,,
(江南大學(xué)工業(yè)生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇無(wú)錫 214122)
亮氨酸氨肽酶的制備及在大米肽脫苦中的協(xié)同應(yīng)用
朱強(qiáng),吳警濤,田亞平*
(江南大學(xué)工業(yè)生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇無(wú)錫 214122)
采用絮凝、超濾和冷凍干燥組合的方法制備重組枯草芽孢桿菌亮氨酸氨肽酶,以氨肽酶切除末端疏水性氨基酸為酶解脫苦效果的指標(biāo),考察了該氨肽酶與脯氨酸氨肽酶協(xié)同水解大米肽的脫苦效果。酶的制備工藝條件如下:加入0.15%±0.008%的絮凝劑,2.5%±0.006%的硅藻土,調(diào)節(jié)pH8.0進(jìn)行過(guò)濾,采用30 kDa的PES卷式膜,超濾濃縮7倍,氨肽酶的總回收率為64.69%±1.29%;在優(yōu)化的酶解條件下,大米肽的酶解液中的亮氨酸、精氨酸及游離的疏水性氨基酸總量分別是酶解前的3.39±0.10、16.48±0.49、4.39±0.13倍,酶解后分子量500~1000 Da的肽含量降低了30.63%±0.61%,經(jīng)雙酶協(xié)同水解后脯氨酸含量是單酶水解后的1.78±0.07倍。優(yōu)化后工藝簡(jiǎn)便,且該酶在大米肽脫苦中有良好的應(yīng)用。
亮氨酸氨肽酶,提取,回收率,協(xié)同水解,疏水性氨基酸
細(xì)菌發(fā)酵液中實(shí)現(xiàn)菌體分離有高速離心法,絮凝法,膜過(guò)濾法等,但細(xì)菌菌體較小,離心需要較高轉(zhuǎn)速,設(shè)備昂貴,不易放大,而膜過(guò)濾法雖然容易放大但膜孔也易被細(xì)小細(xì)菌堵塞,所以細(xì)菌發(fā)酵液常需選擇絮凝法。程璐等[1]人在乳桿菌發(fā)酵液中加入硫酸鋁進(jìn)行了絮凝預(yù)處理,絮凝率達(dá)到68%,絮凝效果良好,更利于后續(xù)的提取。曹松龍等[2]利用18%的硫酸銨澄清枯草芽孢桿菌發(fā)酵液,使菌體絮凝,再利用超濾法提取氨肽酶,回收率為67.15%??追宓萚3]利用雙水相萃取和超濾法提取枯草芽孢桿菌發(fā)酵液中的氨肽酶,其超濾回收率為85.01%,表明超濾法在氨肽酶提取中有較好的應(yīng)用。
氨肽酶是一種很重要的風(fēng)味蛋白酶,可解離N末端的疏水性氨基酸而被用于蛋白水解液的脫苦[4-6]。大米肽主要由多種多肽分子混合物所組成,以及其它少量的游離氨基酸、糖類(lèi)和無(wú)機(jī)鹽等,具有降血壓、抗氧化、促脂肪代謝及增強(qiáng)體能和恢復(fù)疲勞等作用[7-8]。目前,利用酶法制備活性肽時(shí),蛋白水解液往往產(chǎn)生一些苦味,嚴(yán)重影響其品質(zhì)[9-11]。T.K.Murry和Baker等[12]證明苦味是由多肽而不是游離氨基酸產(chǎn)生的。K.N.Ney等[13]研究進(jìn)一步表明了苦味是由于多肽鏈上疏水性氨基酸引起的。馬鐵錚等[14]研究發(fā)現(xiàn):除了Leu,Pro等疏水性氨基酸殘基對(duì)苦味有影響,尤其Arg在N末端的肽是極苦的,去除多肽末端疏水性氨基酸及Arg等堿性氨基酸就可降低苦味,但未研究酶法脫苦效果。魏亞娟等[15]研究了氨肽酶與堿性蛋白酶對(duì)大豆分離蛋白的協(xié)同水解作用,發(fā)現(xiàn)水解液幾乎不呈現(xiàn)苦味,未研究多種外切酶協(xié)同水解去除酶解液中的苦味。
表1 真空冷凍干燥參數(shù)Table 1 Parameters of vacuum freeze drying
本實(shí)驗(yàn)建立了絮凝法與超濾法相結(jié)合,易于規(guī)?;a(chǎn)的氨肽酶的制備工藝,為工業(yè)化生產(chǎn)提供了理論基礎(chǔ),以氨肽酶切除多肽末端疏水性氨基酸為脫苦效果的指標(biāo),確定了亮氨酸氨肽酶酶解大米肽脫苦的最適條件,進(jìn)一步考察了亮氨酸與脯氨酸氨肽酶協(xié)同水解大米肽脫苦的效果,為后續(xù)研究亮氨酸氨肽酶的復(fù)配應(yīng)用具有一定的意義。
1.1材料與儀器
