孔祥珍 黃 飛 周治彤 吳煒豪
(江南大學食品學院;食品科學與技術國家重點實驗室,無錫 214122)
小麥醇溶蛋白自組裝納米粒子負載白藜蘆醇的性質(zhì)研究
孔祥珍 黃 飛 周治彤 吳煒豪
(江南大學食品學院;食品科學與技術國家重點實驗室,無錫 214122)
小麥醇溶蛋白是谷朊粉的主要成分之一,用小麥醇溶蛋白包埋白藜蘆醇以達到穩(wěn)定白藜蘆醇的目的。用反溶劑法制得其自組裝納米粒子,對乙醇濃度、蛋白濃度、分散液pH、分散液鹽濃度等因素對納米粒子的粒徑以及Zeta電位的影響做出了探究。發(fā)現(xiàn)在乙醇濃度為65%,蛋白質(zhì)濃度4%,分散液pH為4.5,分散液鹽濃度為0.00 mol/L時,得到理想的納米粒子,其粒徑約為(185.1±8.5) nm,Zeta電位為(19.36±1.03) mV。而后在最佳條件下用小麥醇溶蛋白納米粒子負載白藜蘆醇,發(fā)現(xiàn)該復合物在芯壁比為1:40時包埋率最高,此時粒徑(166.7±3.7) nm,Zeta電位(15.68±0.74) mV,包埋率為55.0%,載藥率為1.5%。小麥醇溶蛋白納米粒子可以用來穩(wěn)定白藜蘆醇。
小麥醇溶蛋白 納米粒子 自組裝 白藜蘆醇
谷朊粉是小麥加工的副產(chǎn)品,主要由醇溶蛋白和麥谷蛋白組成[1-2]。小麥醇溶蛋白為單鏈蛋白,分子量約為28~55 ku,通過鍵內(nèi)二硫鍵、疏水相互作用、氫鍵等形成球狀結(jié)構(gòu)[3]。小麥醇溶蛋白作為靶向載體材料前景廣闊。李崇達[4]采用小麥醇溶蛋白通過戊二醛交聯(lián)制備小麥醇溶蛋白微球,并在微球的制備過程中引入磁性納米粒子。Ezpeleta等[5]用小麥醇溶蛋白制備荊豆凝集素-小麥醇溶蛋白納米粒子,并且使荊豆凝集素在體內(nèi)活性和特性得到保留。
白藜蘆醇是一種非黃酮類多酚化合物,分子式C14H12O3,難溶于水,易溶于乙醇乙醚等有機試劑[6]。天然白藜蘆醇主要來自于葡萄、虎杖等植物。研究表明,白藜蘆醇具有抗菌[7]、抗氧化[8]等功效,對鼠的肝癌[9]、胃癌[10]、白血病[11]等都有明顯的抑制作用。白藜蘆醇還具有延長秀麗隱形線蟲和黑腹果蠅壽命[12]的作用。但是白藜蘆醇的不穩(wěn)定性限制了它的應用。
本研究以小麥醇溶蛋白為原料,通過反溶劑法制備小麥醇溶蛋白納米粒子,并以其為載體進行荷載白藜蘆醇的研究,以期獲得荷載白藜蘆醇的納米粒子,提高白藜蘆醇的穩(wěn)定性,擴大其應用領域。文章首先考察工藝條件對納米粒子粒徑、Zeta電位等的影響,在此基礎上,制備負載白藜蘆醇的小麥醇溶蛋白納米粒子,并對其微觀結(jié)構(gòu)及紅外光譜的變化進行了表征。
1.1 試驗材料
小麥醇溶蛋白:實驗室自制,由谷朊粉提取,純度92%;白藜蘆醇:生工生物工程(上海)股份有限公司,純度≥98%;乙醇、鹽酸、氫氧化鈉等均為國產(chǎn)分析純。
1.2 試驗儀器
納米粒度及Zeta電位儀:英國馬爾文公司;紫外可見分光光度計:翱藝儀器(上海)有限公司;場發(fā)射掃描電子顯微鏡:日本日立株式會社;傅里葉紅外光譜儀:美國Nicolet公司;冷凍干燥機:北京四環(huán)科學儀器廠有限公司。
1.3 試驗方法
1.3.1 白藜蘆醇的紫外吸收波長掃描
取一定質(zhì)量的白藜蘆醇,采用乙醇攪拌溶解,配制成白藜蘆醇質(zhì)量分數(shù)約為0.01%(m/V)的乙醇溶液,波長范圍200~500 nm掃描。發(fā)現(xiàn)在306 nm處有最大吸收峰。
1.3.2 白藜蘆醇分解動力學方程
操作過程中難免要使白藜蘆醇暴露在光下,測定白藜蘆醇的分解速率方程以消除計算過程中的誤差。取一定量白藜蘆醇(精確到0.01 mg)采用乙醇攪拌溶解,稀釋至合適濃度,在波長306 nm下測定吸光度隨時間的變化值,并擬合出白藜蘆醇分解速率方程。
1.3.3 小麥醇溶蛋白自組裝納米粒子的制備
采用反溶劑法制備小麥醇溶蛋白自組裝納米粒子。小麥醇溶蛋白以一定質(zhì)量濃度分散于一定濃度的乙醇溶液,待其完全溶解。隨后吸取一定量的醇溶蛋白溶液,逐滴滴入到漩渦攪拌的分散液(一定pH、鹽濃度的去離子水溶液),滴加完畢后繼續(xù)攪拌5~10 min,即獲得小麥醇溶蛋白自組裝納米粒子。分散液通過1 mol/L HCl溶液進行pH值的調(diào)節(jié),及1.00 mol/L NaCl溶液進行鹽濃度的調(diào)節(jié)。此處分別考察溶劑乙醇濃度、蛋白濃度、分散液pH、分散液離子強度對納米粒子的性質(zhì)的影響,具體設置條件如下:乙醇濃度(35%、45%、55%、65%、75%),蛋白濃度(1%、2%、4%、6%、8%),分散液pH(2.5、4.5、6.5、8.5、10.5),分散液鹽濃度(0.00、0.25、0.50、0.75 mol/L)。
