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(貴州師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院, 貴陽 550001)
金釵石斛IAA內(nèi)生細(xì)菌篩選及對干旱脅迫下玉米種子萌發(fā)的影響
高陽,朱雙麗,吳慶珊,雷珣,安忠琦,王玉倩,牛曉娟,翁慶北
(貴州師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院, 貴陽 550001)
從金釵石斛植株中分離并篩選產(chǎn)吲哚乙酸(IAA)的內(nèi)生細(xì)菌,研究在不同濃度PEG-6000模擬的干旱脅迫條件下,產(chǎn)IAA內(nèi)生菌發(fā)酵上清液浸種處理對玉米種子萌發(fā)的影響。從金釵石斛分離出645株內(nèi)生細(xì)菌,通過salkowskis法篩選表明,63.4%的內(nèi)生菌具有分泌IAA的能力,其中有9株菌分泌量較高,分泌量為12.8~34.5 mg/L?;?6 SrRNA基因序列分析,初步鑒定它們?yōu)檠挎邨U菌屬(Bacillus)和類芽孢桿菌屬(Paenibacillus)細(xì)菌。將內(nèi)生菌發(fā)酵上清液浸種處理玉米種子,在未加PEG以及5%、10%和15% PEG的干旱脅迫條件下,其種子萌發(fā)率與對照組的相當(dāng)或降低。但部分產(chǎn)IAA內(nèi)生菌浸種處理可緩解高度干旱脅迫作用:在20% PEG條件下,有7株內(nèi)生菌浸種處理后玉米種子萌發(fā)率顯著提高,較對照組提高了4.7%~13.3%;25% PEG條件下,內(nèi)生菌LJYPD 10處理的玉米種子萌發(fā)率比對照組顯著提高了5.3%。
金釵石斛; 內(nèi)生細(xì)菌; IAA; 玉米; 種子萌發(fā); 干旱脅迫
植物內(nèi)生菌指在其生活史的一定階段或全部階段,生活于健康植物各種組織和器官內(nèi)部,又不會(huì)引起植物明顯病害的一類微生物[1]。植物內(nèi)生菌在植物微生態(tài)系統(tǒng)中具有重要作用[2],其能提高植物在逆境中的抗性[3-4],并產(chǎn)生細(xì)胞分裂素(cytokinin)、赤霉素(gibberellin)[5]、吲哚乙酸(indole-3-acetic acid,IAA)等植物激素,對植物具促生作用[6-8]。
IAA是一種植物體內(nèi)普遍存在的內(nèi)源生長素,具有促進(jìn)細(xì)胞分裂,調(diào)節(jié)種子萌發(fā)和植物生長發(fā)育的作用[8]。研究表明,當(dāng)處于水分、干旱、高鹽等逆境下,植物自身合成 IAA 的能力受到抑制,植物生長受到限制[9-11],外源IAA可以促進(jìn)植物幼苗的伸長并降低幼苗細(xì)胞膜透性,并增強(qiáng)植物對不良環(huán)境的適應(yīng)能力[11]。對具有分泌IAA能力的內(nèi)生細(xì)菌進(jìn)行研究有利于將植物促生細(xì)菌應(yīng)用于農(nóng)業(yè)生產(chǎn)。
我國干旱、半干旱土地面積約占全國總面積的47%[12]。貴州位于中國西南部,季風(fēng)氣候不穩(wěn)定,氣象災(zāi)害頻發(fā),主要表現(xiàn)為春旱和夏旱,干旱對貴州省尤其是西部地區(qū)農(nóng)作物的種植帶來很大影響[13]。玉米是我國主要的糧食作物之一,在貴州省種植范圍較廣。如何增強(qiáng)玉米自身的抗旱能力,是目前玉米栽培研究急需解決的問題。
金釵石斛(D.nobileLindl)因其藥用價(jià)值與野生資源短缺而備受關(guān)注。野生金釵石斛大多附生在巖石上或樹上,喜陰涼濕潤環(huán)境,冬春季節(jié)稍耐干旱,能夠抵抗惡劣環(huán)境[14]。本研究從石斛植物組織中分離內(nèi)生細(xì)菌,篩選產(chǎn)IAA的菌株,研究其對PEG-6000模擬干旱脅迫條件下玉米種子萌發(fā)率的影響,為進(jìn)一步研究內(nèi)生菌對植物的促生及其抗逆作用提供依據(jù)。
1.1 材 料
于2014年在貴州省赤水市旺隆鎮(zhèn)等地隨機(jī)采集金釵石斛植株,置密封袋中,并盡快用于分析。玉米種子裕玉207購自遵義裕農(nóng)種業(yè)有限責(zé)任公司。
1.2 培養(yǎng)基
