不同干燥方法對(duì)金針菇多糖抗氧化活性的影響

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(常熟理工學(xué)院生物與食品工程學(xué)院,江蘇常熟 215500)

不同干燥方法對(duì)金針菇多糖抗氧化活性的影響

陳義勇,李家祺,趙圓圓,陳慧,顧冰飛,李一天,趙培

(常熟理工學(xué)院生物與食品工程學(xué)院,江蘇常熟215500)

以金針菇為原料,利用傳統(tǒng)水提法提取金針菇多糖(polysaccharides fromFlammulinavelutipes,FVP),分別對(duì)傳統(tǒng)熱風(fēng)干燥多糖(FVP-H)、真空干燥多糖(FVP-V)和冷凍干燥多糖(FVP-F)的成分和抗氧化活性進(jìn)行研究。結(jié)果表明,FVP為酸性多糖,不同干燥方法對(duì)其單糖種類沒(méi)有影響,但會(huì)改變單糖的構(gòu)成比例和糖醛酸含量,FVP-H、FVP-V和FVP-F相對(duì)分子質(zhì)量變化不明顯,分別為2342309、2375843和2358437 Da。FVP-H、FVP-V 和FVP-F具有較強(qiáng)的清除DPPH自由基、羥基自由基、超氧陰離子自由基的能力和還原力,在一定濃度范圍內(nèi),多糖與抗氧化活性及還原能力之間呈正相關(guān)關(guān)系,干燥方法對(duì)FVP抗氧化活性具有不同的影響,其中FVP-F抗氧化活性最強(qiáng),其次是FVP-V和FVP-H,冷凍干燥是制備FVP適宜的干燥方法。

金針菇多糖,干燥方法,抗氧化活性

Abstract:Flammulinavelutipeswas used as raw materials. Polysaccharides fromFlammulinavelutipes(FVP)were extracted using conventional water extraction. FVP-H,FVP-V and FVP-F were obtained with hot-air drying,vacuum drying and freeze drying,respectively. Component and antioxidant activities of FVP-H,FVP-V and FVP-F were investigated. The results showed that FVP were acidic polysaccharides. Different drying methods had no effect on the monosaccharide species. However,it could change the monosaccharide composition and uronic acid content. The relative molecular weight of FVP-H,FVP-V and FVP-F were not obvious,which were 2342309,2375843 and 2358437 Da,respectively. FVP-H,FVP-V and FVP-F had a stronger scavenging ability of DPPH radical,hydroxyl radical,superoxide anion free radical and reducing power. In a certain concentration range,FVP were positively correlated with the antioxidant activity and reducing capacity. Different drying methods had different effects on the antioxidant activity of FVP. FVP-F had highest antioxidant activities,followed by FVP-V and FVP-H.Freeze-drying was the best drying method for preparation of FVP.

Keywords:polysaccharides fromFlammulinavelutipes;drying methods;antioxidant activity

金針菇(Flammulinavelutipes)又名樸菇、冬菇,隸屬口磨科金錢菌屬,已發(fā)展成為世界第三大食用菌[1]。現(xiàn)代研究表明，金針菇多糖(Polysaccharides fromFlammulinavelutipes,FVP)具有增強(qiáng)免疫力[2]、護(hù)肝[3]、抗腫瘤[4]、改善記憶[5]等功效。

不同干燥方法由于傳熱、受熱及失水等因素可能會(huì)改變多糖的結(jié)構(gòu)進(jìn)而影響多糖生物活性[6]。吳振等[7]研究了不同干燥方式對(duì)銀耳多糖理化特性及抗氧化活性的影響,Fan等[8]研究了不同干燥方法對(duì)靈芝多糖抗氧化活性的影響,結(jié)果表明干燥方式對(duì)多糖的生物活性有顯著的影響。干燥方法對(duì)金針菇多糖抗氧化活性的影響研究報(bào)道較少,本文考察熱風(fēng)干燥、真空干燥和冷凍干燥等三種干燥方法對(duì)FVP的化學(xué)組成及抗氧化活性的影響,篩選出一種最適合FVP的干燥方法,旨在為FVP工業(yè)制備提供技術(shù)支撐。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