枯草芽孢桿菌發(fā)酵液、脯氨酸氨肽酶、亮氨酸氨肽酶 實(shí)驗(yàn)室自制;L-亮氨酸-對(duì)硝基苯胺(AR) 美國(guó)Alfa公司;陽(yáng)離子絮凝劑、硅藻土 江蘇泰州市博立生物制品有限公司。
SHZ-22電熱恒溫水浴鍋 上海醫(yī)療器械五廠(chǎng);2L超濾設(shè)備FILTECH-UF101型 上海弗立特實(shí)業(yè)有限公司;UV-1600PC紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì) 上海美普達(dá)有限公司;不銹鋼板框過(guò)濾器 溫州展博設(shè)備制造有限公司;真空冷凍干燥機(jī) 寧波新芝生物科技股份有限公司;Delter320pH計(jì) 梅特勒-托利多公司;數(shù)顯恒溫磁力攪拌器 江蘇科析儀器有限公司。
1.2實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 亮氨酸氨肽酶的制備 本課題組原有建立的對(duì)氨肽酶的制備工藝為:發(fā)酵液低速離心雙水相萃取超濾濃縮獲得酶液等步驟,由于規(guī)?;a(chǎn),發(fā)酵液離心能耗大,不利于工廠(chǎng)操作,在此基礎(chǔ)上建立一種新的制備工藝:發(fā)酵液絮凝→板框壓濾機(jī)過(guò)濾→超濾濃縮→真空冷凍干燥→粉碎過(guò)篩→獲得酶粉。新工藝操作簡(jiǎn)單,設(shè)備投資低,維護(hù)及保養(yǎng)成本低,更利于大規(guī)模生產(chǎn)。
1.2.1.1 發(fā)酵液絮凝單因素實(shí)驗(yàn) 固定硅藻土的添加量為1.5%、絮凝劑的添加量為0.15%,考察不同pH對(duì)絮凝時(shí)氨肽酶回收率的影響;固定硅藻土添加量1.5%、固定pH7.0考察絮凝劑的添加量對(duì)絮凝時(shí)氨肽酶回收率的影響;固定絮凝劑添加量0.15%、固定pH7.0考察硅藻土添加量對(duì)絮凝時(shí)氨肽酶回收率的影響。
1.2.1.2 發(fā)酵濾液的超濾濃縮 將經(jīng)過(guò)絮凝且過(guò)濾的發(fā)酵液加入超濾系統(tǒng)中,選擇操作壓力為0.25 MPa,pH6.5考察濃縮倍數(shù)(2、3、4、5、6、7)對(duì)氨肽酶回收率和膜通量以及比酶活的影響。
1.2.1.3 濃縮液的冷凍干燥 將1.2.1.2超濾的冷濃縮液進(jìn)行冷凍干燥,粉碎,過(guò)篩(200目),獲得亮氨酸氨肽酶酶粉,后置于-4 ℃儲(chǔ)存,其冷凍干燥參數(shù)如表1所示。
1.2.2 膜通量的測(cè)定 發(fā)酵液膜通量的測(cè)定:在超濾系統(tǒng)中加入預(yù)處理的發(fā)酵液,待壓力穩(wěn)定后(操作壓力0.2 MPa),計(jì)時(shí)2 min,收集透過(guò)液并量體積,計(jì)算膜通量。膜通量公式:
式(1)
式(1)中:J-式中:膜通量(L/(m2·h));V-取樣體積(L);T-取樣時(shí)間(h);A-膜有效面積(m2)
1.2.3 蛋白質(zhì)含量的測(cè)定 利用考馬斯亮藍(lán)法[16-18]測(cè)定亮氨酸氨肽酶發(fā)酵過(guò)程中發(fā)酵液中的蛋白質(zhì)含量,以牛血清蛋白作為標(biāo)準(zhǔn)蛋白,標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)方程為:
Y=146.43x-1.5000(R2=0.998)
式(2)
式(2)中:Y為波長(zhǎng)595 nm 處測(cè)定的吸光值;X為蛋白質(zhì)量濃度(ug/mL)。
1.2.4 亮氨酸氨肽酶酶活力測(cè)定 利用LNA法[19]測(cè)定亮氨酸氨肽酶酶活力計(jì)算公式:
式(3)
式(3)中:X-樣品的酶(U/mL);N-于波長(zhǎng)405 nm處測(cè)得吸光度值;Y-酶液稀釋的倍數(shù)。
氨肽酶酶活定義:在以上分析測(cè)定的基礎(chǔ)上,定義一個(gè)酶活單位(U)為,在特定條件下(50 ℃,pH8.5),每分鐘催化分解L-亮氨酸-對(duì)硝基苯胺產(chǎn)生1微摩爾的對(duì)硝基苯胺所需要的酶量。
1.2.5 單酶及雙酶協(xié)同水解在大米肽脫苦中的應(yīng)用
