盛寶英,姜堯佳,李 瑩,任秀敏,教 偉,王增冕,田嘉瑩,吳佳歡,王 杰
(1.佳木斯大學附屬第一醫(yī)院神經內科,黑龍江 佳木斯 154003;2.佳木斯市中心醫(yī)院,黑龍江 佳木斯 154002)
Wnt/β-catenin信號調控對海馬區(qū)Aβ1-42誘導的神經干細胞損傷的影響①
盛寶英1,姜堯佳1,李 瑩1,任秀敏1,教 偉1,王增冕1,田嘉瑩1,吳佳歡1,王 杰2
(1.佳木斯大學附屬第一醫(yī)院神經內科,黑龍江 佳木斯 154003;2.佳木斯市中心醫(yī)院,黑龍江 佳木斯 154002)
目的:通過調控Wnt/β-catenin信號的表達以觀察其對β淀粉樣蛋白所誘導的海馬區(qū)神經干細胞損傷的影響。方法:通過Aβ1-42注射大鼠海馬區(qū)誘導神經干細胞損傷,實驗組同時注射Wnt3a激動Wnt/β-catenin信號表達,于5周后評價各組間認知功能水平并采用免疫組織化學法檢測各組間BrdU陽性細胞數。結果:Aβ1-42可致海馬區(qū)神經干細胞增殖水平降低,損傷后引起明顯認知功能障礙;Wnt/β-catenin信號激動可減輕Aβ1-42所誘導的神經干細胞損傷,促進神經干細胞增殖,并可改善認知功能。結論:Wnt/β-catenin信號上調可促進內源性NSCs的增殖分化,是治療阿爾茨海默病的途徑之一。
阿爾茨海默病;神經干細胞;Wnt/β-catenin;Aβ1-42;BrdU;增殖
海馬區(qū)神經細胞凋亡是引起阿爾茨海默病(Alzheimer’s disease,AD)的重要機制之一[1]。目前,AD的發(fā)病機制與病因仍處進一步研究之中,為大多學者所公認的重要機制之一是由于各種原因引起的β-淀粉樣蛋白(Aβ)代謝發(fā)生障礙而過度累積于腦組織中, 不僅引起膠質細胞的過度增生,而且進一步使Aβ相關的免疫級聯(lián)反應得到觸發(fā),進而造成神經元凋亡[2]。有研究顯示,Wnt/β-catenin信號的激活可以促進成體動物神經干細胞(Neural stem cells,NSCs)的增殖及向神經元分化[3]。因此,本研究利用Wnt/β-catenin信號激動劑Wnt3a調控Wnt/β-catenin表達,對比由Aβ1-42所誘導的海馬區(qū)神經干細胞損傷大鼠認知能力及內源性神經干細胞增殖水平的變化,探討AD的治療方法。
清潔級成年雄性Wistar大鼠40只,體重220~250g(佳木斯大學實驗動物中心);Y型電迷宮(張家港生物醫(yī)學儀器廠);恒溫培養(yǎng)箱(Sanyo公司);立體定向儀(上海光電儀器廠);垂直電泳槽(北京六一儀器廠);轉膜儀(德國GE公司);小鼠抗大鼠BrdU(Sigma公司);Aβ1-42(Sigma公司);Wnt3a(Peprotech公司);SABC試劑盒及DAB顯色液(博士德公司);β-Catenin抗體及其磷酸化抗體(Abcam公司)。
1.2.1 AD造模[4]:與實驗分組 40只大鼠隨機分為對照組10只、AD組15只及實驗組15只。其中對照組僅行麻醉,AD組及實驗組行AD造模。10%水合氯醛以0.2mL/kg為標準注射入大鼠腹腔進行麻醉;大鼠頭部固定于立體定位儀進行海馬定位[5];術區(qū)備皮、消毒后行顱骨開孔;微量加樣器垂直大腦表面刺入3.0mm,5μL聚態(tài)Aβ1-42以1μL /min速度注入,留針10min保證懸液彌散后撤針行切口縫合。造模后分籠飼養(yǎng)并連續(xù)5d給予青霉素腹腔注射3萬U/kg,1次/d。7d后于Y型電迷宮測試大鼠行為學改變,以學習和認知能力下降為AD造模成功標準。其后,實驗組海馬組織注入Wnt3a蛋白(100mmol/L)5μL,另以5μL生理鹽水注射入AD組海馬區(qū)。
1.2.2 行為學評定[6]:各組大鼠于術后5周分別進行Y型電迷宮測試行為學改變,評定3次結果取均值。
1.2.3 標本采集與實驗:腹腔麻醉大鼠后心臟灌注PBS及8 %多聚甲醛處死,斷頭取腦于光鏡下切取海馬區(qū)組織。-80℃冷凍每例部分海馬組織樣本,采用Western-blot法檢測β-Catenin蛋白表達情況,以GAPDH為內參照,使用Visionworks 6.3.3軟件對圖像灰度值進行比較分析;部分海馬組織樣本脫水、石蠟包埋后切片(5μm),進行BrdU(5-溴脫氧尿嘧啶核苷)免疫組化染色,隨機選取400倍光鏡下不交疊視野,計數BrdU陽性細胞(細胞內棕褐色染色顆粒),取4個視野均數進行比較分析。
各組大鼠實驗前學習與記憶能力無明顯差異(P>0.05)。術后5周各組間差異明顯,AD模型組大鼠評測顯示其學習與記憶能力同對照組比較顯著降低(P<0.01);實驗組大鼠學習與記憶能力同對照組比較明顯降低(P<0.05);實驗組大鼠學習與記憶能力明顯高于AD模型組(P<0.05),見表1。