金針菇 張家港市常興菌業(yè)有限公司;對(duì)氨基苯磺酸、鹽酸奈己二胺 國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;鐵氰化鉀 上海強(qiáng)順化學(xué)試劑有限公司;1,1-二苯基-2-苦苯肼(DPPH) 上?？笊锛夹g(shù)有限公司;鄰苯三酚、雙氧水、三羥甲基氨基甲烷(Tris)、鹽酸、無(wú)水乙醇、甲醇、丙酮、苯酚、硫酸亞鐵、水楊酸、維生素C、三氯乙酸、亞硝酸鈉、正丁醇、氯仿、石油醚等試劑 均為分析純。

Alpha 1-2 LD冷凍干燥機(jī) 德國(guó)CHRIST公司;722分光光度計(jì) 上海菁華科技儀器有限公司;HK-20B密封式粉碎機(jī) 廣州市旭朗機(jī)械設(shè)備有限公司;CR22GⅡ高速冷凍離心機(jī) 日本HITACHI公司;DHG-9030A電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱 上海三發(fā)科學(xué)儀器有限公司;SHB-B95循環(huán)水式多用真空泵 鄭州長(zhǎng)城科工貿(mào)有限公司;RE-52A旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 上海亞榮生化儀器有限公司;GC-14A氣相色譜儀 日本Shimadzu公司;HH-2智能數(shù)顯恒溫水浴鍋 金壇市杰瑞爾電器有限公司;Waters600高壓液相色譜儀 美國(guó)Waters公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 FVP的提取 用蒸餾水清洗新鮮金針菇,將水瀝干后在60 ℃條件下真空干燥12 h,然后機(jī)械粉碎,過(guò)100目篩,用石油醚將金針菇粉在70 ℃條件下脫脂回流2次,每次3 h,然后用體積分?jǐn)?shù)為95%乙醇洗滌2次,以除去一些色素、單糖、低聚糖和其他一些小分子物質(zhì),抽濾除去溶劑后,60 ℃條件下真空干燥24 h得到金針菇粉末樣品備用。稱取100 g樣品粉末于磨口錐形瓶中,加入3000 mL蒸餾水,在恒溫水浴80 ℃下提取6 h,提取液在4000 r/min條件下離心20 min,上清液經(jīng)過(guò)旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮(加熱溫度50 ℃,旋轉(zhuǎn)速度50 r/min,真空度1.5 MPa,濃縮時(shí)間8 h)。濃縮液采用Sevage法去蛋白(6次),將濃縮液采用聚酰胺吸附柱層析法進(jìn)一步純化,用蒸餾水洗脫,得到洗脫液,洗脫液透析24 h,濃縮透析袋中多糖提取物,加入4 倍體積95%乙醇,4 ℃過(guò)夜后離心(4000 r/min),沉淀即為精制FVP。

1.2.2 FVP的干燥 采用熱風(fēng)干燥、真空干燥和冷凍干燥分別得到熱風(fēng)干燥多糖(Hot-air drying FVP,FVP-H)、真空干燥多糖(Vacuuming drying FVP,FVP-V)和冷凍干燥多糖(Freezing drying FVP,FVP-F)。熱風(fēng)干燥干燥條件:溫度70 ℃,風(fēng)速 2.0 m/s,干燥時(shí)間16 h。真空干燥干燥條件:溫度50 ℃,真空度0.07 MPa,干燥時(shí)間12 h。冷凍干燥條件:溫度-50 ℃,壓力0.06 MPa,干燥時(shí)間48 h,經(jīng)過(guò)三種方式干燥后的FVP為棕黃色粉未,水分含量≤5%。