內(nèi)生菌分離培養(yǎng)基:NA培養(yǎng)基,YG培養(yǎng)基,R2A培養(yǎng)基,LB培養(yǎng)基,TSA培養(yǎng)基,金氏B培養(yǎng)基,牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基,YPD培養(yǎng)基,2×YT培養(yǎng)基,TB培養(yǎng)基[15]。
1.3 金釵石斛內(nèi)生細(xì)菌的分離純化
將金釵石斛植株洗凈晾干,將根、莖、葉用75%乙醇浸泡2 min,無菌水沖洗3次;3%NaClO浸泡3 min,無菌水沖洗3次;0.1%升汞浸泡10 min,無菌水沖洗4~5次;75%乙醇浸泡1 min,無菌水沖洗3次。將表面消毒后的根、莖、葉分別置于盛有無菌水的研缽中研磨,并將稀釋至102和103倍的研磨組織液涂布平板,37 ℃培養(yǎng)2~5 d[16]。最后1次沖洗植株的無菌水涂布平板,作為空白對照。挑取形態(tài)不同的菌落,接種試管斜面,37 ℃培養(yǎng)過夜后,4 ℃低溫保存。
1.4 內(nèi)生菌的發(fā)酵培養(yǎng)
從保存的斜面挑取適量菌體接種于5 mL液體培養(yǎng)基中,28 ℃ 120 r/min搖床培養(yǎng)16 h。將發(fā)酵液4 000 r/min離心15 min后,取上清液備用。
1.5 產(chǎn)IAA菌株的篩選
取0.1 mL上清液與等量salkowskis試劑(4.5 g/L FeCl3、10.8 mol/L H2SO4溶液)混勻,滴置于白色陶瓷板上室溫避光30 min。顏色變紅則表示能夠分泌IAA。根據(jù)顯色后顏色變化,初步篩選內(nèi)生菌分泌IAA的能力[17]。以IAA(購自北京中生瑞泰科技有限公司)10.0 mg/L標(biāo)準(zhǔn)液為陽性對照,空白培養(yǎng)基為陰性對照。
配制IAA標(biāo)準(zhǔn)液濃度分別為0,5.0,10.0,15.0,20.0,25.0,30.0,35.0,40.0,45.0,50.0 mg/L。量取2.0 mL標(biāo)準(zhǔn)溶液,分別加入salkowskis試劑2.0 mL,混合并避光靜置30 min后,測定OD530值[18]。以IAA濃度為橫坐標(biāo),吸光值為縱坐標(biāo),制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,擬合得到回歸方程。取2.0 mL內(nèi)生菌發(fā)酵上清液與等量salkowskis試劑混合,避光靜置30 min。測定OD530值。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出IAA含量。以培養(yǎng)基代替發(fā)酵液作為空白對照。
1.6 內(nèi)生細(xì)菌的分子鑒定
采用CTAB法提取內(nèi)生細(xì)菌總DNA[19]。利用細(xì)菌通用引物27 F(5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′)和1492 R(5′-CTACGGCTACCTTGTTACGA-3′),PCR擴(kuò)增16S rRNA 基因。PCR擴(kuò)增體系:DNA 模板(70 ng/μL)2.0μL,引物(10μmol/L)各 1.0μL,2×PCR mix 25.0μL,補(bǔ)足雙蒸水至50μL。PCR擴(kuò)增條件:94 ℃預(yù)變性4 min,94 ℃變性1 min,55 ℃退火1 min,72 ℃延伸3 min,30個(gè)循環(huán)后,72 ℃再延伸10 min。擴(kuò)增產(chǎn)物送生工生物工程(上海)股份有限公司測序。
根據(jù)測定序列,利用BLAST(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/blast/Blast.cgi)與GenBank數(shù)據(jù)庫中的序列比對分析,進(jìn)行初步鑒定。
1.7 產(chǎn)IAA內(nèi)生細(xì)菌對種子萌發(fā)的影響
選取成熟飽滿、大小適中且均勻一致的玉米種子,自來水反復(fù)沖洗表面污垢,75%酒精浸泡2 min,蒸餾水沖洗5次,置無菌濾紙上吸去表面水分后備用。用待測內(nèi)生菌發(fā)酵上清液室溫浸泡玉米種子,5 h后將種子均勻排列在鋪有2層濾紙的培養(yǎng)皿中,25 ℃恒溫培養(yǎng)。培養(yǎng)7 d后統(tǒng)計(jì)發(fā)芽率。每個(gè)處理60粒,3次平行。以培養(yǎng)基代替發(fā)酵上清液為對照。
表1 分泌IAA較強(qiáng)的內(nèi)生菌
