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      青海藜麥皂苷超聲提取工藝及抗氧化活性

      2017-10-19 05:34:18,,,,,
      食品工業(yè)科技 2017年19期
      關(guān)鍵詞:皂苷乙醇抗氧化

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      (1.青海大學(xué)農(nóng)牧學(xué)院,青海西寧 810016;2.青海省青藏高原農(nóng)產(chǎn)品加工重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,青海西寧 810016;3.三江源生態(tài)與高原農(nóng)牧業(yè)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,青海西寧 810016)

      青海藜麥皂苷超聲提取工藝及抗氧化活性

      趙亞?wèn)|1,2,黨斌2,3,*,楊希娟2,3,劉洋3,姚有華3,遲德釗3

      (1.青海大學(xué)農(nóng)牧學(xué)院,青海西寧 810016;2.青海省青藏高原農(nóng)產(chǎn)品加工重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,青海西寧 810016;3.三江源生態(tài)與高原農(nóng)牧業(yè)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,青海西寧 810016)

      通過(guò)單因素和正交實(shí)驗(yàn)對(duì)超聲波輔助溶劑提取青海藜麥皂苷的工藝條件進(jìn)行優(yōu)化,并對(duì)青海不同藜麥皂苷含量及其抗氧化能力進(jìn)行了評(píng)價(jià)。結(jié)果表明,超聲波輔助乙醇提取皂苷的最佳工藝條件為:乙醇體積分?jǐn)?shù)90%,料液比1∶15 (g/mL),提取時(shí)間20 min、功率400 W、提取溫度45 ℃,在此條件下藜麥皂苷含量達(dá)到115.74 mg/100 g。119份藜麥平均皂苷含量為(93.66±18.34) mg/100 g,不同藜麥間皂苷含量與抗氧化能力差異較大。不同粒色比較,紅色藜麥的皂苷含量最高且抗氧化能力最強(qiáng),白色藜麥的皂苷含量最低且抗氧化能力最差。以DPPH·清除能力、鐵離子還原能力(FRAP)和ABTS+·清除能力為指標(biāo),采用Ward聯(lián)接(平方歐式距離)法將119份藜麥分為三大類。第Ⅰ類包括69種藜麥,皂苷含量與抗氧化能力均較高;第Ⅱ類包括33種藜麥,皂苷含量與抗氧化能力中等;第Ⅲ類包括17種藜麥,皂苷含量與抗氧化能力均較低;三大類之間皂苷含量與抗氧化能力差異顯著(p<0.05)。

      藜麥,皂苷,工藝優(yōu)化,抗氧化活性,聚類分析

      藜麥(ChenopodiumquinoaWilld)是一種藜科藜屬假谷物,原產(chǎn)于南美洲安第斯山區(qū),有5000多年的種植歷史[1-2],主要分布在南美洲的玻利維亞、厄瓜多爾和秘魯[3]等地,具有抗寒、耐旱、適應(yīng)性強(qiáng)等特性[4-5],在海拔4000 m以下均有分布[6],藜麥種子大多數(shù)為灰白色、乳黃色;也有部分顏色為黑色、紫色、紅色等[7]。

      表1 實(shí)驗(yàn)材料Table 1 Experiment materials

      我國(guó)藜麥種植面積較大,主要分布于山西、甘肅、青海和吉林等地區(qū)[8]。藜麥豐富的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值引起了科學(xué)家和消費(fèi)者的廣泛關(guān)注,美國(guó)國(guó)家航空航天局(NASA)證實(shí)藜麥營(yíng)養(yǎng)素含量普遍高于常見(jiàn)谷物,可充分滿足人類生命活動(dòng)的基本物質(zhì)需求,將藜麥列為航天員的安全食品;并被聯(lián)合國(guó)糧農(nóng)組織(FAO)列為全球10大營(yíng)養(yǎng)食品之一[9-11]。

      藜麥中皂苷含量豐富,皂苷具有抗菌活性與解熱、鎮(zhèn)靜、抗癌、抗氧化等醫(yī)藥價(jià)值[12],可以通過(guò)提取、分離等技術(shù)得到皂苷。本文利用超聲波技術(shù)優(yōu)化提取藜麥皂苷的工藝條件,并進(jìn)一步分析119份青海藜麥中皂苷含量及其抗氧化活性差異,篩選出皂苷含量較高、抗氧化活性較強(qiáng)的藜麥品種,為藜麥皂苷加工利用、品種選育提供理論依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1材料與試劑