1.2.3 FVP成分分析 中性糖含量測(cè)定以葡萄糖為對(duì)照品,采用苯酚-硫酸法[9],蛋白質(zhì)含量的測(cè)定以牛血清白蛋白為標(biāo)準(zhǔn)品,采用福林-酚法[10],糖醛酸含量測(cè)定以半乳糖醛酸為對(duì)照品,采用間羥聯(lián)苯法[11]。

1.2.3.1 FVP單糖組成 取多糖樣品10 mg于具塞管中,加入2 mol/L的三氟乙酸(TFA)溶液2 mL真空封管后于121 ℃水解1 h,水解液除盡過(guò)量的TFA后,真空干燥。采用糖腈乙酸酯衍生化法,加10 mg鹽酸羥胺、適量肌醇(內(nèi)標(biāo))和0.5 mL吡啶,90 ℃加熱30 min后,取出冷卻至室溫,加入0.5 mL醋酸酐,90 ℃下繼續(xù)反應(yīng)30 min進(jìn)行乙?；?反應(yīng)產(chǎn)物直接進(jìn)行氣相色譜分析。

色譜條件:采用OV1701彈性石英毛細(xì)管柱(Φ0.32 mm×30 m),載氣為N2,流速1.5 mL/min,FID氫焰檢測(cè)器,氣化室溫度260 ℃,檢測(cè)器溫度250 ℃,采用程序升溫:起始溫度150 ℃,停留l min,以10 ℃/min升溫至190 ℃,停留l min,以3 ℃/min升溫至240 ℃,停留20 min。

1.2.3.2 FVP相對(duì)分子質(zhì)量測(cè)定 將相對(duì)分子質(zhì)量為6100、26290、84000、158000和291000的標(biāo)準(zhǔn)Dextran相繼進(jìn)樣,采用高效液相色譜(HPLC)記錄保留時(shí)間TR,以TR為橫坐標(biāo),lgM為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,求得回歸方程lgM=13.0-0.467 TR。將FVP-H、FVP-V和FVP-F多糖溶液(2 mg/mL)進(jìn)樣20 μL,根據(jù)所得TR,通過(guò)回歸方程計(jì)算不同干燥多糖的相對(duì)分子質(zhì)量。色譜柱:Waters UllrallydrogelTM Linear(Φ7.8 mm×300 mm),檢測(cè)器:Waters2410示差折光檢測(cè)器,以0.l mol/L的NaNO3為流動(dòng)相,流速0.9 mL/min,柱溫45 ℃。

1.2.4 抗氧化活性測(cè)定

1.2.4.1 清除羥基自由基的測(cè)定 根據(jù)Wang等[12]方法并稍作改進(jìn),研究FVP對(duì)羥基自由基的清除作用。取不同濃度的多糖樣液(0.5、1.0、2.0、3.0、4.0 mg/mL)各1.0 mL,分別加入硫酸亞鐵(9.0 mmol/L)和1.0 mL水楊酸-乙醇(9.0 mmol/L),對(duì)照組以1.0 mL去離子水代替多糖樣液,最后加1.0 mL過(guò)氧化氫溶液?jiǎn)?dòng)反應(yīng)。將反應(yīng)溶液在37 ℃恒溫水浴30 min,在510 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度,記為A1;以去離子水代替多糖樣液來(lái)重復(fù)以上操作,在510 nm波長(zhǎng)處測(cè)得吸光度,記為A0;以去離子水代替過(guò)氧化氫溶液重復(fù)上述操作,在510 nm波長(zhǎng)處測(cè)其吸光度,記為A2。三種樣品分別測(cè)定,VC作為陽(yáng)性對(duì)照,代替多糖樣品液同樣進(jìn)行測(cè)定,樣品平行測(cè)定3次取平均值,按下式計(jì)算·OH的清除率:

·OH清除率(%)=[1-(A1-A2)/A0]×100

式中:A1表示加多糖樣品的吸光度;A2表示不加多糖樣品的空白組的吸光度;A0表示不加過(guò)氧化氫的對(duì)照組的吸光度。

1.2.4.2 清除DPPH自由基的測(cè)定 根據(jù)Liu等[13]方法研究FVP對(duì)DPPH自由基的清除作用。分別取2 mL不同質(zhì)量濃度的多糖樣品液(0.5、1.0、2.0、3.0、4.0 mg/mL),加入2 mL的0.1 mmol/L的DPPH-乙醇溶液(現(xiàn)用現(xiàn)配),混勻后避光室溫放置30 min,在517 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度,記為A1;以蒸餾水代替多糖樣液重復(fù)上述操作,在517 nm波長(zhǎng)處測(cè)其吸光度,記為A0;以蒸餾水代替DPPH-乙醇溶液重復(fù)以上操作,作為對(duì)照管,在517 nm波長(zhǎng)處測(cè)得吸光度,記為A2。VC作為陽(yáng)性對(duì)照,代替多糖樣品液同樣進(jìn)行測(cè)定,樣品平行測(cè)定3次并且取平均值,按下式計(jì)算DPPH自由基的清除率:

DPPH自由基清除率(%)=[1-(A1-A2)/A0]×100

式中:A1表示加多糖樣品的吸光度;A0表示不加多糖樣品的空白組的吸光度;A2表示不加DPPH的對(duì)照組的吸光度。

表2 不同干燥方法的FVP單糖組成(%)Table 2 Monosaccharide composition of FVP dried by different methods(%)

式中:A0表示不加多糖樣品空白組的吸光度;Ai表示加多糖樣品的吸光度。

1.2.4.4 還原力的測(cè)定 根據(jù)Wu等[15]方法研究FVP的還原力。在具塞比色管中分別加入2 mL磷酸緩沖液(0.2 mol/L、pH6.6)、0.2 mL不同質(zhì)量濃度的FVP多糖樣品溶液(0.5、1.0、2.0、3.0、4.0 mg/mL)和質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%的鐵氰化鉀溶液2.5 mL,混合均勻,50 ℃恒溫水浴20 min后,加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%的三氯乙酸2.5 mL終止反應(yīng)。取反應(yīng)溶液2.5 mL,加入2.5 mL蒸餾水和0.5 mL FeCl3,混合均勻靜置10 min,4500 r/min離心10 min,在700 nm波長(zhǎng)處測(cè)吸光度,VC作為陽(yáng)性對(duì)照,樣品平行測(cè)3次取平均值。

1.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

數(shù)據(jù)以平均數(shù)和標(biāo)準(zhǔn)偏差(x±SD)表示,采用SAS軟件AVOVA程序進(jìn)行顯著性分析,Duncan程序進(jìn)行多重比較。

2 結(jié)果與討論

2.1 FVP化學(xué)組分

不同干燥方法得到的FVP化學(xué)組成見(jiàn)表1,從表1中可以看出,FVP-H、FVP-V和FVP-F均含有中性糖、蛋白質(zhì)及糖醛酸。一般把含有酸性基團(tuán)的多糖都稱為酸性多糖,從化學(xué)結(jié)構(gòu)上分析,酸性多糖鏈除了含酸性基團(tuán)(主要是糖醛酸和硫酸根)外,可能還含有中性單糖[16],因此推斷這三種多糖是酸性多糖,三種多糖中中性糖和蛋白含量(即百分含量)差異不明顯。FVP-H的糖醛酸含量低于FVP-V和FVP-F,差異顯著(p<0.05),這可能是由于FVP-H在干燥過(guò)程中氧氣的存在及高溫對(duì)糖醛酸的破壞[17]。

表1 不同干燥方法的FVP化學(xué)組成(%,W/W)Table 1 Chemical composition of FVP dried by different methods(%,W/W)

注:該表內(nèi)數(shù)據(jù)為平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差(n=3),同行不同字母表示差異顯著(p<0.05);表2同。