表1 各組大鼠行為學測試結果
注:*、#、△為各組間比較,△、#P<0.05,*P<0.01。
圖1顯示Western blot檢測各組大鼠海馬組織中β-Catenin蛋白電泳條帶結果。AD模型組β-Catenin蛋白條帶與對照組比較可見β-Catenin蛋白表達減少,其顏色變淺且條帶變細;實驗組與對照組及AD模型組比較顯示,實驗組β-Catenin蛋白條帶顏色深且條帶寬,說明β-Catenin蛋白表達增多。
圖1 β-Catenin的免疫蛋白印記
圖2顯示光密度值分析結果。AD模型組與對照組比較統(tǒng)計學差異明顯(P<0.05),其β-Catenin相對光密度值明顯降低,表明Aβ1-42引起大鼠海馬組織中β-Catenin表達下調;實驗組與AD模型組比較統(tǒng)計學差異顯著(P<0.01),其β-Catenin相對光密度值顯著增加,表明Wnt3a使AD大鼠海馬組織中β-Catenin表達上調;實驗組與對照組間比較(P<0.05),也表明Wnt3a上調了β-Catenin的表達。
圖2 β-Catenin在海馬組織中的表達變化
(注:*、#、△為各組間比較,*、#P<0.05,△P<0.01。)
在細胞增殖周期S期BrdU被攝入細胞內,因此海馬組織中的BrdU染色細胞可以被定義為增殖期的神經干細胞。圖3免疫組化染色顯示,實驗組BrdU陽性細胞數較AD模型組及對照組均明顯增加(P< 0.05),說明WNT3a通過激活β-Catenin蛋白的表達促進NSCs的增殖分化;AD模型組與對照組比較,BrdU陽性細胞顯著減少(P< 0.05),提示Aβ1-42通過抑制Wnt/β-catenin信號的表達而抑制NSCs的增殖分化,見表2。
表2 各組大鼠海馬組織BrdU陽性細胞計數結果
注:*、#、△為各組間比較,*、#P<0.05,△P<0.01。
圖3 各組大鼠海馬組織BrdU染色結果(×400)
關于AD發(fā)病機制的研究中,目前廣為接受的是“β淀粉樣蛋白學說”[2]。研究表明,Aβ作為極強的神經毒性物質,其代謝發(fā)生異常而致大量累積于神經系統(tǒng),可能是AD發(fā)生和發(fā)展的始動因素[7]。并且近年有相關研究表明,在由Aβ所介導的神經元損傷進程中,Wnt/β-catenin信號通路可能具有重要作用[8]。
Wnt基因自被發(fā)現以來,目前在哺乳動物體內共發(fā)現19種Wnt 基因亞型。在多種Wnt亞型中,Wnt3a是影響神經干細胞分化的重要亞型,其參與經典的Wnt信號傳導通路(Wnt/β-catenin通路)[9]。研究表明,在無活化Wnt信號的正常細胞質中,β-catenin是以磷酸化的降解復合物形式存在[10],并最終被蛋白酶體降解,因此在正常細胞中僅存在很低水平的游離狀態(tài)β-Catenin[11]。當Wnt通路活化時,可以抑制磷酸化的β-catenin降解復合物形成,從而提高細胞質中游離狀態(tài)的β-catenin水平,并進而轉運到細胞核中與特定的靶基因結合,進一步啟動靶基因的轉錄[12]。研究發(fā)現,大鼠NSCs被Wnt3a質粒轉染后,Wnt3a在NSCs獲得表達,可使NSCs向神經細胞分化增多[13]。
但以往研究集中于離體狀態(tài)下NSCs的培養(yǎng)與增殖調控,以及移植NSCs對AD的作用,對于內源性NSCs增殖調控及其對AD的影響方面的研究相對較少。通過本研究表明,Aβ1-42損傷海馬區(qū)所誘導的AD大鼠模型與正常大鼠比較,其β-Catenin蛋白表達顯著降低(P<0.05),而經Wnt3a對抗后可顯著上調β-Catenin蛋白的表達(P<0.01);同時,β-Catenin蛋白表達增高后,海馬組織中NSCs增殖分化顯著增多(與對照組比較P<0.05,與AD組比較P<0.01);此外,經Wnt3a對抗后,實驗組大鼠學習記憶等行為能力顯著優(yōu)于AD組(P<0.05)。綜合以上結果,進一步證實Aβ1-42可以抑制Wnt/β-catenin信號通路的激活,并且可能是Aβ致AD的發(fā)病機制之一;激活Wnt/β-catenin信號通路可以增強內源性NSCs的增殖分化,并且可以拮抗Aβ1-42誘導的神經細胞損傷、促進神經功能修復,是治療AD的可進一步探索研究方法之一。
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黑龍江省教育廳科學技術研究項目,編號:12531698。
盛寶英(1964~)女,黑龍江佳木斯人,碩士,教授,碩士研究生導師。
姜堯佳(1976~)男,黑龍江佳木斯人,碩士,副主任醫(yī)師。E-mail:jyj761024@163.com。
R742
A
1008-0104(2017)06-0101-03
2017-06-13)