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(1.東北林業(yè)大學(xué),黑龍江哈爾濱 150040; 2.哈爾濱醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院,黑龍江哈爾濱 150086; 3.東北農(nóng)業(yè)大學(xué),黑龍江哈爾濱 150030)
橡子粉酶法制備低聚異麥芽糖的工藝研究
張智1,李晴1,化洪苓1,尹文哲2,李杰3,馬建章1,*
(1.東北林業(yè)大學(xué),黑龍江哈爾濱 150040; 2.哈爾濱醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院,黑龍江哈爾濱 150086; 3.東北農(nóng)業(yè)大學(xué),黑龍江哈爾濱 150030)
對(duì)橡子粉酶法制備低聚異麥芽糖的工藝過程進(jìn)行優(yōu)化,以期提高低聚異麥芽糖中異麥芽糖、潘糖和異麥芽三糖的含量。采用Box-Benhnken響應(yīng)面法,優(yōu)化以耐高溫α-淀粉酶液化橡子粉的工藝條件。最佳的液化工藝條件為:以DE值13%為最佳液化指標(biāo),液化時(shí)間31 min、液化溫度95 ℃、液化pH6.6、酶添加量13 U/g,結(jié)合生產(chǎn)實(shí)際最佳條件下的DE值為12.91%;繼而采用正交實(shí)驗(yàn),優(yōu)化以普魯蘭酶、β-淀粉酶糖化橡子粉液化液的工藝條件,得到最佳的糖化工藝條件為:普魯蘭酶添加量25 U/g、β-淀粉酶添加量130 U/g、溫度60 ℃、時(shí)間10 h,在此最佳工藝條件下糖化轉(zhuǎn)苷后的(IG2+P+IG3)含量為36.11%±0.17%;轉(zhuǎn)苷工藝過程的α-葡萄糖轉(zhuǎn)苷酶最佳添加量為1.5 U/g,最佳條件下異麥芽糖、潘糖、異麥芽三糖含量之和為36.27%±0.18%。
低聚異麥芽糖,橡子粉,液化,糖化,轉(zhuǎn)苷,工藝
橡子(acorn),殼斗科,為麻櫟屬橡樹和常綠櫧栲類橡樹所結(jié)果實(shí),全球此樹種有8屬900多種,而在我國就有7屬300多種,充分說明了我國橡子資源豐富[1]。橡子仁營養(yǎng)豐富,含有淀粉約50.6%~58.7%、蛋白質(zhì)11.7%~15.8%、脂肪2.1%~2.8%、單寧10.2%~14.1%[2]。其淀粉含量不亞于大豆等谷物,與玉米淀粉含量相似[3]。橡子粉可以開發(fā)成各種產(chǎn)品,例如橡子涼粉[4]、橡子餅干[5]等,同時(shí)橡子粉還可以進(jìn)一步加工成變性淀粉、糖漿、環(huán)狀糊精、淀粉膠和生物多糖等深層次的產(chǎn)品,從而可有效提高橡實(shí)產(chǎn)品的經(jīng)濟(jì)效益以及科學(xué)價(jià)值,在橡子粉的凝沉穩(wěn)定性、顆粒晶體等淀粉特性方面的研究[6-8]也有了進(jìn)展。
低聚異麥芽糖(isomalto-oligosaccharide)又稱分枝低聚糖,是指由葡萄糖以α-(1-6)糖苷鍵結(jié)合而成的單糖數(shù)為2~5不等的低聚糖[9],主要成分為異麥芽糖(IG2)、潘糖(P)、異麥芽三糖(IG3)。自然界中純天然游離的低聚異麥芽糖較少,一般存在于蜂蜜、黃酒、醬油等。含有豐富的食物纖維,具有防齲齒的功效,可降低膽固醇及血脂水平,同時(shí)作為益生菌可促進(jìn)雙歧桿菌的增殖,既是保健品又是營養(yǎng)物質(zhì),可謂是21世紀(jì)的新型保健品[10-11]。目前低聚異麥芽糖的制備多以玉米淀粉及大米淀粉居多[12-13],然而以橡子粉為原料制備低聚異麥芽糖工藝過程的研究尚未發(fā)現(xiàn)。
本研究以橡子粉為原料,使橡子資源更加合理地被利用,為以橡子粉為原料的優(yōu)質(zhì)低聚異麥芽糖的制備提供了新的理論依據(jù),提高了生產(chǎn)效率。
1.1材料與儀器
