食品中金黃色葡萄球菌生物被膜形成基因分析及影響因素研究

馬伊薩蘭,張 榮,王洪志,趙燕英,陳 娟,劉 驥,唐俊妮

(西南民族大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,四川成都 610041)

食品中金黃色葡萄球菌生物被膜形成基因分析及影響因素研究

馬伊薩蘭,張 榮,王洪志,趙燕英,陳 娟,劉 驥,唐俊妮*

(西南民族大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,四川成都 610041)

分析金黃色葡萄球菌食品分離菌株生物被膜形成相關(guān)基因,研究茶多酚和乳酸鏈球菌素(Nisin)對(duì)不同菌株生長(zhǎng)及生物被膜形成的影響。以實(shí)驗(yàn)室保存的16株金黃色葡萄球菌食品分離菌株為研究對(duì)象,采用聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)檢測(cè)14種生物被膜形成相關(guān)基因;通過(guò)微孔板法研究不同濃度茶多酚和Nisin對(duì)不同菌株生長(zhǎng)的抑制作用,確定最小抑菌濃度(MIC);在此基礎(chǔ)上進(jìn)一步研究茶多酚和Nisin對(duì)生物被膜形成能力影響。結(jié)果表明:14種生物被膜形成相關(guān)基因中有10種被檢出,其中cna、ebpS、fib和icaAD基因檢出率為100%,sasC為87.5%、fnbA為68.75%、sasG為68.75%、clfB為68.75%、eno為62.5%,icaBC為56.25%;16株菌株中均不攜帶bbp、bap、clfA和fnbB基因。16株菌株均能形成生物被膜,但形成能力有差異,其中F23、F44、F58、F64、F71、F86、F107和F109等8株菌株為被膜強(qiáng)形成菌株,F7、F19、F40、F46、F60、F99、F101、F106等8株菌株為被膜弱形成菌株。茶多酚和Nisin對(duì)16株金黃色葡萄球菌食品分離菌株的MIC范圍分別為0.1～0.2 g/L和0.125～1 g/L,茶多酚和Nisin在1/2MIC和1/4MIC濃度下對(duì)生物被膜形成抑制作用明顯(p<0.05),且茶多酚抑制效果強(qiáng)于Nisin。本研究結(jié)果為食品中金黃色葡萄球菌生物被膜形成控制具有參考意義。

金黃色葡萄球菌,生物被膜形成相關(guān)基因,最小抑菌濃度,茶多酚,乳酸鏈球菌素

金黃色葡萄球菌是常見(jiàn)的食源性致病菌之一,能形成保護(hù)自身在不利環(huán)境條件下生存的生物被膜。生物被膜是大量細(xì)菌細(xì)胞嵌入自我分泌的可附著于生物和非生物體表面且可阻礙抗生素或消殺劑滲透的胞外基質(zhì)的聚合物[1],生物被膜可通過(guò)胞間粘附多糖和微生物表面成分識(shí)別粘附基質(zhì)分子形成[2-4]。在金黃色葡萄球菌中,一些菌株依賴(lài)于細(xì)胞分泌的β-1,6-聚-N-乙酰葡萄糖胺(PNAG)或黏附多糖(PIA)形成生物被膜,PIA/PNAG由ica操縱子(icaABCD)編碼,細(xì)胞與非親水性表面相互作用通過(guò)PIA控制[5];還有一些菌株不依賴(lài)于PIA/PNAG進(jìn)行粘附,這類(lèi)金黃色葡萄球菌生物被膜的形成主要是通過(guò)粘附基質(zhì)分子的共價(jià)結(jié)合而引起細(xì)胞相互聚集,如凝集因子ClfA和ClfB[6],纖連蛋白結(jié)合蛋白FnbA和FnbB[7],纖維蛋白原結(jié)合蛋白Fib、膠原結(jié)合蛋白Cna[8],層粘連蛋白結(jié)合蛋白Eno,彈力蛋白結(jié)合蛋白Ebp和骨唾液酸蛋白結(jié)合蛋白Bbp[9]。這些蛋白粘附基質(zhì)分子在介導(dǎo)細(xì)菌粘附和生物被膜形成發(fā)展過(guò)程中發(fā)揮重要作用。粘附基質(zhì)分子是引發(fā)骨與關(guān)節(jié)以及人工假體等感染的重要因素[10]。細(xì)菌生物被膜的形成幫助細(xì)菌粘附到生物或非生物材料表面并定植擴(kuò)散,阻礙抗生素滲透,大大增加了細(xì)菌的存活率和食品污染率,增加了慢性或復(fù)發(fā)性的細(xì)菌感染嚴(yán)重程度并導(dǎo)致細(xì)菌對(duì)抗菌劑或抗生素的耐藥模式?；谏锉荒ひ鸬穆约?xì)菌性感染以及細(xì)菌耐藥性不斷增加的趨勢(shì),在治療病原菌感染中探索新型治療策略也逐漸成為學(xué)者們的研究焦點(diǎn)。Nisin可以抑制細(xì)菌細(xì)胞壁的合成或嵌入膜形成孔隙,對(duì)大多數(shù)革蘭氏陽(yáng)性菌甚至一些多重耐藥菌株具有較高的抗菌活性[11],可有效抑制耐藥菌株和浮游細(xì)胞的生長(zhǎng),也有學(xué)者發(fā)現(xiàn)Nisin對(duì)細(xì)菌生物被膜的形成也有一定抑制作用[12-14]。茶多酚已被證實(shí)對(duì)革蘭氏陽(yáng)性菌和革蘭氏陰性菌具有抑菌活性,可抑制細(xì)菌對(duì)口腔表面附著[15-16]。本文擬針對(duì)金黃色葡萄球菌食品分離菌株生物被膜形成相關(guān)基因、生物被膜形成能力以及茶多酚和Nisin對(duì)菌株生物被膜形成的影響進(jìn)行研究,為食品中金黃色葡萄球菌生物被膜形成的控制策略提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。

