝物等濃度水平,其不能及時(shí)的評(píng)估早期器官移植的損傷[17]。由于器官移植也是基因組移植,對(duì)移植器官的游離DNA(graft-derived circulating cell-free DNA,GcfDNA)進(jìn)行監(jiān)測,可早期發(fā)現(xiàn)移植物損傷,從而早期干預(yù),改善移植患者的預(yù)后[17][18]。數(shù)字PCR可以快速地量化GcfDNA的百分比和絕對(duì)數(shù)量,這個(gè)過程不需要供體DNA,因此可以應(yīng)用于任何器官捐贈(zèng)者/受體對(duì)[17]。Schutz E等學(xué)者,使用液滴數(shù)字PCR(ddPCR)技術(shù)對(duì)115名肝移植患者血漿GcfDNA進(jìn)行監(jiān)測,研究結(jié)果表明GcfDNA的診斷敏感性和特異性分別為90.3%和92.9%,與傳統(tǒng)的常規(guī)肝功能檢查相比,在肝移植患者中對(duì)急性排斥反應(yīng)更為敏感[19]。Beck等研究者使用dPCR檢測GcfDNA,檢測出穩(wěn)定肝移植患者體內(nèi)GcfDNA的含量小于6.8%,穩(wěn)定腎移植患者小于2.5%,心移植小于3.4%[7][20]。
數(shù)字PCR的出現(xiàn)為分子生物學(xué)、微生物學(xué)等領(lǐng)域提供了新的實(shí)驗(yàn)方法,其應(yīng)用也越來越廣泛。但是,目前數(shù)字PCR由于每塊芯片的數(shù)萬個(gè)反應(yīng)單元都是對(duì)單一樣本分析,通量較低,故實(shí)驗(yàn)成本高[2]。另外,dPCR對(duì)較高濃度樣本檢測時(shí),當(dāng)數(shù)萬個(gè)檢測單元達(dá)到飽和,其絕對(duì)定量結(jié)果就不十分精準(zhǔn)。隨著對(duì)實(shí)驗(yàn)方法的不斷研究,dPCR技術(shù)會(huì)進(jìn)一步發(fā)展與完善,將有著更加廣闊的應(yīng)用前景。
[1]詹成,燕麗,王琳,等.數(shù)字PCR技術(shù)的發(fā)展和應(yīng)用[J].復(fù)旦學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版),2015,42(6):786-789.
[2]林彩琴,姚波.數(shù)字PCR技術(shù)進(jìn)展[J].化學(xué)進(jìn)展,2012,24(12):2415-2423.
[3]Hudecova I.Digital PCR analysis of circulating nucleic acids[J].Clinical Biochemistry,2015, 48(15):948.
[4]Hindson CM,Chevillet JR,Briggs HA, et al.Absolute quantification by droplet digital PCR versus analog realtime PCR[J].Nature Methods,2013,10(10):1003-1005.
[5]Maja.Comparison of droplet digital PCR and seminestedreal-time PCR for quantification of cellassociated HIV-1 RNA[J].PLoS One,2014;9(1) e85999.
[6]Vogelstein B,Kinzler KW.Digital PCR[J].Proc NatlAcad Sci USA,1999,96(16):9236-9241.
[7]胡思宏,鮑登克,萬紹貴.數(shù)字 PCR及其在現(xiàn)代醫(yī)學(xué)分子診斷中的應(yīng)用[J].中國生物化學(xué)與分子生物學(xué)報(bào),2017(9):861-866.
[8]莢德水.肝細(xì)胞癌基因組拷貝數(shù)畸變區(qū)域內(nèi)相關(guān)基因的功能及分子機(jī)理研究[D].上海市:復(fù)旦大學(xué),2012.
[9]Barakat FH,Luthra R,Yin CC,et al.Detection of nucleophosmin 1 mutations by quantitative real-time polymerase chain reaction versus capillary electrophoresis:a comparative study[J].Arch Pathol Lab Med,2011,135(8):994-1000.
[10]Deng X,Custer BS,Busch MP,et al.Simultaneous estimation of detection sensitivity and absolute copy number from digital PC R serial dilution [J].Comput Biol Chem,2017,68:1-5.
[11]Kinugasa H,Nouso K,Miyahara K,et al.Detection of k-ras gene mutation by liquid biopsy in patients with pancreatic cancer[J].Cancer,2015,121(13) :2271-2280.
[12]Papageorgiou EA,Patsalis PC.Non-invasive prenatal diagnosis of aneuploidies: New technologies and clinical applications[J].Genome Med,2012,4(5):46.
[13]耿娟,綜述,尹愛華.數(shù)字PCR在產(chǎn)前診斷中的應(yīng)用研究[J].中國產(chǎn)前診斷雜志,2016,8(1):54-58.
[14]Fan HC,Quake SR. Detection of aneuploidy with digital polymerase chain reaction[J].Anal Chem,2017,79(19):7576-7579.
[15]Tsui NB,Kadir RA,Chan KC.Noninvasive prenatal diagnosis of hemophilia by microfluidics digital PCR analysis of maternal plasma DNA[J].Blood,2011,117(13):3684-3691.
[16]Sedlak RH,Cook L,Cheng A,et al.Clinical utility of droplet for human cytomegalovirus[J].J Clin Microbiol,2014,52(8):2844-2848.
[17]Oellerich M,Walson PD,Beck J,et al.Graft-derived cell-free DNA as a marker of transplant graft injury[J].Ther Drug Monit,2016,38 Suppl 1: S75-S79.
[18]Beck J,Oellerich M,Schulz U.Donor-Derived Cell-Free DNA Is a Novel Universal Biomarker for Allograft Rejection in Solid Organ Transplantation[J].Transplant Proc.2015,47(8):2400-3.
[19]Schutz E,Fischer A,Beck J.Graft-derived cell-free DNA,a noninvasive early rejection and graft damage marker in liver transplantation:A prospective,observational,multicenter cohort study. PLoS Med. 2017,14(4):e1002286.
[20]Beck J,Bierau S,Balzer S,et al.Digital droplet PC R for rapid quantification of donor DNA in the circulation of transplant recipients as a potential universal biomarker of graft injury[J].Clin Chem,2013,59(12):1732-1741.