橡子粉 撫順金宇食品有限公司;耐高溫α-淀粉酶、β-淀粉酶、普魯蘭酶、α-葡萄糖轉(zhuǎn)苷酶(酶活性分別為20000 U/mL、700000 U/mL、1000 ASP U/mL、100000 U/mL) 上海源葉生物科技有限公司;異麥芽糖(IG2)、潘糖(P)、異麥芽三糖(IG3)標(biāo)準(zhǔn)品 美國Miragen公司;硫酸銅、氫氧化鈉、酒石酸鉀鈉、葡萄糖、次甲基藍(lán)、鹽酸等均為分析純 天津市天力化學(xué)試劑有限公司。
FA-B/JA-N電子分析天平 上海佑科儀器儀表有限公司;DL-6M落地離心機(jī) 湖南星科科學(xué)儀器有限公司;PHS-3精密pH計(jì) 上海儀電科學(xué)儀器股份有限公司;2WAJ型阿貝折射儀 上海光學(xué)儀器五廠;SHZ-C型水浴恒溫振蕩器 上海博迅實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;101型電熱鼓風(fēng)干燥箱 北京市永光明醫(yī)療儀器有限公司;LC-10A高效液相色譜儀 日本島津公司。
1.2測(cè)定指標(biāo)及方法
1.2.1 工藝流程
1.2.2 橡子粉去單寧實(shí)驗(yàn) 常規(guī)水浸提法[14]。
1.2.3 液化適宜DE值范圍的確定 將橡子粉用水配制濃度為25%,調(diào)節(jié)pH到6.0~7.0,加入耐高溫α-淀粉酶16 U/g,于95 ℃水浴條件下液化不同時(shí)間后調(diào)酸升溫滅酶,分別測(cè)得DE值,將液化液冷卻至60 ℃左右,加入普魯蘭酶20 U/g,β-淀粉酶130 U/g糖化10 h左右后加入α-葡萄糖轉(zhuǎn)苷酶1.5 U/g,水浴加熱35 h后滅酶,用HPLC法測(cè)(IG2+P+IG3)含量。以此確定液化的適宜DE值范圍。
1.2.4 液化單因素實(shí)驗(yàn) 橡子粉用水分別配制濃度為10%、15%、20%、25%、30%,調(diào)節(jié)pH為5.5、6.0、6.5、7.0、7.5,分別加入耐高溫α-淀粉酶8、16、24、32、40 U/g,在80、85、90、95、100 ℃水浴條件下分別加熱10、20、30、40、50 min后調(diào)酸升溫滅酶,測(cè)液化液DE值。
1.2.5 液化條件優(yōu)化實(shí)驗(yàn) 在單因素實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)基礎(chǔ)上,根據(jù)中心組合實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)原理,以DE值為指標(biāo),設(shè)計(jì)4因素3水平Box-Benhnken響應(yīng)面分析實(shí)驗(yàn)[15],數(shù)據(jù)用Design-Expert軟件統(tǒng)計(jì),確定最優(yōu)液化工藝參數(shù)。因素水平表如表1所示。
表1 Box-Benhnken實(shí)驗(yàn)因素水平表Table 1 Factors and levels table of Box-Benhnken experimental design
1.2.6 糖化轉(zhuǎn)苷工藝的優(yōu)化 最佳條件下的液化液,分別加入普魯蘭酶5、10、15、20、25、30 U/g,β-淀粉酶40、70、100、130、160、190 U/g,在45、50、55、60、65 ℃水浴條件下糖化4、6、8、10、12、14 h后于80 ℃下加熱5 min滅酶后加入α-葡萄糖轉(zhuǎn)苷酶1.5 U/g在55 ℃條件下水浴加熱35 h,測(cè)(IG2+P+IG3)含量,根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,進(jìn)行L9(34)的正交實(shí)驗(yàn),獲取最佳糖化工藝條件;最后以(IG2+P+IG3)含量為指標(biāo),加入0.5、1.0、1.5、2.0、2.5 U/g的α-葡萄糖轉(zhuǎn)苷酶,在55 ℃條件下水浴加熱35 h,考察不同的α-葡萄糖轉(zhuǎn)苷酶添加量對(duì)(IG2+P+IG3)含量的影響。