1.3.4 負載白藜蘆醇自組裝納米粒子的制備
制備流程同1.2.3小麥醇溶蛋白納米粒子的制備方法。在最佳條件下制備負載白藜蘆醇自組裝納米粒子。在溶解有小麥醇溶蛋白的乙醇溶液中,分別按白藜蘆醇、小麥醇溶蛋白質(zhì)量比為0、1:5、1:10、1:20、1:40的比例加入白藜蘆醇,磁力攪拌至白藜蘆醇完全溶解。
1.3.5 負載白藜蘆醇自組裝納米粒子的包埋率及載藥率
取負載白藜蘆醇自組裝納米粒子的懸濁液1 mL,去離子水定容至25 mL。取5 mL定容后的液體超濾(超濾管分子截留量為10 ku)離心(4 000 r/min,20 min),收集濾液。采用5 mL水洗滌超濾管截留物,上述條件離心,收集濾液。繼續(xù)重復洗滌2次,將所有濾液轉(zhuǎn)移至50 mL容量瓶,定容。在波長306 nm處測定吸光度值。計算白藜蘆醇包埋率及載藥率,計算公式:
1.3.6 納米粒子表征
采用納米粒度及ZETA電位儀測定反溶劑法制備的小麥醇溶蛋白納米粒子的粒度、Zeta電位以及PDI。PDI是指多分散性系數(shù),PDI越小,代表體系粒徑越均勻,一般認為小于0.4較好。采用場發(fā)射掃描電子顯微鏡對納米粒子形貌觀察,及傅里葉紅外光譜儀對納米粒子進行紅外光譜分析。
2.1 白藜蘆醇的最大吸收峰
用紫外可見分光光度計對白藜蘆醇的稀溶液進行吸收波長掃描,得到如圖1所示的譜圖,在306 nm處有最大吸收峰,這與Shi等[13]的研究結(jié)果類似。試驗過程需測定白藜蘆醇紫外吸光度時,均在306 nm處測定。
圖1 白藜蘆醇溶液的紫外吸收曲線
2.2 白藜蘆醇的分解動力學方程
為了考察在將白藜蘆醇包埋到小麥醇溶納米粒子期間,白藜蘆醇的穩(wěn)定性,因此考察了150 min以內(nèi),白藜蘆醇的自身穩(wěn)定性。分別測定不同時間點樣品吸光度值,整個測定過程未避光。根據(jù)白藜蘆醇溶液標準曲線:y=0.104 5x-0.000 7,R2=0.999 8(y,吸光度;x,白藜蘆醇濃度,μg/mL),計算出對應濃度。以白藜蘆醇濃度(y,μg/mL)對時間(x,min)作圖(見圖2),擬合出一條回歸曲線:y=-0.005 3x+6.248 7,R2=0.997 7。由于納米粒子的制備過程在60 min以內(nèi),測定的白藜蘆醇分解速率在這個時間段內(nèi)有較好的線性關系,故用作計算白藜蘆醇自身不穩(wěn)定所造成的分解量。
圖2 白藜蘆醇的分解速率曲線
2.3 小麥醇溶蛋白納米粒子制備的條件優(yōu)化
2.3.1 分散液pH對自組裝納米粒子的粒徑、電位、多分散性系數(shù)的影響
試驗所用去離子水的pH為6.5,當分散液pH偏離6.5時,粒徑呈現(xiàn)變小的趨勢(見表1),這是因為小麥醇溶蛋白的等電點恰好在6.5附近,利于反溶劑過程中蛋白質(zhì)的析出,所以粒徑在此pH較大。在pH 4.5時平均粒徑最小,電位較大,乳液較穩(wěn)定,故選擇pH 4.5。
表1 分散液pH對自組裝納米粒子的粒徑、電位、多分散性系數(shù)的影響
2.3.2 乙醇濃度對納米粒子粒徑、多分散性系數(shù)及Zeta電位的影響
乙醇溶液溶解小麥醇溶蛋白后的體系呈淺黃色透明澄清溶液,隨著乙醇濃度的遞增,溶液的黃色越深,無肉眼可見的沉淀。說明在此系列的乙醇溶液中,小麥醇溶蛋白都能完全溶解。如表2所示,隨著乙醇濃度的增大,小麥醇溶蛋白自組裝納米粒子的平均粒徑呈現(xiàn)減小的趨勢。當溶解醇溶蛋白的乙醇濃度越高,滴入分散液后,相應的分散體系中乙醇含量也越高,醇溶蛋白分子在越高的乙醇濃度下溶解度越大,故不易析出,粒徑越小。乙醇濃度為65%時,Zeta電位最大。選擇溶劑乙醇濃度為65%。
表2 不同濃度的乙醇對自組裝納米粒子的粒徑、電位、多分散性系數(shù)的影響
2.3.3 蛋白質(zhì)濃度對納米粒子粒徑、多分散性系數(shù)及Zeta電位的影響
各組隨著蛋白質(zhì)濃度的增加,粒徑有變大的趨勢(見表3),醇溶蛋白濃度為4%時電位最高,說明粒子間相互作用的排斥力最大,體系最穩(wěn)定。綜合粒徑、PDI和電位因素,選擇小麥醇溶蛋白濃度為4%。
表3 蛋白濃度對自組裝納米粒子的粒徑、電位、多分散性系數(shù)的影響
2.3.4 分散液鹽濃度對自組裝納米粒子的粒徑、電位、多分散性系數(shù)的影響
離子的存在使得蛋白質(zhì)的表面形成一層靜電屏蔽層,離子強度對蛋白質(zhì)的影響取決于蛋白質(zhì)表面的性質(zhì)。由于醇溶蛋白含有高比例的非極性區(qū)域,因此電荷屏蔽效應使其溶解度下降。如表4所示,隨著鹽濃度的增大,形成的納米粒子的粒徑增大。選擇分散液鹽濃度為0.00 mol/L即去離子水。
表4 分散液鹽濃度對自組裝納米粒子的粒徑、電位、多分散性系數(shù)的影響