1 材料和方法

1.1 材料與儀器

菌株來(lái)源 實(shí)驗(yàn)室保存的16株金黃色葡萄球菌食品分離菌株;胰蛋白胨大豆肉湯培養(yǎng)基(TSB)、Baird-Parker(BP)瓊脂基礎(chǔ) 青島海博生物技術(shù)有限公司;茶多酚、Nisin 上海源葉生物科技有限公司;草酸銨、甲醇、冰乙酸 分析純,成都市科龍化工試劑廠;結(jié)晶紫 Amresco公司。

Eppendorf 5804R型冷凍離心機(jī) Eppendorf中國(guó)有限公司;Bio-Rad PTC-200 PCR儀 Bio-Rad公司;Elx808酶標(biāo)儀 日本BIO-TEK公司;DYY-6C型電泳儀 北京六一儀器廠;GHP-9270隔水式恒溫培養(yǎng)箱 上海齊欣科學(xué)儀器有限公司;凝膠成像系統(tǒng)(補(bǔ)充相關(guān)信息)。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 DNA的提取 將保存的16株金黃色葡萄球菌各取50 μL分別接種于5 mL的TSB培養(yǎng)基中,37 ℃,轉(zhuǎn)速150 r/min培養(yǎng)18 h。取1 mL菌懸液4 ℃條件下12000 r/min離心2 min后,收集菌體,提取細(xì)菌DNA方法參考文獻(xiàn)[17]進(jìn)行,提取得到的DNA樣本于-20 ℃保存,用于生物被膜形成相關(guān)基因檢測(cè)。

1.2.2 生物被膜形成相關(guān)基因的檢測(cè) 檢測(cè)14種生物被膜形成相關(guān)基因,引物和擴(kuò)增條件參考文獻(xiàn)[18]。PCR產(chǎn)物采用瓊脂糖電泳和凝膠成像系統(tǒng)檢測(cè)。每一種基因的PCR陽(yáng)性產(chǎn)物選取一管送至上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)公司進(jìn)行測(cè)序和比對(duì)驗(yàn)證。

1.2.3 茶多酚和Nisin對(duì)金黃色葡萄球菌最小抑菌濃度的檢測(cè) 采用微量肉湯稀釋法測(cè)定茶多酚和Nisin對(duì)金黃色葡萄球菌最小抑菌濃度(Minimum inhibitory concentration,MIC),將培養(yǎng)過(guò)夜的菌液按1∶100接種到分別接種于96孔培養(yǎng)板中,使終濃度達(dá)到105CFU/mL。根據(jù)《食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn) 食品添加劑使用標(biāo)準(zhǔn)》(GB2760-2014)規(guī)定的茶多酚和Nisin最大使用限量0.8 g/L以及0.5 g/L的要求,利用二倍稀釋法,茶多酚的終濃度分別設(shè)置為0.8、0.4、0.2、0.1、0.05 g/L及對(duì)照組(C),Nisin的終濃度分別設(shè)置為0.5、0.25、0.125、0.0625、0.03125 g/L及對(duì)照組(C)。每個(gè)濃度梯度3個(gè)平行,同時(shí)設(shè)置空白組。實(shí)驗(yàn)組中加入160 μL的TSB、20 μL菌液及20 μL各稀釋濃度的茶多酚或Nisin,對(duì)照中用20 μL的無(wú)菌水代替茶多酚或Nisin,空白組中只加200 μL的TSB。37 ℃培養(yǎng)16 h,觀察能夠抑制金黃色葡萄球菌生長(zhǎng)的茶多酚或Nisin的最低濃度作為各自的最小抑菌濃度MIC。針對(duì)Nisin未測(cè)出MIC值的5株菌株,提高Nisin濃度為1、0.5、0.25 g/L,重新按上述方法進(jìn)行測(cè)定。