1.2.7 酶活力的測(cè)定 耐高溫α-淀粉酶酶活力的測(cè)定:參考GB/T 24401-2009;β-淀粉酶酶活力的測(cè)定:分光光度計(jì)法[16];普魯蘭酶酶活力的測(cè)定:分光光度計(jì)法[17]。
1.2.8 DE值的測(cè)定 參考GB/T 5009.7-2008《食品中還原糖含量的測(cè)定》直接滴定法;固形物含量的測(cè)定:采用阿貝折射儀,DE值按照公式(1)計(jì)算。
式(1)
1.2.9 低聚異麥芽糖中(IG2+P+IG3)含量的測(cè)定 LC-10A高效液相色譜儀檢測(cè)制備的低聚異麥芽糖中各糖組分含量。色譜條件為:色譜柱:Waters ultrahydrogel(7.8 mm×300 mm);柱溫:40 ℃;流動(dòng)相:超純水;進(jìn)樣量:10 μL;流速:0.8 mL/min。以標(biāo)準(zhǔn)樣品保留時(shí)間定性,以峰面積歸一化定量。
1.3數(shù)據(jù)處理
利用Design Expert 8.0軟件中的Box-Benhnken Design模型,對(duì)酶添加量、液化溫度、液化pH、底物濃度4個(gè)因素進(jìn)行響應(yīng)面分析,并對(duì)所獲得的響應(yīng)面回歸模型進(jìn)行顯著性檢驗(yàn);并采用Microsoft Excel 2003和Origin 8.6進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。
2.1液化實(shí)驗(yàn)
2.1.1 液化適宜DE值范圍的確定 當(dāng)DE值過低時(shí),液化不完全導(dǎo)致液化液粘度大,反應(yīng)效率降低,從而不利于接下來糖化的進(jìn)行;而當(dāng)DE值過大時(shí),液化液中的糊精較多,不利于之后糖化過程中大量麥芽糖的產(chǎn)生,所以控制液化液的DE值范圍為10%~16%的反應(yīng)進(jìn)度[18]。由圖1可以看出,當(dāng)DE值在7%~13%時(shí),(IG2+P+IG3)含量是逐漸增加的,這是因?yàn)镈E值較低時(shí),呈近凝膠狀,且淀粉顆粒沒有水解為糊精等小分子物質(zhì),不利于下一步工藝的進(jìn)行;當(dāng)DE值在13%~17%時(shí),(IG2+P+IG3)含量減少,這是因?yàn)镈E值越大在糖化過程中會(huì)產(chǎn)生過多的葡萄糖致使(IG2+P+IG3)含量減少[19]。因此,以DE值13%為液化指標(biāo)。
圖1 液化DE值與(IG2+P+IG3)含量的關(guān)系Fig.1 The relationship between DE of liquefying liquor and the content of(IG2+P+IG3)
2.1.2 單因素實(shí)驗(yàn)
圖2 液化時(shí)間對(duì)液化液DE值的影響Fig.2 Effect of liquefying time on DE of liquefying liquor
2.1.2.1 液化時(shí)間對(duì)液化液DE值的影響 由圖2可以看出,隨著液化時(shí)間的增加,DE值也逐漸增大,當(dāng)液化時(shí)間>40 min時(shí),DE值增長變緩,其原因是耐高溫α-淀粉酶隨機(jī)水解淀粉內(nèi)部的α-1,4葡萄糖苷鍵,對(duì)長鏈淀粉水解速度比短鏈淀粉更快速且更有活性[20],當(dāng)液化到一定時(shí)間時(shí),液化液中的短鏈淀粉增多,因此水解速度變慢。與此同時(shí),耐高溫α-淀粉酶先作用于直鏈淀粉而后作用于支鏈淀粉,生成葡萄糖、麥芽糖和糊精[21]。選定液化DE值在13%為宜,因此最佳液化時(shí)間在20~30 min。
2.1.2.2 液化溫度對(duì)液化液DE值的影響 由圖3可以看出,隨著液化溫度的高,DE值也逐漸增大,當(dāng)溫度達(dá)95 ℃左右時(shí)酶活力達(dá)到最佳狀態(tài),且DE值達(dá)到最佳范圍。其原因?yàn)闇囟葘?duì)酶活性以及對(duì)淀粉的糊化作用破壞了其晶體結(jié)構(gòu)的影響。此時(shí)滿足DE值的要求,因此其最適液化溫度為95 ℃左右。