      藜麥材料 青海省農(nóng)林科學(xué)院作物育種栽培研究所提供;藜麥粉的制備 利用高速粉碎機(jī)制得;甲醇、乙醇、丙酮、冰乙酸、高氯酸、三氯化鐵、無(wú)水乙酸鈉、過(guò)硫酸鉀 均為分析純;Trolox、DPPH、TPTZ、ABTS 上海源葉生物科技有限公司;齊墩果酸標(biāo)準(zhǔn)品 北京索萊寶科技公司。

      1.2儀器與設(shè)備

      AL204萬(wàn)分之一分析天平 梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;高速中藥粉碎機(jī) 天津華鑫儀器廠;KQ-500DE型數(shù)控超聲波清洗器 昆山市超聲波儀器有限公司;TGL-20M高速臺(tái)式冷凍離心機(jī) 上海滬粵明科學(xué)儀器有限公司;DKB-600B型電熱恒溫水箱 上海一恒科學(xué)儀器有限公司;Retavapor R-215旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 瑞士布奇有限公司;N4S紫外可見(jiàn)分光光度計(jì) 上海儀電分析儀器有限公司。

      表2 正交實(shí)驗(yàn)因素水平表Table 2 Levels and factors Table of orthogonal experiment

      1.3實(shí)驗(yàn)方法

      1.3.1 不同提取溶劑對(duì)藜麥皂苷含量的影響 按1∶20 (g/mL)的比例向粉碎后的藜麥粉中加入60%(v/v)的甲醇、乙醇、丙酮與蒸餾水,在400 W、20 ℃的條件下萃取20 min,1800×g離心5 min,萃取液于45 ℃減壓蒸干,再用甲醇復(fù)溶,0.22 μm有機(jī)膜過(guò)濾,得藜麥皂苷粗提取液,于-22 ℃冰箱中避光儲(chǔ)存?zhèn)溆谩?/p>

      1.3.2 皂苷提取的單因素實(shí)驗(yàn) 以乙醇為提取試劑,按1.3.1方法提取藜麥皂苷,分別考察乙醇濃度、料液比、提取時(shí)間、超聲功率、提取溫度對(duì)藜麥皂苷含量的影響。單因素實(shí)驗(yàn)基本條件為乙醇濃度:(20%、40%、60%、80%、100%);料液比:(1∶5、1∶10、1∶20、1∶30、1∶40、1∶50);提取時(shí)間(10、20、30、40、50 min);超聲功率:(200、300、350、400、500 W);提取溫度:(20、30、40、50 ℃)。

      1.3.3 皂苷提取的正交實(shí)驗(yàn) 根據(jù)資料及實(shí)驗(yàn)結(jié)果,以乙醇濃度、料液比、提取時(shí)間、超聲功率、提取溫度為因素,皂苷含量為指標(biāo),按照正交表 L16(45)設(shè)計(jì)5因素4水平正交實(shí)驗(yàn)。

      1.3.4 皂苷含量的測(cè)定 采用香草醛-高氯酸法,參考文獻(xiàn)[13]并稍作修改。吸取200 μL皂苷粗提液加入試管中,70 ℃水浴揮發(fā)除去甲醇,加入5%的香草醛-冰乙酸溶液0.2 mL、高氯酸0.8 mL,搖勻;60 ℃水浴15 min后立即用冷水冷卻5 min;加入4 mL冰乙酸稀釋,室溫下避光靜置30 min,以不加皂苷粗提液的試管作為空白對(duì)照,在波長(zhǎng)546 nm下測(cè)定吸光度,重復(fù)3次。以齊墩果酸為標(biāo)準(zhǔn)品,得到標(biāo)準(zhǔn)曲線為Y1=51.998X1-0.0129(0~0.02 mg/mL,R2=0.9991)。皂苷含量以每100 g藜麥粉中所含相當(dāng)于齊墩果酸的量mg表示。

      皂苷含量(mg/100 g)=(Y×V)/M×100

      式中:Y為測(cè)定的皂苷濃度(mg/mL);V為皂苷粗提液的總體積(mL);M為藜麥粉干重(g)。

      1.3.5 抗氧化活性測(cè)定

      1.3.5.1 DPPH法 參考文獻(xiàn)[14-17]并稍微改進(jìn),向試管中加入1 mL皂苷提取液,加入0.1 mmol/L DPPH·甲醇溶液4.5 mL,避光反應(yīng)30 min,以甲醇代替皂苷提取液調(diào)零,在波長(zhǎng)517 nm下測(cè)定吸光度,重復(fù)測(cè)定3次,得到Trolox標(biāo)準(zhǔn)曲線為Y2=-0.0042X2+0.0229(0~140 μmol/L,R2=0.9932)。DPPH·清除能力以每100 g藜麥粉(干重)中所含相當(dāng)于水溶性維生素E的量(μmol/100 g)表示。