2.2 FVP單糖組成

標(biāo)準(zhǔn)單糖經(jīng)乙?；蟮臍庀嗌V圖見(jiàn)圖1,給出了不同出峰時(shí)間所代表的單糖。不同干燥方法得到的FVP-H、FVP-V 和FVP-F的單糖氣相色譜圖分別見(jiàn)圖2～圖4,單糖組成(質(zhì)量分?jǐn)?shù))見(jiàn)表2,從圖2～圖4和表2可以看出,三種FVP主要由木糖、甘露糖、鼠李糖和半乳糖四種單糖組成,其中FVP-H和FVP-V單糖組成差異不明顯,FVP-F單糖組成與FVP-H和FVP-V差異顯著(p<0.05),表明干燥方法對(duì)多糖的單糖種類沒(méi)有影響,但會(huì)改變單糖的構(gòu)成比例。

圖1 標(biāo)準(zhǔn)單糖經(jīng)乙?；蟮臍庀嗌V圖Fig.1 Gas chromatogram of standardmonosaccharides with acetylation

圖2 FVP-H單糖的氣相色譜Fig.2 Gas chromatogram of the monosaccharides of FVP-H

圖3 FVP-V單糖的氣相色譜Fig.3 Gas chromatogram of the monosaccharides of FVP-V

圖4 FVP-F單糖的氣相色譜Fig.4 Gas chromatogram of the monosaccharides of FVP-F

2.3 FVP相對(duì)分子質(zhì)量

采用高效液相色譜方法分析了FVP-H、FVP-V和FVP-F的相對(duì)分子質(zhì)量,結(jié)果分別見(jiàn)圖5～圖7,從圖5～圖7可以看出,FVP-H、FVP-V和FVP-F相對(duì)分子質(zhì)量分別為2342309、2375843、2358437 Da,不同干燥方法得到的多糖相對(duì)分子質(zhì)量變化不明顯。

圖5 FVP-H相對(duì)分子質(zhì)量Fig.5 Relative molecular weight of FVP-H

圖6 FVP-V相對(duì)分子質(zhì)量Fig.6 Relative molecular weight of FVP-V

圖7 FVP-F相對(duì)分子質(zhì)量Fig.7 Relative molecular weight of FVP-F

2.4 干燥方法對(duì)FVP抗氧化活性的影響

2.4.1 干燥方法對(duì)FVP羥基自由基清除的影響 干燥方法對(duì)FVP清除羥基自由基的影響結(jié)果見(jiàn)圖8。在一定的質(zhì)量濃度范圍內(nèi),隨著FVP-F、FVP-V和FVP-H質(zhì)量濃度的增加,對(duì)羥基自由基的清除作用增加,清除作用與濃度呈正相關(guān)關(guān)系,其中FVP-F對(duì)羥基自由基的清除作用最強(qiáng),其次是FVP-V和FVP-H,在質(zhì)量濃度為4.0 mg/mL時(shí),FVP-F、FVP-V和FVP-H的清除率分別為90.3%、73.4%和59.8%,但弱于VC。

圖8 干燥方法對(duì)FVP清除羥基自由基的影響Fig.8 Scavenging effect of FVP dried by different methods on hydroxyl free radical

2.4.2 干燥方法對(duì)FVP清除DPPH自由基的影響 干燥方法對(duì)FVP清除DPPH自由基的影響結(jié)果如圖9所示。從圖9可以看出,三種干燥方法得到的多糖均具有一定的DPPH自由基清除作用,在一定的質(zhì)量濃度范圍內(nèi),隨著FVP-F、FVP-V和FVP-H質(zhì)量濃度的增加,其對(duì)DPPH自由基的清除作用增加,清除作用與濃度呈正相關(guān)關(guān)系,其中FVP-F對(duì)DPPH自由基的清除作用最強(qiáng),其次是FVP-V和FVP-H,在質(zhì)量濃度為4.0 mg/mL時(shí),FVP-F、FVP-V和FVP-H對(duì)DPPH自由基清除率分別為48.7%、40.8%和36.9%,但弱于VC。