圖3 液化溫度對(duì)液化液DE值的影響Fig.3 Effect of liquefying temperature on DE of liquefying liquor
2.1.2.3 液化pH對(duì)液化液DE值的影響 由圖4可以看出,隨著pH的升高,DE值也逐漸增大,當(dāng)pH升至6.5時(shí),DE值達(dá)到最佳范圍,這是因?yàn)閜H的變化影響著耐高溫α-淀粉酶的酶活力以及淀粉的糊化作用。故選取最適液化pH為6.5左右。
圖4 液化pH對(duì)液化液DE值的影響Fig.4 Effect of liquefying pH on DE of liquefying liquor
2.1.2.4 底物濃度對(duì)液化液DE值的影響 由圖5可以看出,隨著底物濃度的逐漸增大,DE值也逐漸增大,當(dāng)?shù)孜餄舛冗_(dá)25%時(shí),DE值達(dá)到最大值,且只有在最大底物濃度時(shí)才能達(dá)到最佳DE值范圍。底物濃度繼續(xù)增大,DE值開始下降,其原因?yàn)榈孜餄舛冗^大時(shí),由于橡子粉的獨(dú)特結(jié)構(gòu)性質(zhì),易形成膠凝體及結(jié)塊,不利于耐高溫α-淀粉酶對(duì)其進(jìn)行酶解[22],故選擇最佳底物濃度為25%。
圖5 底物濃度對(duì)液化液DE值的影響Fig.5 Effect of the substrate content on DE of liquefying liquor
2.1.2.5 酶添加量對(duì)液化液DE值的影響 由圖6可以看出,隨著酶添加量的逐漸增加,DE值也逐漸增大,當(dāng)酶添加量達(dá)到32 U/g時(shí),DE值得到最大,之后稍微下降。這是由于隨著酶添加量的增加,水解作用就逐漸增強(qiáng)。選取DE值在13%,因此選擇耐高溫α-淀粉酶的添加量范圍為16 U/g左右最佳。
圖6 酶添加量對(duì)液化液DE值的影響Fig.6 Effect of the quantity of enzyme on DE of liquefying liquor
2.1.3 響應(yīng)面優(yōu)化及結(jié)果分析 設(shè)計(jì)表2中29個(gè)實(shí)驗(yàn),中心實(shí)驗(yàn)進(jìn)行5次用來估計(jì)實(shí)驗(yàn)誤差,其余為析因點(diǎn)??刂频孜餄舛葹?5%。具體設(shè)計(jì)組合及實(shí)驗(yàn)結(jié)果如表2所示。
表2 Box-Benhnken響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 2 Box-Benhnken experimental design arrangement and results
表3 響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)回歸模型方差分析Table 3 Analysis of variance with regression model
利用設(shè)計(jì)軟件Design-Expert對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行多元回歸擬合,獲得液化時(shí)間(A)、液化溫度(B)、液化pH(C)和酶添加量(D)的二次多項(xiàng)回歸方程為:
DE(%)=13.04+0.47A+0.25B+0.088C+0.15D-1.47A2-0.92B2-0.44C2-0.33D2+0.21AB+0.09AC-0.32AD+0.065BC+0.21BD-0.16CD
以DE值13%為優(yōu)化目標(biāo)值,得到最優(yōu)的液化條件為:液化時(shí)間31.1 min、液化溫度94.75 ℃、液化pH6.575、酶添加量13.44 U/g。