2.4 負載白藜蘆醇自組裝納米粒子的研究
最終確定采用分散液pH 4.5,乙醇濃度65%,蛋白濃度4%,分散液鹽濃度為0.00 mol/L制備負載白藜蘆醇的自組裝納米粒子。如表5所示,隨著芯材比例的減小,包埋率有所波動,最高為55.0%。隨著芯壁材比例的減小,載藥率自最大值9.1%依次減小。這與殷婷等[14]用大麥醇溶蛋白包埋白藜蘆醇的載藥率相比偏低。這可能與小麥醇溶蛋白和大麥醇溶蛋白與白藜蘆醇的相互作用不同有關。大麥醇溶蛋白與白藜蘆醇的相互作用主要是氫鍵、范德華力、疏水相互作用,白藜蘆醇與大麥醇溶蛋白的疏水相互作用體現(xiàn)在對色氨酸殘基的疏水性上[15]。目前小麥醇溶蛋白與白藜蘆醇的相互作用還在研究中。
表5 白藜蘆醇的包埋率及載藥率
表6所示為負載白藜蘆醇納米粒子的粒徑及電位結(jié)果,由表可知,在所考察的芯壁材比例范圍內(nèi),平均粒徑在146.8~193.65 nm,Zeta電位變化范圍10.23~21.28 mV。
表6 負載白藜蘆醇納米粒子的粒徑、多分散性系數(shù)及電位
2.5 掃描電子顯微鏡對納米粒子形貌觀察
對冷凍干燥后的納米粒子進行場發(fā)射掃描電鏡形貌觀察。當不加入白藜蘆醇時,如圖3a所示,除了個別較大的粒子外,絕大多數(shù)為極小的納米粒子,而且較為均勻,粒子與粒子之間相互有所黏連。當芯壁材比為1:5時,如圖3b所示,粒子粒徑變大,大顆粒的狹縫中夾雜許多小顆粒(如圖3c),這說明當加入白藜蘆醇后,芯材被包裹,粒子的粒徑變大,還有未包埋到芯材的蛋白質(zhì)則像空白組一樣析出,粒徑不變化。當芯壁材比例為1:40時,與空載相比,較大的顆粒數(shù)量增多,但體積增加并不明顯(如圖3d),這是由于加入芯材后有部分芯材被包埋,但是由于芯壁材比例小,所以粒子粒徑并不像圖3b中那么大。
注:a小麥醇溶蛋白自組裝納米粒子,b芯壁材1:5負載白藜蘆醇納米粒子宏觀圖,c芯壁材1:5負載白藜蘆醇納米粒子微觀圖,d芯壁材1:40負載白藜蘆醇納米粒子。圖3 小麥醇溶蛋白納米粒子及其負載白藜蘆醇納米粒子的SEM圖
各組電鏡圖片可以看出,粒子表面光滑,沒有孔洞,沒有凸凹,說明本方法制備的納米粒子具有良好的包埋性,可以很好地將芯材包封在粒子內(nèi)部。
2.6 傅里葉紅外變換光譜分析
對小麥醇溶蛋白、小麥醇溶蛋白納米粒子以及包埋白藜蘆醇的小麥醇溶蛋白納米粒子進行傅里葉紅外變化光譜分析,得到如圖4所示的紅外吸收光譜。波數(shù)在3 300 cm-1處的吸收峰代表—O—H的伸縮振動,比較A與C發(fā)現(xiàn),C在此處峰寬較之窄,說明蛋白質(zhì)的羥基分子間締合形成了氫鍵,形成納米粒子后,氫鍵的締合作用減弱,這是由于反溶劑法制成納米粒子后,羥基親水被暴露在納米粒子的外表面,分子間的締合被減弱。比較B、C發(fā)現(xiàn),蛋白納米粒子比負載白藜蘆醇的納米粒子締合效果強,并且B在3 300 cm-1處的峰沒有向低波數(shù)移動的跡象,說明白藜蘆醇與蛋白質(zhì)沒有明顯的氫鍵締合作用,進一步提示白藜蘆醇與蛋白質(zhì)之間的作用力由疏水相互作用主導。
注:A小麥醇溶蛋白;B小麥醇溶蛋白負載白藜蘆醇納米粒子(芯壁比1:5);C小麥醇溶蛋白納米粒子。圖4 傅里葉紅外變換譜圖
用反溶劑法制備小麥醇溶蛋白自組裝納米粒子,確定在乙醇濃度為65%,蛋白質(zhì)濃度4%,分散液pH為4.5,分散液鹽濃度為0.00 mol/L時,得到理想的納米粒子,其粒徑約為(185.1±8.5) nm,Zeta電位約為(19.36±1.03) mV。而后用該方法包埋白藜蘆醇,發(fā)現(xiàn)芯壁比為1:40時,包埋率最佳為55.0%,載藥率為1.5%,小麥醇溶蛋白負載白藜蘆醇后粒徑(166.7±3.7) nm,Zeta電位(15.68±0.74) mV。掃描電鏡顯示負載白藜蘆醇后的納米粒子表面光滑,顆粒較小,具有較好的包埋特性。傅里葉紅外變換光譜顯示將小麥醇溶蛋白制備成納米粒子后分子間的氫鍵發(fā)生了變化,同時羧羥基多了一種面外彎曲的振動方式。
[1]陶海騰,王文亮,程安瑋,等.小麥蛋白組分及其對加工品質(zhì)的影響[J].中國食物與營養(yǎng),2011,17(3):28-31
Tao H T,Wang W L,Cheng A W,et al.Wheat protein components and their effects on process quality[J].Food and Nutrition in China,2011,17(3):28-31
[2]賈光鋒,范麗霞,王金水.小麥面筋蛋白結(jié)構(gòu)、功能性及應用[J].糧食加工,2004(2):11-13
