【摘要】本文對傳統(tǒng)的考馬斯亮藍(lán)測定蛋白質(zhì)濃度的方法存在的問題進(jìn)行了探討,并從減少實(shí)驗(yàn)誤差的前提下對實(shí)驗(yàn)細(xì)節(jié)進(jìn)行了改進(jìn),并使該實(shí)驗(yàn)成為設(shè)計(jì)嚴(yán)謹(jǐn)、操作簡便、數(shù)據(jù)可靠的生物化學(xué)實(shí)驗(yàn)。
【關(guān)鍵詞】蛋白質(zhì)濃度 比色法 考馬斯亮藍(lán)
【中圖分類號】G64 【文獻(xiàn)標(biāo)識碼】A 【文章編號】2095-3089(2017)38-0248-01
考馬斯亮藍(lán)法測定蛋白質(zhì)濃度是生物化學(xué)中的經(jīng)典實(shí)驗(yàn),是利用蛋白質(zhì)-染料結(jié)合的原理,定量的測定微量蛋白濃度的快速、靈敏的方法。
1.考馬斯亮藍(lán)法測定蛋白質(zhì)濃度實(shí)驗(yàn)的基本原理
考馬斯亮藍(lán)G250的磷酸溶液呈棕紅色,最大吸收峰在465nm處。當(dāng)與蛋白質(zhì)結(jié)合時(shí),溶液變成藍(lán)色,其最大吸收峰變?yōu)?95nm,并且考馬斯亮藍(lán)G250-蛋白質(zhì)復(fù)合物的高消光效應(yīng)導(dǎo)致了蛋白質(zhì)定量分析的高靈敏度。
依據(jù)朗伯-比爾定律,在一定濃度范圍內(nèi),考馬斯亮藍(lán)G250-蛋白質(zhì)復(fù)合物的吸光度與蛋白質(zhì)含量呈線性關(guān)系,其關(guān)系式為:A=kbC復(fù)合物,式中,A為吸光度,k為摩爾吸光系數(shù),b為吸收層厚度,C復(fù)合物為考馬斯亮藍(lán)G250-蛋白質(zhì)復(fù)合物的濃度。
如下圖表格所示,取8支干凈試管,并編號0-7。其中0號試管作為空白對照;1-6號試管按下表配方依次添加各種試劑,包括不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)蛋白溶液;7號試管裝有未知蛋白液樣品。按比例混勻后,室溫靜置3min,于波長595nm處測得8支試管的吸光度值。取0-6號試管的吸光度值,以吸光度為縱坐標(biāo),各標(biāo)準(zhǔn)蛋白液濃度(ug/ml)為橫坐標(biāo)作圖,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線;再根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出考馬斯亮藍(lán)G250-蛋白質(zhì)復(fù)合物的摩爾吸光系數(shù)k=A/bC復(fù)合物;最后將7號試管中未知蛋白液的吸光度代入公式C復(fù)合物=A/kb,即得求得蛋白質(zhì)濃度。
2.實(shí)驗(yàn)中存在的問題
(1)該實(shí)驗(yàn)需要使用可見光分光光度計(jì)完成比色測定,學(xué)生初次使用可見光分光光度計(jì)進(jìn)行比色測定,操作技術(shù)和流程不夠熟悉,耗時(shí)較長,往往不易獲得好的數(shù)據(jù)。
(2)該實(shí)驗(yàn)中所使用的試劑,例如:考馬斯亮藍(lán)溶液、標(biāo)準(zhǔn)蛋白液、NaCl溶液等等,以及純水中存在著殘留蛋白質(zhì),也會對實(shí)驗(yàn)造成干擾,影響標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制結(jié)果。
(3)該實(shí)驗(yàn)中,0號試管中沒有加入任何蛋白液,作為空白組,理論上吸光度值為零,而實(shí)際測量中,由于溶液中殘留的蛋白質(zhì)、吸收池以及儀器的系統(tǒng)誤差影響等,即使不加蛋白液,也存在著一定的可見光吸收,與朗伯-比爾定律計(jì)算公式A=kbC復(fù)合物的理論值不一致,從而造成標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制誤差。
(4)依據(jù)朗伯-比爾定律理論,溶液的濃度會導(dǎo)致定律發(fā)生偏離,即僅在一定濃度范圍內(nèi),考馬斯亮藍(lán)G250-蛋白質(zhì)復(fù)合物的吸光度與蛋白質(zhì)含量呈線性關(guān)系。
(5)在未知蛋白液的吸光度測量時(shí),只有一個(gè)樣本,受系統(tǒng)誤差和人為誤差影響較大。
3.實(shí)驗(yàn)的改進(jìn)及解決方法
(1)給可見光分光光度計(jì)配備多聯(lián)池(最好六個(gè)樣品池),待繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線時(shí),僅需1次完成比色測定,大大提高檢測效率,并且6個(gè)不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)品溶液幾乎同時(shí)測定,可消除考馬斯亮藍(lán)G250-蛋白質(zhì)復(fù)合物的凝集沉淀影響。
(2)該實(shí)驗(yàn)中所提到的試劑配制,例如:考馬斯亮藍(lán)溶液、標(biāo)準(zhǔn)蛋白液、NaCl溶液等等,以及所用到的純水均采用重蒸水,可最大限度的降低殘留蛋白質(zhì)對本實(shí)驗(yàn)的干擾。
(3)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線時(shí),以0號試管(不加入任何蛋白質(zhì)樣品)作參照,當(dāng)不加任何蛋白質(zhì)溶液時(shí),手動設(shè)置吸光度值為零。在此基礎(chǔ)上,再測量標(biāo)準(zhǔn)蛋白液(1-6號試管)和未知蛋白液的吸光度值,從而盡可能減少對標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制的影響。
(4)在測定未知蛋白液的蛋白質(zhì)濃度時(shí),可安排兩次完成。第一次測定時(shí),依據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出未知蛋白液中蛋白質(zhì)濃度的大致數(shù)值;第二次測定時(shí)依據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線的良好線性范圍,對未知溶液作適當(dāng)?shù)南♂?,使之處于測量的最佳濃度范圍,從而獲得較為精確的數(shù)值。
(5)未知蛋白液準(zhǔn)備三份,分別測定,最后取平均值,以盡可能減小系統(tǒng)誤差和人為誤差。
作者簡介:
毛伍祥(1986-),男,博士,講師,主要從事生物化學(xué)與分子生物學(xué)。endprint