菌株分類最大相似菌株相似度分離部位IAA含量(mg/L)顯色反應(yīng)LJR2A1BacillussubtilisNR_114997.199%莖16.6+++LYYT31BacillussubtilisNR_114997.199%葉16.9+++LJTSA1BacillussubtilisNR_114997.199%莖34.5++++LGYPD10BacillussubtilisNR_114997.199%根27.2++++WGKB2BacillussubtilisNR_114997.199%根20.5+++LJNA1BacillussubtilisNR_114997.199%莖13.6++WGLB2PaenibacilluscinerisNR_042189.199%根24.2+++LJYG4PaenibacilluscinerisNR_042189.199%莖12.8++LYTB6BacillussubtilisNR_114997.199%葉13.3++
注:“++++”、“+++”、“++”、分別表示紫紅色、紅色、粉紅色。
1.8 模擬干旱脅迫
在培養(yǎng)皿中加入15.0 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為5%、10%、15%、20%、25%的PEG-6000(天津市致遠(yuǎn)化學(xué)試劑有限公司)溶液以飽和雙層濾紙[20],其上放置種子。以15.0 mL雙蒸水代替PEG-6000溶液作為對照。
1.9 統(tǒng)計(jì)分析
運(yùn)用SPSS 21.0對實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,單因素方差分析(One-way ANOVA)進(jìn)行均值顯著性檢驗(yàn)。
2.1 產(chǎn)IAA菌株篩選
從赤水采集的金釵石斛植株根、莖、葉中分離內(nèi)生細(xì)菌,將分離的645株內(nèi)生細(xì)菌用于產(chǎn)IAA菌株篩選。通過salkowskis試劑比色法對分泌IAA的內(nèi)生菌進(jìn)行初篩。其中409株內(nèi)生菌發(fā)酵上清液與salkowskis混合后,顏色發(fā)生變化,表明大部分金釵石斛內(nèi)生細(xì)菌具有分泌IAA的能力。但大部分內(nèi)生菌發(fā)酵液與salkowskis混合顯色后顏色較淺,分泌量較低。與對照10.0 mg/L IAA顯色后的粉紅色相比,篩選出9株顯色較深的內(nèi)生菌進(jìn)一步用于定量測定,包括顯色為粉紅色,與10.0 mg/L IAA顯色相當(dāng)?shù)腖JNA 1、LJYG 4和LYTB 6;顯色反應(yīng)為紅色的LJR 2 A 1、LYYT 31、WGKB 2、WGLB 2;以及顯色為紫紅色的LJTSA 1、LGYPD 10(表1)。培養(yǎng)基顯色為無色。
進(jìn)一步通過定量檢測方法測定篩選出的內(nèi)生菌IAA分泌量。分光光度計(jì)測定OD530,通過標(biāo)準(zhǔn)曲線線性回歸方程(圖1)計(jì)算各內(nèi)生細(xì)菌IAA的分泌量。如表1所示,篩選獲得的9株內(nèi)生菌的IAA分泌量在12.8~34.5 mg/L之間。其中LJTSA 1的量最高(34.5 mg/L),LGYPD 10次之(27.2 mg/L),而LJYG 4最低(12.8 mg/L)。
圖1 IAA標(biāo)準(zhǔn)曲線
2.2 金釵石斛產(chǎn)IAA內(nèi)生菌的分子鑒定
提取金釵石斛內(nèi)生菌DNA,PCR擴(kuò)增16 SrRNA基因,測序,并與NCBI核酸數(shù)據(jù)庫中的序列進(jìn)行比對。結(jié)果表明,WGLB 2和LJYG 4初步鑒定為類芽孢桿菌屬(Paenibacillus),其余7株為芽孢桿菌屬(Bacillus)(表1)。
這9株內(nèi)生菌分別分離自金釵石斛的根、莖、葉不同部位,其中,LJR 2 A 1、LJTSA 1、LJNA 1和LJYG 4等4株菌分離自莖,LGYPD 10、WGKB 2和WGLB 2等3株菌分離自根,LYYT 31和LYTB 6分離自葉。
2.3 產(chǎn)IAA內(nèi)生菌對玉米種子萌發(fā)率的影響
將產(chǎn)IAA的內(nèi)生菌發(fā)酵上清液浸種處理玉米種子。如表2所示,在干旱脅迫條件下,用培養(yǎng)基浸種處理后的對照組萌發(fā)率隨著PEG濃度增加(干旱脅迫程度增加)而減小。在5% PEG的輕度干旱脅迫下,萌發(fā)率無顯著變化。在10%、15% PEG的中度干旱脅迫條件下,萌發(fā)率從91.0%下降為88.0%、86.0%。在20%、25% PEG的重度干旱脅迫下,玉米種子萌發(fā)率極顯著下降為66.0%和63.7%(p<0.01)。