Jia G F,Fan L X,Wang J S.The structure,functional properties and using of wheat gluten protein[J].Grain Processing,2004(2):11-13
[3]馬永強,韓春然,石忠志.小麥醇溶蛋白的研究進展[J].食品科學,2006(12):813-817
Ma Y Q,Han C R,Shi Z Z.Advance on the study of wheat gliadins[J].Food Science,2006(12):813-817
[4]李崇達.小麥醇溶蛋白的提取及其磁性微球的制備與性能研究[D].鄭州:河南工業(yè)大學,2011
Li C D.Abstraction of gliadin and preparation and characterization of magnetic nanoparticles[M].Zhengzhou:Henan Polytechnic University,2011
[5]Ezpeleta I,Arangoa M A,Irache J M,et al.Preparation of Ulex europaeus lectin-gliadin nanoparticle conjugates and their interaction with gastrointestinal mucus[J].International Journal of Pharmaceutics,1999,191(1):25-32
[6]李潔,熊興耀,曾建國,等.白藜蘆醇的研究進展[J].中國現(xiàn)代中藥,2013(2):100-108
Li J,Xiong X H,Zeng J G,et al.Current situation and progress of resveratrol research[J].Modern Chinese Medicine,2013(2):100-108
[7]張瑞,李永軍,王鑫.白藜蘆醇抗菌作用的研究進展[J].河北醫(yī)科大學學報,2010(9):1151-1154
Zhang R,Li Y J,Wang X.Current situation and progress of the antibacterial properties of resveratrol[J].Journal of Hebei Medical University,2010(9):1151-1154
[8]Ndiaye M,Philippe C,Mukhtar H,et al.The grape antioxidant resveratrol for skin disorders:Promise,prospects,and challenges[J].Archives of Biochemistry and Biophysics,2011,508(2):164-70
[9]Wu S L,Sun Z J,Yu L,et al.Effect of resveratrol and in combination with 5-FU on murine liver cancer[J].World Journal of Gastroenterology,2004,10(20):3048-3052
[10]Atten M J,Godoy-Romero E,Attar B M,et al.Resveratrol regulates cellular PKC alpha and delta to inhibit growth and induce apoptosis in gastric cancer cells[J].Investigational New Drugs,2005,23(2):111-119
[11]Horvath Z,Saiko P,Illmer C,et al.Resveratrol,an ingredient of wine,acts synergistically with Ara-C and tiazofurin in HL-60 human promyelocytic leukemia cells[J].Nucleosides Nucleotides and Nucleic Acids,2006,25(9-11):1019-1024
[12]Valenzano D R,Terzibasi E,Genade T,et al.Resveratrol prolongs lifespan and retards the onset of age-related markers in a short-lived vertebrate[J].Current Biology,2006,16(3):296-300