圖9 干燥方法對(duì)FVP清除DPPH自由基的影響Fig.9 Scavenging effect of FVP dried by different methods on the DPPH radical

2.4.3 干燥方法對(duì)FVP清除超氧陰離子自由基的影響 干燥方法對(duì)FVP清除超氧陰離子自由基的影響結(jié)果見(jiàn)圖10,三種干燥方法得到的多糖均具有一定的超氧陰離子自由基清除作用,在一定的質(zhì)量濃度范圍內(nèi),隨著FVP-F、FVP-V和FVP-H質(zhì)量濃度的增加,對(duì)超氧陰離子自由基的清除作用增加,清除作用與濃度呈正相關(guān)關(guān)系,其中FVP-F對(duì)超氧陰離子自由基的清除作用最強(qiáng),其次是FVP-V和FVP-H,在質(zhì)量濃度為4.0 mg/mL時(shí),FVP-F、FVP-V和FVP-H對(duì)超氧陰離子自由基清除率分別為77.8%、66.6%和56.2%,但弱于VC。

圖10 干燥方法對(duì)FVP清除超氧陰離子的影響Fig.10 Scavenging effect of FVP dried by different methods on hydroxyl free radical

2.4.4 干燥方法對(duì)FVP還原力的影響 干燥方法對(duì)FVP還原力的影響結(jié)果見(jiàn)圖11,三種干燥方法得到的多糖均具有一定的還原力,在一定的質(zhì)量濃度范圍內(nèi),隨著FVP-F、FVP-V和 FVP-H質(zhì)量濃度的增加,還原力增加,還原力與濃度呈正相關(guān)關(guān)系,其中FVP-F的還原力最強(qiáng),其次是FVP-V和FVP-H,在質(zhì)量濃度為4.0 mg/mL時(shí),FVP-F、FVP-V和FVP-H的還原力分別為0.94、0.894和0.789,但弱于VC。

圖11 干燥方法對(duì)FVP還原力的影響Fig.11 Effect of FVP dried by different methods on reducing power scavenging

3 結(jié)論

以金針菇為原料,利用傳統(tǒng)水提法提取金針菇多糖,分別采用熱風(fēng)干燥、真空干燥和冷凍干燥三種干燥方法對(duì)金針菇多糖進(jìn)行干燥,得到傳統(tǒng)熱風(fēng)干燥多糖(FVP-H)、真空干燥多糖(FVP-V)和冷凍干燥多糖(FVP-F),對(duì)其組分和抗氧化活性進(jìn)行研究,得到如下結(jié)論:不同干燥方法對(duì)其單糖種類沒(méi)有影響,但會(huì)改變單糖的構(gòu)成比例和糖醛酸含量,FVP-H、FVP-V和FVP-F相對(duì)分子質(zhì)量變化不明顯,分別為2342309、2375843和2358437Da。FVP-H,FVP-V 和FVP-F具有較強(qiáng)的清除DPPH自由基、羥基自由基、超氧陰離子自由基的能力和還原力,在一定濃度范圍內(nèi),多糖與抗氧化活性及還原能力之間呈正相關(guān)關(guān)系,干燥方法對(duì)FVP抗氧化活性具有不同的影響,其中FVP-F抗氧化活性最強(qiáng),其次是FVP-V 和FVP-H;冷凍干燥是制備FVP適宜的干燥方法。

[1]鄭義,李超,王乃馨.金針菇多糖的研究進(jìn)展[J].食品科學(xué),2010,31(17):425-428.

[2]?；ɡ?雷林生,余傳林,等. 金針菇多糖對(duì)小鼠免疫細(xì)胞產(chǎn)生細(xì)胞因子及對(duì)荷瘤小鼠血清細(xì)胞因子含量的影響[J].中藥材,2009,32(4):561-563.