1.2.5.1 亮氨酸氨肽酶水解大米肽 準(zhǔn)確稱(chēng)取大米肽2.5 g,配制成濃度為50 g/L大米肽溶液50 mL,水解溫度50 ℃,加入0.5 g亮氨酸氨肽酶(酶活力9000 U/g)于大米肽溶液中,調(diào)轉(zhuǎn)速至120 r/min,調(diào)節(jié)pH,維持在pH8.3~8.5,酶解4 h,沸水浴10 min,滅酶。
1.2.5.2 亮氨酸和脯氨酸氨肽酶協(xié)同水解大米肽 準(zhǔn)確稱(chēng)取大米肽2.5 g,配制成50 g/L溶液,pH8.5、溫度50 ℃、亮氨酸氨肽酶添加量1800 U/g(E/S)、酶解4 h,沸水浴10 min,冷卻至50 ℃,加入脯氨酸氨肽酶300 U/g、溫度50 ℃、維持pH7.3~7.5、酶解3 h、沸水浴10 min,冷卻,15000 r/mim離心30 min,取上清-4 ℃保存。
1.2.5.3 大米肽的酶解液中多肽分子量分布及氨基酸含量測(cè)定 酶解液12000 r/min 離心10 min,取上清2 mL測(cè)酶解液的多肽分子量分布,取上清1 mL加入等體積的10%的TCA溶液,靜置3 h,15000 r/min,離心10 min,取離心后的上清液400 μL利用氨基酸液相色譜儀(Ag1100)進(jìn)行測(cè)定酶解液中游離的氨基酸含量[20]。
1.3數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析
每組實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,取平均值,采用origin8.5進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。
2.1發(fā)酵液絮凝單因素實(shí)驗(yàn)
2.1.1 絮凝時(shí)發(fā)酵液的pH對(duì)氨肽酶回收率的影響 由圖1所示,絮凝時(shí)的pH對(duì)氨肽酶回收率影響顯著,隨著pH的增加,氨肽酶的回收率先增加后降低,當(dāng)絮凝體系的pH為8.0時(shí),氨肽酶回收率達(dá)到最大,為82.7%±1.65%,由于發(fā)酵液中的pH不同,導(dǎo)致蛋白帶有不同的電荷,絮凝劑也顯示不同的活性,pH8.0時(shí)絮凝劑能將雜蛋白和菌體絮凝成團(tuán),而對(duì)目標(biāo)蛋白的影響較小,故選擇pH8.0為絮凝時(shí)體系的最適pH。
圖1 絮凝時(shí)的pH對(duì)氨肽酶回收率的影響Fig.1 Effect of pH on recovery ofaminopeptidase during flocculation
2.1.2 絮凝劑的添加量對(duì)氨肽酶回收率的影響 圖2中可以看出發(fā)酵液中絮凝劑的添加量影響氨肽酶的回收率,且絮凝劑的添加量為0.15%±0.008%左右時(shí)氨肽酶的回收率最好,為79.83%±2.39%。這是因?yàn)樾跄饔玫脑硎切跄齽┥系墓δ軋F(tuán)和不同的蛋白及菌體等膠粒表面通過(guò)架橋聯(lián)結(jié)結(jié)合,從而產(chǎn)生粗大的絮凝沉淀[21-22]。發(fā)酵液中絮凝劑的添加量增加有助于架橋的充分,但是過(guò)高反而會(huì)引起吸附飽和,在膠粒表面上形成覆蓋層,從而使絮凝體系再次趨于穩(wěn)定,因此發(fā)酵液中絮凝劑的添加量偏高或偏低都達(dá)不到絮凝的效果。
圖2 絮凝劑添加量對(duì)氨肽酶回收率的影響Fig.2 Effect of adding amount of flocculanton recovery of aminopeptidase
2.1.3 硅藻土的添加量對(duì)氨肽酶回收率的影響 由3中可以看出,隨著硅藻土添加量的增加,氨肽酶回收率逐漸降低,當(dāng)添加量大于2.5%±0.006%時(shí)回收率下降迅速,當(dāng)添加量為3.5%±0.008%時(shí),回收率降至58.36%±1.17%,這是因?yàn)楣柙逋撂赜械奶烊弧胺肿雍Y”狀孔隙結(jié)構(gòu),具有較強(qiáng)的吸附性能和離子交換性能,可能吸附了目的蛋白,導(dǎo)致氨肽酶含量降低,絮凝中硅藻土的添加只是起到加速過(guò)濾的作用,考慮濾速及氨肽酶的回收率選擇硅藻土的添加量為2.5%±0.006%。