[13]Shi G,Rao L,Yu H,et al.Stabilization and encapsulation of photosensitive resveratrol within yeast cell[J].International Journal of Pharmaceutics,2008,349(1-2):83-93
[14]殷婷,管驍.大麥醇溶蛋白負載白藜蘆醇自組裝納米顆粒及其性質(zhì)研究[J].分析測試學報,2015(1):67-72
Yin T,Guan X.Preparation and characterization of hordein self-assesbled nanoparticles loadedresveratrol[J].Journal of Instrumental Analysis,2015(1):67-72
[15]Guan X,Liu J,Yin T,et al.Study on the Interaction in Resveratrol-Hordein Nanoparticle[J].Spectrosc Spectr Anal,2016,36(1):163-168.
Characterization of Gliadin Self-Assembly Nanoparticles Loaded with Resveratrol
Kong Xiangzhen Huang Fei Zhou Zhitong Wu Weihao
(State Key Laboratory of Food Science and Technology; School of Food Science and Technology,Jiangnan University,Wuxi 214122)
Gliadin is an important fraction of wheat gluten.Resveratrol was buried in the gliadin nanoparticles to stabilize the resveratrol.In this paper,gliadin nanoparticles were self-assembled by anti-solvent method.Effects of ethanol concentration,protein concentration,pH and salt concentration of the dispersion solution on the particle size and Zeta potential of the prepared nanoparticles were systematically studied.The desired nanoparticles,of which the mean diameter was(185.1±8.5) nm and the mean Zeta potential was(19.36±1.03) mV,were prepared under the condition of 65% ethanol concentration,4% protein concentration,pH 4.5 and 0.00 mol/L salt concentration.Under the optimum conditions,the gliadin nanoparticles loaded with resveratrol have best encapsulation efficiency when prepared with 1:40 core/wall ratio.The result showed that the prepared nanoparticles have 55.0% encapsulation efficiency and 1.5% drug loading rate with mean diameter of (166.67±3.7) nm,and mean Zeta potential of (15.68±0.74) mV.Gliadin nanoparticles can stabilize resveratrol.
gliadin,nanoparticle,self-assembly,resveratrol
TQ218
A
1003-0174(2017)11-0021-05
國家級大學生創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)訓練計劃(201510295018)
2016-10-25
孔祥珍,女,1980年出生,副教授,植物蛋白科學與技術