      1.3.5.2 FRAP法 參照Benzie等[18]方法稍作改進(jìn),取1 mL藜麥皂苷提取液與4.5 mL FRAP工作液(包括300 mmol/L pH3.6醋酸鈉緩沖液3.75 mL、10 mmol/L TPTZ溶液0.375 mL、20 mmol/L FeCl3溶液0.375 mL)混合均勻,避光反應(yīng)30 min,以甲醇為空白調(diào)零,在波長(zhǎng)593 nm下測(cè)定吸光度,重復(fù)三次,得到Trolox標(biāo)準(zhǔn)曲線為:Y3=0.0072X3+0.0012(0~160 μmol/L,R2=0.9992),鐵離子還原能力以每100 g藜麥粉(干重)中所含相當(dāng)于水溶性維生素E的量(μmol TE/100 g DW)表示。

      1.3.5.3 ABTS法 參照Delgado-Andrade等[19]方法稍作改進(jìn),ABTS反應(yīng)液(88 μL的140 mmol/L K2(SO4)2與5 mL的7 mmol/L ABTS混合均勻),室溫避光靜置12~16 h后,用無(wú)水甲醇稀釋至在734 nm下的吸光值為(0.7±0.02),200 μL藜麥皂苷粗提液與4.5 mL ABTS反應(yīng)液混勻,避光反應(yīng)30 min,以甲醇為空白調(diào)零,在波長(zhǎng)734 nm下測(cè)定吸光度,重復(fù)三次,得到Trolox標(biāo)準(zhǔn)曲線為:Y4=-0.0010X4+0.0118(0~600 μmol/L,R2=0.9907),皂苷ABTS+·清除能力以每100 g藜麥粉(干重)中所含相當(dāng)于水溶性維生素E的量(μmol TE/100 g DW)表示。

      1.4統(tǒng)計(jì)分析

      用Excel進(jìn)行數(shù)據(jù)初步處理,顯著性分析使用DPS 9.05進(jìn)行,采用SPSS 19.0進(jìn)行系統(tǒng)聚類。

      2 結(jié)果與分析

      2.1不同提取試劑對(duì)藜麥皂苷含量的影響

      如圖1所示,甲醇、乙醇作為提取試劑時(shí)皂苷含量明顯高于丙酮、水提取的效果,甲醇作為提取試劑時(shí)皂苷含量達(dá)到75.47 mg/100 g DW。甲醇、乙醇的提取效果沒(méi)有顯著差異,乙醇相對(duì)于甲醇更安全;因此本實(shí)驗(yàn)選擇乙醇作為皂苷提取的試劑。

      圖1 不同提取試劑對(duì)皂苷含量的影響Fig.1 Effects of different extractionsolvents on saponins content注:不同字母表示數(shù)據(jù)差異,p<0.05。

      2.2單因素實(shí)驗(yàn)

      2.2.1 乙醇濃度對(duì)皂苷含量的影響 由圖2可以看出,皂苷含量隨著乙醇濃度的增大先升高后降低。當(dāng)乙醇濃度為80%時(shí)皂苷的含量達(dá)到最大,濃度高于80%時(shí),皂苷的含量反而降低,可能是由于乙醇濃度過(guò)高導(dǎo)致細(xì)胞緊縮,影響皂苷進(jìn)入溶劑[14];因此,乙醇濃度最佳為80%。

      圖2 乙醇濃度對(duì)皂苷含量的影響Fig.2 Effects of ethanol concentration on saponins content

      2.2.2 料液比對(duì)皂苷含量的影響 由圖3可知,隨著料液比的增加,皂苷含量呈現(xiàn)先增后降的趨勢(shì),當(dāng)料液比1∶10時(shí),皂苷含量最大;因此最適料液比為1∶10。

      圖3 料液比對(duì)皂苷含量的影響Fig.3 Effects of the ratio of materialto solvent on saponins content