表2 不同濃度PEG-6000干旱脅迫下產(chǎn)IAA內(nèi)生菌對玉米種子萌發(fā)率的影響
PEG-6000濃度(%)對照(%)LJR2A1(%)LTYT31(%)LJTSA1(%)LGYPD10(%)WGKB2(%)LJNA1(%)WGLB2(%)LJYG4(%)LJTB6(%)091.0±1.5a82.0±0.6a87.0±3.2a87.0±1.2a89.0±2.1a83.3±0.9b90.3±1.3a87.7±0.9a87.7±0.7a87.7±0.3a591.0±2.1a83.0±0.6a89.0±2.1a86.0±3.0ab87.7±0.9a89.0±0.6a87.3±0.9a84.3±1.2b82.0±0.6b85.0±2.1a1088.0±1.7a77.3±1.2b80.0±0.6b83.0±1.5ab82.0±1.5b86.0±1.5ab86.7±1.2a81.3±0.9c87.0±0.6a83.3±1.2a1586.0±1.2a77.3±1.8b77.0±1.5b80.0±0.6bc82.0±1.5b88.0±0a81.3±0.9b77.7±0.9d85.0±1.2a84.3±0.9a2066.0±1.5b66.3±1.3c71.0±1.0c75.0±1.5c73.0±0.6c75.0±0.6c77.7±1.2c59.0±0.6e79.3±0.9c70.7±0.9b2563.7±2.2b64.7±0.9c61.0±1.5d46.0±1.0d69.0±0.6c52.7±1.5d51.3±0.7d49.3±0.9f65.3±0.7d64.3±1.8c
將產(chǎn)IAA的內(nèi)生菌發(fā)酵上清液浸種處理玉米種子,測定內(nèi)生菌處理對玉米種子萌發(fā)率的影響(表2)。隨干旱脅迫程度加深,產(chǎn)IAA內(nèi)生細(xì)菌浸種處理后玉米種子萌發(fā)率較對照組的總體表現(xiàn)為降低—增加—再降低。但不同內(nèi)生菌對萌發(fā)率影響不同。未加入PEG時(shí),與對照組相比,9株產(chǎn)IAA內(nèi)生菌浸種后玉米種子萌發(fā)率均略有下降,其中LJR 2 A 1和WGKB 2浸種處理后的玉米種子萌發(fā)率顯著下降,但其他內(nèi)生菌對玉米種子萌發(fā)未有顯著影響。在5%、10%和15% PEG條件下,產(chǎn)IAA內(nèi)生菌上清液浸種處理后的玉米種子萌發(fā)率與對照組的相比,總體相當(dāng)或略低。在5% PEG干旱脅迫下,僅LJYG 4菌株浸種后的玉米種子萌發(fā)率較對照組的顯著降低,其他菌株對萌發(fā)率沒有顯著影響;在10% PEG干旱脅迫下,LJR 2 A 1、LYYT 31和WGLB 2浸種處理后的萌發(fā)率顯著低于對照組;在15% PEG干旱脅迫下,只有WGKB 2菌株浸種玉米種子的萌發(fā)率略高于對照組的,但不顯著,而LJR 2 A 1、LYYT 31、LJTSA 1、LJNA 1和WGLB 2浸種后的玉米種子萌發(fā)率則顯著低于對照組的。
隨著干旱脅迫程度加深,在20% PEG條件下,除WGLB 2浸種后的玉米種子萌發(fā)率(59.0%)顯著低于對照組的(66.0%)、LJR 2 A 1處理后的萌發(fā)率與對照組的相當(dāng)外,其余7株內(nèi)生菌處理后的種子萌發(fā)率均高于對照組的。其中LJTSA 1、LGYPD 10和WGKB 2處理后的玉米種子萌發(fā)率分別為75.0%、73.0%和75.0%,顯著高于對照組(p<0.05),LJNA 1和LJYG 4處理后的玉米種子萌發(fā)率分別為77.7%和79.3%,極顯著高于對照組(p<0.01)。但當(dāng)PEG增加為25%時(shí),大部分菌株處理后的玉米種子萌發(fā)率又低于對照組,僅內(nèi)生菌LGYPD 10處理后的種子萌發(fā)率(69.0%)高于對照組(63.7%)。
干旱脅迫是植物生長的逆境之一。在逆境條件下,IAA能夠幫助種子抵抗逆境,促進(jìn)種子萌發(fā)。本研究從金釵石斛植株內(nèi)生細(xì)菌中篩選獲得9株分泌IAA較好的內(nèi)生菌,并研究了在不同濃度PEG-6000干旱脅迫條件下,產(chǎn)IAA內(nèi)生菌對玉米種子萌發(fā)的影響。為金釵石斛內(nèi)生菌資源利用以及產(chǎn)IAA內(nèi)生菌對干旱脅迫植物生長研究提供了依據(jù)。