為檢驗(yàn)實(shí)驗(yàn)方案的準(zhǔn)確性,結(jié)合生產(chǎn)實(shí)際,將各因素調(diào)整為:液化時(shí)間31 min、液化溫度95 ℃、液化pH6.6、酶添加量13 U/g。在此條件下通過5次平行實(shí)驗(yàn)進(jìn)行驗(yàn)證,液化液的平均DE值為12.91%,與目標(biāo)值較為吻合。
圖7中AB的曲面圖表明液化時(shí)間和液化溫度的交互作用較強(qiáng),在液化pH為6.5、酶添加量為16 U/g時(shí),若液化溫度一定,則隨著液化時(shí)間的增加,液化液DE值先增大后逐漸減小。若液化時(shí)間一定,則隨著液化溫度的升高,液化液DE值先增大后減小;AD的曲面圖表明液化時(shí)間和酶添加量的交互作用較強(qiáng),在液化溫度為95 ℃、液化pH為6.5時(shí),若酶添加量一定,則隨著液化時(shí)間的增加,液化液DE值先增大后趨于平穩(wěn)。若液化時(shí)間一定,則隨著酶添加量的增大,液化液DE值逐漸減小。
圖7 AB、AD交互作用對(duì)液化液DE值的影響Fig.7 Effects of AB and AD interaction on DE of liquefying liquor
2.2糖化轉(zhuǎn)苷實(shí)驗(yàn)
2.2.1 糖化單因素實(shí)驗(yàn)
圖8 普魯蘭酶添加量對(duì)(IG2+P+IG3)含量的影響Fig.8 Effect of the quantity of pullulanase on the content of(IG2+P+IG3)
2.2.1.1 普魯蘭酶及β-淀粉酶添加量對(duì)(IG2+P+IG3)含量的影響 由圖8和圖9可以看出,普魯蘭酶添加量的逐漸增加,會(huì)使(IG2+P+IG3)含量極速增大,在添加量為20 U/g時(shí),(IG2+P+IG3)含量達(dá)到最大,此后稍有下降,這可能是因?yàn)槠蒸斕m酶在糖化體系中已達(dá)到飽和。普魯蘭酶作為一種脫支酶,添加量要適中,用量太少時(shí)不能夠切斷糊精中所有的α-1,6糖苷鍵,殘余的支鏈片段可能干擾β-淀粉酶和α-葡萄糖轉(zhuǎn)苷酶的作用從而產(chǎn)生較多的葡萄糖,因此最佳普魯蘭酶添加量為20 U/g;β-淀粉酶是一種外切酶,從淀粉側(cè)鏈的非還原端開始水解相隔的α-1,4糖苷鍵,依次切下一個(gè)麥芽糖單位,但它不能水解α-1,6糖苷鍵[23],當(dāng)β-淀粉酶添加量逐漸增加時(shí),(IG2+P+IG3)含量也逐漸增大,當(dāng)添加量達(dá)到130 U/g時(shí),(IG2+P+IG3)含量達(dá)到最大,之后稍有下降。
圖9 β-淀粉酶添加量對(duì)(IG2+P+IG3)含量的影響Fig.9 Effect of the quantity of glucoamylase on the content of(IG2+P+IG3)
2.2.1.2 溫度對(duì)(IG2+P+IG3)含量的影響 由圖10可以看出,溫度為60 ℃時(shí)(IG2+P+IG3)含量達(dá)到最大,超過60 ℃后(IG2+P+IG3)含量下降可能是因?yàn)槊冈跍囟容^高時(shí)被鈍化影響了酶的活性,因此最佳溫度為60 ℃。
圖10 溫度對(duì)(IG2+P+IG3)含量的影響Fig.10 Effect of temperature on the content of(IG2+P+IG3)
2.2.1.3 時(shí)間對(duì)(IG2+P+IG3)含量的影響 由圖11可以看出,當(dāng)糖化時(shí)間超過10 h后,(IG2+P+IG3)含量開始趨于穩(wěn)定,這是因?yàn)榉磻?yīng)至一定時(shí)間后,底物濃度會(huì)相對(duì)降低,所以酶反應(yīng)也會(huì)減速,因此考慮生產(chǎn)效率問題,選擇10 h為最適糖化時(shí)間。