      2.2.3 提取時(shí)間對(duì)皂苷含量的影響 由圖4可知,在10~20 min范圍內(nèi),隨著提取時(shí)間的延長(zhǎng)皂苷含量增大,在20 min時(shí)達(dá)到最高;之后隨著提取時(shí)間的增加,皂苷含量反而下降,最終趨于平穩(wěn)。因此,提取時(shí)間確定為20 min。

      圖4 提取時(shí)間對(duì)皂苷含量的影響Fig.4 Effects of the time on saponins content

      2.2.4 超聲功率對(duì)皂苷含量的影響 由圖5可知,功率為400 W時(shí),皂苷的含量最大,繼續(xù)升高功率,皂苷含量下降。超聲波通過(guò)空化作用與機(jī)械振動(dòng)將藜麥粉細(xì)胞壁破碎,增大溶劑進(jìn)入細(xì)胞的滲透性加速皂苷的提取[20],但是功率較高使皂苷結(jié)構(gòu)遭到破壞。因此,藜麥皂苷提取超聲功率為400 W。

      圖5 超聲功率對(duì)皂苷含量的影響Fig.5 Effects of the ultrasonic power on saponins content

      2.2.5 提取溫度對(duì)皂苷含量的影響 由圖6可見(jiàn)20~40 ℃范圍內(nèi)隨著提取溫度升高,皂苷含量逐漸升高,在40 ℃時(shí),皂苷含量達(dá)到最大,之后隨著溫度的升高,皂苷的含量降低,可能是由于高溫使部分結(jié)構(gòu)不穩(wěn)定的皂苷類物質(zhì)遭到破壞[21];因此皂苷最佳提取溫度為40 ℃。

      圖6 提取溫度對(duì)皂苷含量的影響Fig.6 Effects of temperature on saponin content of quinoa

      2.3正交實(shí)驗(yàn)

      以乙醇濃度、液料比、提取時(shí)間、超聲功率、提取溫度為考察因素,以皂苷含量為指標(biāo),采用五因素四水平的L16(45)正交實(shí)驗(yàn),優(yōu)化藜麥皂苷最佳提取工藝,實(shí)驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表3。

      表3 正交實(shí)驗(yàn)方案及結(jié)果Table 3 Results and scheme of orthogonal experiment

      表5 119份藜麥皂苷含量與抗氧化能力Table 5 Saponins content and antioxidant capacity of 119 quinoas

      表6 皂苷含量及抗氧化能力間的相關(guān)系數(shù)Table 6 Correlation analysis between saponins content and antioxidant capacity

      注:**表示在 0. 01 水平(雙側(cè))上極顯著相關(guān)。

      由表3的極差分析可知,影響皂苷提取的各因素主次順序?yàn)橐掖俭w積分?jǐn)?shù)>超聲功率>料液比>溫度>提取時(shí)間;提取時(shí)間對(duì)皂苷含量的影響最小,可作為方差分析的誤差項(xiàng)處理。

      表4 正交設(shè)計(jì)方差分析表(完全隨機(jī)模型)Table 4 Variance analysis of orthogonal experiment(complete stochastic model)

      注:*表示因素作為誤差處理。

      由表4方差分析結(jié)果可知,各因素對(duì)皂苷含量的影響均達(dá)到極顯著水平(p<0.01)。綜合表3與表4可知,優(yōu)選組合為A3B3C2D2E3,即乙醇濃度為90%,料液比為1∶15,提取時(shí)間為20 min,超聲功率為400 W,提取溫度為45 ℃。通過(guò)驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),在此最佳工藝條件下皂苷含量為115.74 mg/100 g,高于任何一個(gè)組合,因此由正交實(shí)驗(yàn)得到的最佳組合是可行的。

      2.4藜麥皂苷含量與抗氧化能力評(píng)價(jià)

      2.4.1 皂苷含量與抗氧化能力總體評(píng)價(jià) 由表5可知,119份藜麥皂苷含量平均值為(93.66±18.34) mg/100 g,變幅為47.11~136.98 mg/100 g,變異系數(shù)達(dá)19.58%,表明不同藜麥間皂苷含量有一定差異;皂苷含量高于大豆和燕麥,但低于青豆[22],其中54%藜麥皂苷含量低于93.66 mg/100 g,皂苷含量高于130 mg/100 g的藜麥有7份,分別是LM1-201、LM1-9、LM1-11、LM1-2、LM1-13、LM1-10選、LM1-3;皂苷含量介于二者之間的藜麥占39.5%。119份藜麥的DPPH·、ABTS+·清除能力、FRAP的變異系數(shù)分別為27.20%、23.43%、21.41%,表明不同藜麥間抗氧化能力差異較大。