圖3 硅藻土添加量對(duì)氨肽酶回收率的影響Fig.3 Effect of adding amount ofdiatomite on recovery of aminopeptidase
2.1.4 發(fā)酵液超濾濃縮倍數(shù)的選擇 采用截留分子量為30 kDa的聚醚砜(PES)膜,操作壓力為0.25~0.3 MPa。從表2和圖4中可以看出隨著濃縮倍數(shù)的增加,氨肽酶的回收率與膜通量都有一定幅度的降低,當(dāng)濃縮倍數(shù)由四倍增加到五倍,回收率和膜通量下降較快,主要是開(kāi)始超濾膜膜孔無(wú)堵塞,阻力較小,隨著超濾操作進(jìn)行大分子物質(zhì)在膜表面沉淀使得阻力增加、濃差極化的現(xiàn)象導(dǎo)致膜通量下降顯著。結(jié)合表2,考慮減少后續(xù)冷凍干燥的處理量,選擇發(fā)酵濾液的濃縮倍數(shù)為7,此時(shí)氨肽酶回收率為78.22%±1.41%。由于絮凝后的濾液具有澄清度高等優(yōu)點(diǎn),較離心處理的發(fā)酵液更有利于超濾操作,節(jié)約成本。
2.2單酶及雙酶協(xié)同水解后多肽分子量分布及疏水性氨基酸含量變化
由圖5可以看出,經(jīng)單酶水解后分子量小于180 Da的含量增加了102.04%±3.06%,180~500 Da的肽含量增加了20.42%±0.49%,500~1000 Da的肽含量降低了30.63%±0.70%,1000~2000 Da的肽含量降低了35.60%±0.36%,2000~5000 Da的肽含量降低了32.80%±0.62%,而雙酶協(xié)同與單酶水解相比多肽分子量分布變化不大,只有180~500 Da的肽含量略有增幅,這是由于雙酶中的脯氨酸氨肽酶具備高特異性,只切除多肽鏈N端的脯氨酸殘基。據(jù)文獻(xiàn)[23-24]報(bào)道:分子量大于5000 Da的肽不具苦味,而介于500~1000 Da的短肽苦味最強(qiáng)。
表2 濃縮倍數(shù)對(duì)比酶活的影響Table 2 The influence of concentration multiple on comparison enzyme activity
圖4 濃縮倍數(shù)對(duì)氨肽酶回收率及膜通量的影響Fig.4 Effect of concentration multipleon recovery and membrane flux of aminopeptidase
圖5 酶解前后多肽分子量分布Fig.5 Molecular weight distribution ofpeptides before and after enzymatic hydrolysis
如圖6所示,大米肽經(jīng)過(guò)亮氨酸氨肽酶處理后:Leu、Arg、Lys及游離的疏水性氨基酸含量是酶解前的3.39±0.10、16.48±0.49、22.47±0.67、4.39±0.67倍,表明水解液中游離的疏水性氨基酸含量大幅度提高且其中的Leu、Arg、Lys提高比例最大,符合亮氨酸氨肽酶水解特色;經(jīng)雙酶協(xié)同水解后Pro含量是單酶水解后的1.78±0.07倍,其他疏水性氨基酸增幅較小,符合該酶的水解特異性。結(jié)合多肽分子量分布和氨基酸含量分析表明,其分子量的改變是亮氨酸氨肽酶將肽鏈末端的疏水性氨基酸切除下來(lái),從而達(dá)到脫苦的效果,而亮氨酸與脯氨酸氨肽酶協(xié)同作用更能強(qiáng)化脫苦效果,進(jìn)一步提升大米肽的風(fēng)味和品質(zhì)。
圖6 酶解前后疏水性氨基酸及兩種堿性氨基酸含量變化Fig.6 Changes of hydrophobic amino acids and two kinds ofbasic amino acids before and after enzymolysis