IAA是植物生長過程中必需的一種激素。從植物中分離的內(nèi)生細(xì)菌許多都能分泌IAA,包括芽孢桿菌屬、類芽孢桿菌屬、假單胞菌屬(Pseudomonas)、微桿菌屬(Microbacterium)、鏈霉菌屬(Streptomyces)、腸桿菌屬(Enterobacter)和泛菌屬(Pantoea)等[11, 21-22]。內(nèi)生菌分泌IAA的量差異較大,目前從春蘭、細(xì)莖石斛等分離的內(nèi)生和根圍細(xì)菌產(chǎn)IAA量為0.5~287.5 mg/L[21-22]。本研究從金釵石斛中分離的645株菌內(nèi)生菌,通過salkowski試劑法比色反應(yīng)檢測,63.4%的內(nèi)生菌能分泌IAA,但大部分菌株分泌量低。篩選的9株產(chǎn)IAA較高的菌株IAA分泌量為12.8~34.5 mg/L,為芽孢桿菌屬和類芽孢桿菌屬細(xì)菌。色氨酸是植物體內(nèi)生長素生物合成重要的前體物質(zhì),在培養(yǎng)基中加入色氨酸可提高內(nèi)生菌IAA的分泌量[21,23]。
在干旱脅迫下,隨著PEG濃度增加,產(chǎn)IAA金釵石斛內(nèi)生菌對浸種處理后的玉米種子萌發(fā)的調(diào)控作用總體表現(xiàn)為抑制—促進(jìn)—抑制。在5%、10%和15% PEG的中、低度干旱脅迫下,產(chǎn)IAA內(nèi)生菌處理后的玉米種子萌發(fā)率總體低于對照處理的。在20% PEG重度干旱脅迫下,玉米種子萌發(fā)率極顯著降低,而產(chǎn)IAA內(nèi)生菌浸種處理有助于緩解玉米種子干旱脅迫影響,除WGLB 2和LJR 2 A 1 2株內(nèi)生菌外,LTYT 31、LJTSA 1、LGYPD 10、WGKB 2、LJNA 1、LJYG 4、LJTB 6等7株內(nèi)生菌浸種處理后,玉米種子萌發(fā)率較對照組(66.0%)提高了4.7%~13.3%不等。但當(dāng)PEG增加到25%時(shí),除內(nèi)生菌LJYPD 10仍能緩解重度干旱脅迫影響,萌發(fā)率(69.0%)較對照組提高了5.3%外,其余內(nèi)生菌菌株浸種處理抑制了玉米種子的萌發(fā)或與對照組相當(dāng),萌發(fā)率低于或略高于對照組的63.7%。
不同菌株處理對玉米種子干旱脅迫下萌發(fā)率影響不同。一方面,不同內(nèi)生菌產(chǎn)生IAA量不同,而IAA作為一種植物生長激素,對不同植物都有一定的最適處理濃度范圍,濃度太低則促生作用不明顯,濃度太高則抑制種子萌發(fā)或植物生長。且在不同產(chǎn)地[24]、不同脅迫條件[25]下種子萌發(fā)的IAA最適濃度也不同。另一方面,內(nèi)生菌還能產(chǎn)生除IAA外的其他促生物質(zhì)并共同作用于植株。由于植物在種子萌發(fā)、苗期生長等過程中還需要氮、磷等元素,單獨(dú)具有產(chǎn)IAA活性的菌株其促生能力比兼具解磷或固氮活性的菌株低[26]。
植物生長調(diào)節(jié)劑對種子萌發(fā)的調(diào)節(jié)是一個(gè)較為復(fù)雜的代謝過程。干旱脅迫可引起植物激素平衡的改變,內(nèi)生菌可通過改變ANAC 072 轉(zhuǎn)錄因子、脫水響應(yīng)原件結(jié)合蛋白2 A等植株干旱相關(guān)基因的表達(dá)或表達(dá)水平,產(chǎn)生IAA、赤霉素等植物激素,減少GsH、CAT、POD和多酚氧化酶等緩解干旱[27],來增加共生植株的干旱耐受[28],從而緩解干旱脅迫對植物的傷害,使植物在缺水環(huán)境下也能生長。目前,除產(chǎn)IAA內(nèi)生菌外,本實(shí)驗(yàn)室還從金釵石斛內(nèi)生菌中篩選了溶磷、解鉀、固氮等具促生作用的內(nèi)生菌。這些內(nèi)生菌對逆境脅迫下金釵石斛種子萌發(fā)和植株的促生作用及機(jī)理還有待進(jìn)一步研究。
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Screening of IAA Producing Endophytic Bacteria inDendrobiumnobileLindl and Effect onZeamaysSeed Germination Under Drought Stress
GAOYang,ZHUShuangli,WUQingshan,LEIXun,ANZhongqi,WANGYuqian,NIUXiaojuan,WENGQingbei