[3]Pang XB,Yao WB,Yang XB. Purification,characterization and biological activity on hepatocytes of a polysaccharide from Flammulina velutipes mycelium[J].Carbohydrate Polymers,2007,70(3):291-297.

[4] 陳芝蕓,嚴(yán)茂祥,項(xiàng)柏康. 金針菇多糖對(duì)Lewis肺癌荷瘤小鼠的抑瘤作用及免疫功能的影響[J].中國(guó)中醫(yī)藥科技,2003,10(4):226-227.

[5]潘鴻輝,宇雄濤,黃紀(jì)國(guó),等. 金針菇多糖改善小鼠學(xué)習(xí)記憶功能[J].中國(guó)食用菌,2014,35(5):40-42.

[6]徐洲,劉靜,馮士令,等.不同干燥方法對(duì)淫羊藿多糖化學(xué)性質(zhì)和抗氧化活性的影響[J].食品工業(yè)科技,2015,36(19):116-119,123.

[7]吳振,李紅,羅楊,等.不同干燥方式對(duì)銀耳多糖理化特性及抗氧化活性的影響[J].食品科學(xué),2014,35(13):93-97.

[8]Fan LP,Li JW,Deng KQ,et al. Effects of drying methods on the antioxidant activities of polysaccharides extracted from Ganoderma lucidum[J]. Carbohydrate Polymers,2012,87(2):1849-1854.

[9] 張惟杰主編.糖復(fù)合物生化研究技術(shù)[M].杭州:浙江大學(xué)出版社,2003:52-54.

[10]Lowry OH,Rosebrough NJ,Farr A,et al. Protein measurement with the folin phenol reagent[J]. Journal of Biological Chemistry,1951,193:265-275.

[11]Blumenkrantz N,Gasboe H. New method for quantitative determination of uronic acid[J].Aanalytical Biochemistry,1973,54:484-489.

[12]Wang HY,Jiang XL,Mu HJ,et al. Structure and protective effect of exopolysaccharide from P. Agglomerans strain KFS-9 against UV radiation[J]. Microbiological Research,2007,162(2):124-129.

[13]Liu LX,Sun Y,Laura T,et al. Determination of polyphenolic content and antioxidant activity of kudingcha made from Ilex kudingcha C.J. Tseng[J]. Food Chemistry,2009,112(1):35-41.

[14]Jiang B,Zhang HY,Liu CJ,et al. Extraction of watersoluble polysaccharide and the antioxidant activity from Ginkgo biloba leaves[J]. Medicinal Chemistry Research,2010,19(3):262-270.

[15]Wu HC,Chen HM,Shiau CY. Free amino acids and peptides as related to antioxidant properties in protein ydrolysates of mackerel(Scomberaustriasicus)[J]. Food Research International,2003,36(9/10):949-957.

[16]熊雙麗,李安林. 酸性多糖的最新研究進(jìn)展[J].食品科技,2010,35(5):80-83.

[17]Ma LS,Chen HX,Zhu WC,et al. Effect of different drying methods on physicochemical properties and antioxidant activities of polysaccharides extracted from mushroom Inonotus obliquus[J].Food Research International,2013,50(2):633-640.

EffectofdifferentdryingmethodsonantioxidantactivitiesofpolysaccharidesextractedfromFlammulinavelutipes

CHENYi-yong,LIJia-qi,ZHAOYuan-yuan,CHENHui,GUBing-fei,LIYi-tian,ZHAOPei

(School of Biology and Food Engineering,Changshu Institute of Technology,Changshu 215500,China)

TS255.1

A

1002-0306(2017)18-0040-06

2017-02-07

陳義勇(1974-)，男，博士，副教授，研究方向：食品科學(xué)與天然活性成分，E-mail:chenyyxp@126.com。

國(guó)家星火計(jì)劃項(xiàng)目(2014GA690011)；張家港市科技支撐計(jì)劃(農(nóng)業(yè))項(xiàng)目(ZKN1304)。

10.13386/j.issn1002-0306.2017.18.008