本研究在前期基礎(chǔ)上建立了絮凝加超濾后凍干亮氨酸氨肽酶的制備工藝:加入0.15%±0.008%的絮凝劑,2.5%±0.006%的硅藻土,調(diào)節(jié)pH8.0,過(guò)濾,選用30 kDa的超濾膜超濾濃縮7倍,氨肽酶的總回收率為64.69%±1.29%。該制備工藝操作簡(jiǎn)便,穩(wěn)定性較好,便于操作和控制,易放大生產(chǎn);用該工藝制備的亮氨酸氨肽酶水解大米肽通過(guò)分析水解產(chǎn)物的情況評(píng)價(jià)其脫苦效果,結(jié)果表明,在優(yōu)化的酶解條件下酶解液中的亮氨酸、精氨酸、賴(lài)氨酸含量及疏水性氨基酸總量分別是酶解前的3.39±0.1、16.48±0.49、22.47±0.67、4.39±0.67倍,酶解后分子量500~1000 Da的肽含量降低了30.63%±0.61%,而亮氨酸與脯氨酸氨肽酶協(xié)同作用更能強(qiáng)化脫苦效果,提升大米肽的品質(zhì),相對(duì)于在多肽中添加苦味掩蔽劑,酶法更加安全可靠,將是今后食品蛋白資源深加工的應(yīng)用大趨勢(shì)。
[1]程璐,楊青,繆銘,等. 絮凝法處理苯乳酸發(fā)酵液的研究[J]. 食品工業(yè)科技,2011(3):256-258.
[2]曹松龍,田亞平. 枯草芽孢桿菌氨肽酶超濾提取技術(shù)[J]. 食品與生物技術(shù)學(xué)報(bào),2013,32(3):293-297.
[3]孔峰,田亞平. 重組枯草芽孢桿菌高產(chǎn)氨肽酶策略與提取工藝優(yōu)化[J]. 食品與生物技術(shù)學(xué)報(bào),2015,34(8):864-872.
[4]Gao X,Cui W,Tian Y,et al. Over-expression,secretion,biochemical characterisation,and structure analysis of Bacillus subtilis aminopeptidase.[J]. Journal of the Science of Food & Agriculture,2013,93(11):2810-2815.
[5]Barry C M,O’Cuinn G,Harrington D,et al. Debittering of a tryptic digest of bovine beta-casein using porcine kidney general aminopeptidase and X-prolydipeptidyl aminopeptidase fromLactococcuslactissubsp. cremoris AM2.[J]. Journal of Food Science,2000,65(7):1145-1150.
[6]Yang H,Zhu Q,Zhou N,et al. Optimized expression of prolyl aminopeptidase in Pichia pastoris and its characteristics after glycosylation.[J]. World Journal of Microbiology & Biotechnology,2016,32(11):176.
[7]李佳南,王靜,張慧娟,等. 大米蛋白抗氧化肽的活性以及組成鑒定研究[J]. 食品工業(yè)科技,2013,34(23):53-57.
[8]代聯(lián)伶,陳欲云,胡婷婷,等. 大米多肽對(duì)D-半乳糖致衰老小鼠抗氧化作用的研究[J]. 食品工業(yè)科技,2013,34(18):336-338.
[9]劉達(dá)玉,張崟,王衛(wèi),等. 響應(yīng)面法優(yōu)化骨素酶解制備可溶性肽工藝研究[J]. 食品工業(yè)科技,2012,33(14):316-318.
[10]呂志佳. 大米肽酶法制備方法的研究[D]. 天津:天津科技大學(xué),2014.
[11]裴曉惠,張佳程,齊建勛,等. 核桃蛋白肽脫苦及其對(duì)ACE抑制活性的影響[J]. 食品工業(yè)科技,2012,33(20):236-239.
[12]Murray T K. Studies on protein hydrolysis. 1. Preliminary observations on the taste of enzymic protein-hydrolysates.[J]. Journal of the Science of Food & Agriculture,1952,3(10):470-475.