      表7 不同粒色藜麥皂苷含量與抗氧化能力Table 7 Saponins content and antioxidant capacity of diferent color grain quinoas

      注:同列數(shù)據(jù)后不同字母表示差異在0.05水平顯著,表8同。

      表8 119種藜麥皂苷含量與抗氧化能力聚類結(jié)果Table 8 Clustering results of saponins content and antioxidant capacity of 119 quinoas

      由表6可知DPPH·清除能力與ABTS+·清除能力之間的相關(guān)系數(shù)為0.717,DPPH·清除能力與FRAP之間的相關(guān)系數(shù)為0.597,ABTS+·清除能力與FRAP之間的相關(guān)系數(shù)為0.634,均呈極顯著正相關(guān),說(shuō)明ABTS法、DPPH法、FRAP法所測(cè)定的結(jié)果基本一致。皂苷含量與DPPH·清除能力、ABTS+·清除能力、FRAP均呈顯著正相關(guān),相關(guān)系數(shù)分別為0.333、0.357、0.664(p<0.01);說(shuō)明藜麥皂苷含量越高,其抗氧化活性越強(qiáng),這和杜靜婷[23]等人的報(bào)道一致。

      2.4.2 不同粒色藜麥皂苷含量與抗氧化活性評(píng)價(jià) 119份藜麥按粒色可分為黃、白、紅三種。由表7可以看出,不同粒色藜麥的皂苷含量和抗氧化能力均存在顯著差異(p<0.05)。其中紅色藜麥的皂苷含量、FRAP、DPPH·清除能力與ABTS+·清除能力均為最高;黃色藜麥次之;白色藜麥相對(duì)較低。

      圖7 不同藜麥資源皂苷含量與抗氧化能力聚類樹狀圖Fig.7 Clustering tree of saponin contentand antioxidant capacity of different quinoa resources

      2.4.3 119種藜麥聚類分析 以皂苷含量、DPPH·清除能力、FRAP、ABTS+·清除能力為指標(biāo),采用Ward聯(lián)接(平方歐式距離為5~10)法將119種藜麥聚為Ⅲ大類(見(jiàn)圖7和表8),第Ⅰ類皂苷含量與抗氧化能力均較高,皂苷含量為103.68 mg ·100 g-1、DPPH·清除能力為641.53 μmol TE·100 g-1、FRAP為1653.09 μmol TE·100 g-1、ABTS+·清除能力為1834.11 μmol TE·100 g-1;第Ⅰ類包括69種藜麥,其中黃色藜麥47種、白色藜麥9種、紅色藜麥13種;并將其劃分為兩大亞類,第一大亞類包括32種藜麥,第二大亞類包括37種藜麥。第Ⅱ類藜麥皂苷含量與抗氧化能力處于中間水平,皂苷含量為80.70 mg ·100 g-1、DPPH·清除能力為533.40 μmol TE·100 g-1、FRAP為1280.77 μmol TE·100 g-1、ABTS+·清除能力為1506.16 μmol TE·100 g-1;在第Ⅱ類33種藜麥中有7種白色、22種黃色、4種紅色,所占的比例分別為21.21%、66.67%,12.12%。第Ⅲ類藜麥皂苷含量與抗氧化能力均處于較低水平,皂苷含量為78.14 mg ·100 g-1、DPPH·清除能力為287.09 μmol TE·100 g-1、FRAP為951.57 μmol TE·100 g-1、ABTS+·清除能力為1155.72 μmol TE·100 g-1;第Ⅲ類有17種藜麥,可劃分為兩大亞類,第一大亞類包括10種藜麥,第二大亞類包括7種藜麥。三大類在皂苷含量、DPPH·清除能力、FRAP、ABTS+·清除能力等方面均存在顯著差異。

      3 結(jié)論與討論

      本研究通過(guò)正交實(shí)驗(yàn)優(yōu)化了超聲波輔助提取藜麥皂苷最佳工藝。即乙醇體積分?jǐn)?shù)90%,料液比1∶15 (g/mL),超聲功率400 W、提取溫度45 ℃、提取時(shí)間20 min;在此最佳工藝條件下,皂苷含量達(dá)到115.74 mg/100 g。