(School of Life Sciences, Guizhou Normal University,Guiyang 550001,China)
The indole-3-acetic acid (IAA) producing endophytic bacteria were isolated and screened fromDendrobiumnobileLindl.Under the condition of dought stress stimulated with different concentration of PEG-6000,the maize seed germination were studied after treating with the IAA-producing strains.The results showed that a total of 645 strains endophytic bacteria were isolated fromD.nobileLindl.,and 63.4% of the strains have the ability to produce IAA,using with the salkowskis reagent method,9 strains were screened,which produced 12.8-34.5 mg/L IAA and showed a higher ability of IAA production.Based on 16 S rRNA gene sequence analysis,these endophytic bacteria were identified asBacillussp.andPaenibacillussp..The IAA-producing endophytic bacteria were fermentated and the supernatant were used to soak the maize seeds.Under the condition of absence PEG or drought stress of 5%,10% and 15% PEG,the germination rate of the seeds treated with the endophytic bacteria were less than or equal to the control’s.Howerer,soaking with the IAA-producing endophytic bacteria could elliminate the high drought stress effect of the maize seeds.Under the condition of 20% PEG,there are 7 strains can significantly promote the seed germination,the germination rate of endophytic bacteria soaking seeds were increased by 4.7%-13.3% compared with the control.Under the condition of 25% PEG,the germination rate of the seeds treated with the endophytic bacteria LJYPD 10 was increased by 5.3% than the control’s.
DendrobiumnobileLindl; endophytic bacteria; IAA; maize (Zeamays);seed germination; drought stress
2016-11-24
貴州省優(yōu)秀科技教育人才省長專項(xiàng)資金([2011] 47);貴州省大學(xué)生創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)訓(xùn)練計(jì)劃項(xiàng)目(201410663004)。
高 陽(1991—),女,碩士研究生,研究方向:應(yīng)用生物化學(xué);E-mail:504734134@qq.com。
翁慶北(1975—),女,博士,教授,研究方向:資源微生物學(xué);E-mail:wengqb@ 126.com。
10.16590/j.cnki.1001-4705.2017.04.0036
S 513
A
1001-4705(2017)04-0036-06