2.2.2 正交實(shí)驗(yàn)及結(jié)果分析 由表4極差分析可知,因素對(duì)橡子粉糖化工藝的影響程度順序依次為:A>D>B>C,橡子粉糖化工藝過程最佳工藝條件為:A3B2C2D2,即普魯蘭酶添加量25 U/g、β-淀粉酶添加量130 U/g、溫度60 ℃、時(shí)間10 h,在此工藝條件下進(jìn)行三次平行實(shí)驗(yàn)后得到最佳條件下的(IG2+P+IG3)含量為36.11%±0.17%,此時(shí)橡子粉糖化效果最好。
表5 反應(yīng)產(chǎn)物中低聚異麥芽糖成分Table 5 Elements of isomaltooligosaccharides products
圖11 時(shí)間對(duì)(IG2+P+IG3)含量的影響Fig.11 Effect of time on the content of(IG2+P+IG3)
注:G. Glucose(葡萄糖);M. Maltose(麥芽糖);IG2. Isomaltose(異麥芽糖);P. Panose(潘糖);IG3. Isomaltotriose(異麥芽三糖)。
表4 正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 4 Design and results of orthogonal experiment
2.3轉(zhuǎn)苷實(shí)驗(yàn)
α-葡萄糖轉(zhuǎn)苷酶能催化雙糖、低聚糖和其他類似物的非還原端α-1,4糖苷鍵斷裂,釋放出D-葡萄糖;也能專一地進(jìn)行糖苷鍵轉(zhuǎn)移反應(yīng),將葡萄糖苷轉(zhuǎn)移到糖類受體底物上形成α-1,6糖苷鍵。如圖12所示,隨著酶添加量的逐漸增加,通過HPLC檢測(cè)出IG2、P、IG3含量,觀察不同α-葡萄糖轉(zhuǎn)苷酶添加量下的變化。酶添加量為1.5 U/g時(shí),IG2、P、IG3含量達(dá)到最大,且異麥芽糖含量占的比例最大,之后隨著酶添加量增加逐漸減小,且異麥芽三糖所占比例越來越小,這是因?yàn)殡S著轉(zhuǎn)苷酶添加量的增加,就有更多的轉(zhuǎn)苷酶將麥芽糖和麥芽三糖轉(zhuǎn)苷為異麥芽糖、潘糖和異麥芽三糖,但是α-葡萄糖轉(zhuǎn)苷酶的作用底物可以為麥芽二糖~八糖,其中異麥芽糖、潘糖和異麥芽三糖都是其的底物,當(dāng)酶過量時(shí),就會(huì)開始降解異麥芽糖、潘糖和異麥芽三糖,其中的三糖開始降解為雙糖[24-25]。
圖12 α-葡萄糖轉(zhuǎn)苷酶添加量對(duì)IG2、P、IG3含量的影響Fig.12 Effect of α-transglucosidase dosage on the content of IG2,P and IG3
當(dāng)酶添加量為1.5 U/g,制得的樣品經(jīng)HPLC法檢測(cè),由表5可以看出,樣品中以麥芽糖(M)居多,含有少量的葡萄糖(G)。麥芽糖含量為52.6%±0.14%,葡萄糖含量為11.13%±0.22%,(IG2+P+IG3)含量約為36.27%±0.18%。
利用橡子粉制備低聚異麥芽糖,確定了液化最佳工藝條件為液化時(shí)間31 min、液化溫度95 ℃、pH6.6、耐高溫α-淀粉酶添加量13 U/g,此條件下所得液化液DE值為12.91%;糖化最佳工藝條件為糖化溫度60 ℃、糖化時(shí)10 h、加酶量(β-淀粉酶130 U/g,普魯蘭酶25 U/g),此條件下所得(IG2+P+IG3)含量為36.11%±0.17%;轉(zhuǎn)苷工藝過程最佳α-葡萄糖轉(zhuǎn)苷酶添加量為1.5 U/g,制備的低聚異麥芽糖中異麥芽糖、潘糖和異麥芽三糖之和(IG2+P+IG3)為36.27%±0.18%,符合由中國發(fā)酵工業(yè)協(xié)會(huì)擬定的低聚異麥芽糖產(chǎn)品的相關(guān)標(biāo)準(zhǔn),即異麥芽糖(IG2)、潘糖(P)、異麥芽三糖(IG3)占總糖的百分比之和≥35%[26]。
[1]張志健,王勇. 我國橡子資源開發(fā)利用現(xiàn)狀與對(duì)策[J]. 氨基酸和生物資源,2009,31(3):10-14.