      比較分析了119種藜麥皂苷含量和抗氧化活性的差異性。參試藜麥中皂苷含量變幅為47.11~136.98 mg/100 g,變異系數(shù)為19.58%,不同藜麥間皂苷含量差異較大;119份藜麥均具有較強(qiáng)的抗氧化能力,但不同藜麥間抗氧化能力差異較大。不同粒色藜麥的皂苷含量與抗氧化能力均存在顯著差異,紅色藜麥的皂苷含量與抗氧化能力最高,黃色的皂苷含量與抗氧化能力次之,白色的皂苷含量與抗氧化能力最低。

      以皂苷含量、DPPH·清除能力、FRAP、ABTS+·清除能力為指標(biāo),采用Ward聯(lián)接(平方歐式距離)法將119份藜麥分為3大類。第Ⅰ類藜麥皂苷含量與抗氧化能力均較高,包括69種藜麥,又可劃分為兩大亞類,第一大亞類有32種藜麥,第二大亞類包括37種藜麥。第Ⅱ類藜麥皂苷含量與抗氧化能力處于中間水平,包括33種藜麥,其中有7種白色、22種黃色、4種紅色,所占的比例分別為21.21%、66.67%,12.12%。第Ⅲ類藜麥皂苷含量與抗氧化能力均較低,包括17種藜麥,可劃分為兩大亞類,第一大亞類包括10種藜麥,第二大亞類包括7種藜麥。三大類別在皂苷含量、DPPH·清除能力、FRAP、ABTS+·清除能力等方面均存在顯著差異。此結(jié)果為選育高皂苷藜麥和強(qiáng)抗氧化性藜麥品種提供了理論依據(jù)。但本研究收集的黃色藜麥較多,紅色和白色藜麥數(shù)量較少,今后的研究中還應(yīng)擴(kuò)大紅色和白色藜麥的數(shù)量。

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      UltrasonicextractiontechnologyofsaponinsanditsantioxidantactivityinquinoafromQinghai

      ZHAOYa-dong1,2,DANGBin2,3,*,YANGXi-juan2,3,LIUYang3,YAOYou-hua3,CHIDe-zhao3

      (1.Academy of Agriculture and Animal Husbandry,Qinghai University,Xining 810016,China;2.Key Laboratory of Qinghai Province Tibetan Plateau Agric-Product Processing,Xining 810016,China;3.State Key Laboratory of Three Rivers Ecological Farmingand Plateau Agriculture and Animal Husbandry,Xining 810016,China)

      Extraction conditions of quinoa saponins from Qinghai were investigated by single factor and orthogonal test on ultrasonic assisted solvents,the content of saponins and antioxidant capacity of different quinoas in Qinghai were analyzed. The results showed that:the volume fraction of ethanol was 90%,solid-liquid ratio was 1∶15 (g/mL),extraction time was 20 min,ultrasonic power was 400 W and extraction temperature was 45 ℃. Under these conditions,the saponins content of quinoa was 115.74 mg/100 g. The average content of saponins in 119 quinoa was(93.66±18.34) mg/100 g,saponins content and antioxidant activities among different quinoas were great different. Among different grain colors,the content of saponins in red quinoas was the highest and the antioxidant activities was the strongest,the saponins content of white quinoas was the lowest and the antioxidant activities was the worst. 119 quinoas were divided into three classes by Ward connection(square European distance)method based on DPPH· scavenging ability,iron ion reduction ability(FRAP)and ABTS+· scavenging ability. ClassⅠ(inciuding 69 quinoas)showed relatively higher saponins content and antioxidant activities,while classⅡ(inciuding 33 quinoas)were midium,class Ⅲ(inciuding 17 quinoas)showed relatively low saponins content and antioxidant activities. Saponins content and antioxidant activities among the three classes were significant different(p<0.05).

      quinoa;saponins;process optimization;antioxidant activity;clustering analysis

      TS218

      B

      1002-0306(2017)19-0045-08

      10.13386/j.issn1002-0306.2017.19.009

      2017-04-11

      趙亞?wèn)|(1991-),男,在讀碩士研究生,研究方向:農(nóng)產(chǎn)品加工與利用,E-mail:zzczyd0424@163.com。

      *通訊作者:黨斌(1980-),男,碩士,副研究員,研究方向:雜糧營(yíng)養(yǎng)功能評(píng)價(jià)及加工利用,E-mail:dangbin811@tom.com。

      青海省科技廳農(nóng)業(yè)科技成果轉(zhuǎn)化與推廣計(jì)劃(2015-NK-504);青海省創(chuàng)新平臺(tái)建設(shè)項(xiàng)目(2017-ZJ-Y31)。

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