[13]Ney K H. Voraussage der Bitterkeit von Peptiden aus deren Aminos?urezu-sammensetzung[J]. European Food Research & Technology,1971,147(2):64-68.
[14]馬鐵錚,王強(qiáng),周素梅. 蛋白短肽苦味成因與脫苦技術(shù)研究進(jìn)展[J]. 中國(guó)糧油學(xué)報(bào),2008,23(6):220-226.
[15]魏亞娟,田亞平,須瑛敏. 枯草芽孢桿菌脫苦氨肽酶在水解大豆分離蛋白中的應(yīng)用研究[J]. 食品工業(yè)科技,2008(4):149-151.
[16]Sedmak J J,Grossberg S E. A rapid,sensitive,and versatile assay for protein using Coomassie brilliant blue G250.[J]. Analytical Biochemistry,1977,79(1-2):544.
[17]Chial H J,Thompson H B,Splittgerber A G. A spectral study of the charge forms of Coomassie blue G.[J]. Analytical Biochemistry,1993,209(2):258-266.
[18]秦冬玲,馬玉潔,陸國(guó)太,等. 大豆乳清蛋白的超濾分離及膜污染分析[J]. 食品工業(yè)科技,2016(23):72-76.
[19]Wang K D,Wang K H,Zhou N D,et al. Secretory Expression,Purification,Characterization,and Application of an Aspergillus oryzae,Prolyl Aminopeptidase in Bacillus subtilis[J]. Applied Biochemistry & Biotechnology,2016(2-6):1-13.
[20]高梅娟. 酶法水解蛋白制備風(fēng)味增強(qiáng)肽的研究[D]. 無(wú)錫:江南大學(xué),2009.
[21]程麗,梁金鐘. 絮凝法預(yù)處理大豆蛋白活性肽發(fā)酵液的研究[J]. 大豆科技,2004(2):17-19.
[22]甄斌. ε-聚賴(lài)氨酸高效提取工藝構(gòu)建:固液分離與脫色工藝研究[D]. 無(wú)錫:江南大學(xué),2015.
[23]葛文靜. 大豆蛋白的低限度酶解改性及其苦味物質(zhì)分析鑒定[D]. 無(wú)錫:江南大學(xué),2014.
[24]鄧勇,馮學(xué)武. 大豆多肽分子質(zhì)量分布與苦味的確定[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2001,6(4):98-102.
Preparationofleucineaminopeptidaseandcollaborativeapplicationofdebitterizinginricepeptides
ZHUQiang,WUJing-tao,TIANYa-ping*
(Key Laboratory of Industrial Biotechnology,Ministry of Education,Jiangnan University,Wuxi 214122,China)
The combination of flocculation,ultrafiltration,and freeze drying method to extract the recombinant bacillus subtilis leucine aminopeptidase,with aminopeptidase removal terminal hydrophobic amino acids for debittering effect index,debittering effect effects of leucine aminopeptidase and proline aminopeptidase hydrolysis of rice peptide was investigated. The preparation conditions of the enzyme were as follows:adding 0.15%±0.008% flocculant,2.5%±0.006% diatomite,adjusting pH8.0 for filtration,using 30 kDa PES roll membrane,ultrafiltration concentration 7 times,under this condition:the total recovery of aminopeptidase rate was 64.69%±1.29%. In the optimized enzymatic hydrolysis conditions,the total amount of leucine,arginine and free hydrophobic amino acids in the hydrolyzate were 3.39±0.10,16.48±0.49 and 4.39±0.13 times higher than that of the hydrolyzate. After the enzymolysis,the molecular weight was 500~1000 Da was reduced by 30.63%±0.61%,and the content of proline was 1.78±0.07 times higher than that of single enzyme hydrolysis after double enzyme synergistic hydrolysis. The optimized process is simple and the enzyme has good application in the peeling of rice peptides.
leucine aminopeptidase;extraction;recovery rate;synergistic hydrolysis;hydrophobic aminoacid
TS201.21
A
1002-0306(2017)19-0109-05
10.13386/j.issn1002-0306.2017.19.021
2017-03-22
朱強(qiáng)(1991-),男,碩士研究生,研究方向:發(fā)酵工學(xué),E-mail:zqll2012@163.com。
*通訊作者:田亞平(1964-),女,博士,教授,研究方向:主要從事生物活性物質(zhì)方面的研究,E-mail:yapingtian@hotmail.com。
江蘇省產(chǎn)學(xué)研聯(lián)合創(chuàng)新資金(BY2014023-22)。