[2]張志健,李新生,陳銳. 橡子單寧脫除技術(shù)的比較研究[J].食品科技,2008(9):24-27.
[3]張玥,謝文霽,楊可心,等. 我國橡子資源的開發(fā)利用[J].中國林副特產(chǎn),2014(4):85-88.
[4]鐘昔陽,張景強(qiáng). 橡子涼粉的研制[J]. 食品科技,2002(12):26-27.
[5]王繼偉. 橡子餅干的研制[J]. 食品工業(yè)科技,2002(1):81-82.
[6]Kim W W,Yoo B. Rheological behaviour of acorn starch dispersions:effects of concentration and temperature[J]. International Journal of Food Science & Technology,2009,44(3):503-509.
[7]高立瓊,陳麗冰,楊倩,等. 橡子淀粉制備及其理化性質(zhì)研究[J]. 食品科技,2015(4):215-218.
[8]李樊. 橡實(shí)淀粉凝沉特性與晶體特性研究[D]. 長沙:中南林業(yè)科技大學(xué),2013.
[9]趙凱,張守文,方桂珍. 低聚異麥芽糖的特性及其在低糖冰淇淋中的應(yīng)用研究[J]. 食品科學(xué),2003,24(1):73-75.
[10]Patel S,Goyal A. Functional oligosaccharides:production,properties and applications[J]. World Journal of Microbiology and Biotechnology,2011,27(5):1119-1128.
[11]趙晉,王嬌,闞健全. 低聚異麥芽糖生理功能及應(yīng)用的研究進(jìn)展[J]. 食品研究與開發(fā),2007,28(2):166-170.
[12]田康明,喬艦,李普均,等. 快速酶法制備低聚異麥芽糖工藝建立與優(yōu)化[J]. 食品工業(yè)科技,2016(16):41.
[13]黎躍紅,萬全玉,鐘衛(wèi)兵. 利用碎米生產(chǎn)低聚異麥芽糖新工藝研究[J]. 糧食加工,2010(6):42-43.
[14]萬洋靈,郭順堂. 橡子全粉與淀粉糊化性質(zhì)和消化性的研究[J]. 食品科技,2013,38(12):204-208.
[15]Huang Z L,Liang Z Y,Li G J,et al. Response surface methodology to extraction of dioscoreae polysaccharides and the effects on rat’s bone quality[J]. Carbohydrate Polymers,2011,83(1):32-37.
[16]李雯,邵遠(yuǎn)志,陳維信. 淀粉酶活性測(cè)定方法的改進(jìn)[J]. 植物生理學(xué)通訊,2005,41(5):655-656.
[17]朱夢(mèng),孫海彥,彭明. 普魯蘭酶產(chǎn)生菌的篩選鑒定與發(fā)酵條件的研究[J]. 食品研究與開發(fā),2011,32(7):136-140.
[18]葉紅玲,杜先鋒. 全酶法制備超高麥芽糖漿工藝[J]. 食品科學(xué),2010(20):15-19.
[20]Ramesh M V,Lonsane B K. Critical importance of moisture content of the medium in alpha-amylase production by Bacillus licheniformis M27 in a solid-state fermentation system[J]. Applied Microbiology and Biotechnology,1990,33(5):501-505.
[21]Marchal L M,Jonkers J,Franke G T,et al. The Effect of Process Conditions on the a-Amylolytic Hydrolys is of Amylopectin Potato Starch An Experimental Design Approach[J].Biotechnology and Bioengineering,1999,62(3):348-357.
[22]Stevenson D G,Jane J,Inglett G E. Physicochemical properties of pin oak(Quercus palustris Muenchh.)acorn starch[J]. Starch St?rke,2006,58(11):553-560.
[23]周春海. 小麥β-淀粉酶生產(chǎn)啤酒用糖漿糖化工藝條件的優(yōu)化[J]. 現(xiàn)代食品科技,2012(3):15.
[24]Zhang L,Jiang Y,Jiang Z,et al. Immobilized transglucosidase in biomimetic polymer-inorganic hybrid capsules for efficient conversion of maltose to isomaltooligosaccharides[J]. Biochemical Engineering Journal,2009,46(2):186-192.
[25]符瓊. 大米淀粉酶法制備低聚異麥芽糖的研究[D]. 長沙:中南林業(yè)科技大學(xué),2011.
[26]鮑元興,楊維亞,孫蔚榕. 低聚異麥芽糖的質(zhì)量與工藝設(shè)備[J]. 食品工業(yè),1999(3):8-9.
Studyonthepreparationofisomalto-oligosaccharidebyenzymaticmethodsofacornstarch
ZHANGZhi1,LIQing1,HUAHong-ling1,YINWen-zhe2,LIJie3,MAJian-zhang1,*
(1.Northeast Forestry University,Harbin 150040,China; 2.Second Affiliated Hospital of Harbin Medical University,Harbin 150086,China; 3.Northeast Agricultural University,Harbin 150030,China)
With the acorn starch as raw material,the process of preparation of isomalto-oligosaccharide by enzymatic methods were optimized in order to increase the content of isomaltose,panose and isomaltotriose of isomalto-oligosaccharide. Box-Benhnken response surface analysis method was used to optimize the process conditions of liquefying acorn starch with thermostableα-amylase.The results showed that the DE value of 13% as the best liquefaction index,the optimal liquefaction conditions were 31 min of liquefaction time,95 ℃ of liquefaction temperature,6.6 of liquefying pH value,13 U/g of thermostableα-amylase,at this point,in combination with the production practice,the value of the liquefied liquid DE was 12.91%,then through single factor experiments,the process conditions of saccharifying acorn starch liquefying liquor with pullulanase and glucoamylase were investigated,the saccharification conditions were optimized to be 25 U/g of pullulanase,130 U/g of glucoamylase,60 ℃ of saccharification temperature and 10 h of saccharification time,at this optimal condition,the content of(IG2+P+IG3)was predicted to 36.11%±0.17%,the optimum concentration ofα-glucosidase in transglycosylation process was 1.5 U/g,under the optimal condition,the total content of isomaltose,panose,and isomaltotriose were 36.27%±0.18%.
isomalto-oligosaccharide;acorn starch;liquefaction;saccharification;transglycosylation;technology
2017-03-10
張智 (1964-),女,博士,教授,研究方向:微生物于發(fā)酵工程,E-mail:ldzhangzhi@163.com。
*
馬建章 (1937-),男,博士,院士,研究方向:野生動(dòng)物生態(tài)與管理,E-mail:lq_233@163.com。
大熊貓益生菌制劑的研究(SG1409);黑龍江省應(yīng)用技術(shù)研究與開發(fā)計(jì)劃項(xiàng)目(GA15B203)。
TS210.9
B
1002-0306(2017)21-0151-07
10.13386/j.issn1002-0306.2017.21.031