1.2.4 微孔板法檢測(cè)金黃色葡萄球菌菌株生物被膜形成能力 通過(guò)Baird-Parker瓊脂平板分別純化16株樣品菌株,挑取單菌落接種于TSB增菌液中,37 ℃,150 r/min過(guò)夜培養(yǎng),作為原始接種菌液。微孔板法采用文獻(xiàn)[19]描述的步驟進(jìn)行操作。其中,96孔板法中閾值(ODc)的定義為空白吸光值的2倍。判定標(biāo)準(zhǔn)是根據(jù)三次重復(fù)所測(cè)得的吸光值,將金黃色葡萄球菌生物被膜形成能力分為不形成生物被膜菌株(OD≤ODc),生物被膜弱形成菌株(ODc≤OD≤2×ODc),以及生物被膜強(qiáng)形成菌株(2×ODc≤OD)。

1.2.5 茶多酚和Nisin對(duì)金黃色葡萄球菌生物被膜形成的影響 研究茶多酚和Nisin在不同抑菌濃度下(1/2 MIC、1/4MIC、1/8MIC)對(duì)7株生物被膜強(qiáng)形成菌株生物被膜形成能力的影響。設(shè)置空白組、對(duì)照組、實(shí)驗(yàn)組1和實(shí)驗(yàn)組2,每組每個(gè)待測(cè)樣品做3個(gè)平行。實(shí)驗(yàn)組每孔分別加入160 μL的TSB和20 μL菌液,對(duì)照組中加入20 μL無(wú)菌水,空白組為200 μL的TSB。實(shí)驗(yàn)組1中加入20 μL不同濃度的茶多酚,實(shí)驗(yàn)組2中加入20 μL不同濃度的Nisin,37 ℃培養(yǎng)48 h。培養(yǎng)結(jié)束后,用移液槍移除浮游菌體,吸取200 μL的PBS于96孔板中洗滌3次,去掉浮游菌和松散的菌體細(xì)胞,加入100 μL甲醇固定15 min,吸去殘液,放置晾干,再加入100 μL 2%的結(jié)晶紫溶液,室溫放置5 min后,用移液槍吸去殘余染液,自來(lái)水洗滌至無(wú)色水滴,甩盡殘余水珠,放置于培養(yǎng)箱中37 ℃,30 min晾干后,加入100 μL 33%的冰乙酸溶解吸附的細(xì)胞和結(jié)晶紫,用酶標(biāo)儀測(cè)定其吸光度(630 nm)值。

表1 金黃色葡萄球菌食品分離菌株生物被膜形成相關(guān)基因檢測(cè)結(jié)果Table 1 The detection results of biofilm formation related genes in S. aureus food isolates

1.2.6 統(tǒng)計(jì)分析 使用SPSS 18.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,組內(nèi)計(jì)量比較采用單因素方差分析(analysis of Variance,ANOVA),Duncan方法比較組內(nèi)差異性,以p<0.05為差異具有統(tǒng)計(jì)意義。

2 結(jié)果與分析

2.1 16株金黃色葡萄球菌被膜形成相關(guān)基因檢測(cè)結(jié)果

16株金黃色葡萄球菌食品分離菌株中14種生物被膜形成相關(guān)基因檢測(cè)結(jié)果詳見(jiàn)表1?；騝na、ebpS、fib和icaAD檢出率為100%,sasC檢出率為87.5%,fnbA、sasG和clfB的檢出率均為68.75%,eno,icaBC檢出率分別為62.5%和56.25%,16株菌株均不攜帶bbp、bap、clfA和fnbB基因。菌株F7,F23,F40,F44,F46,F99,F106和F109各攜帶10個(gè)生物被膜形成相關(guān)基因,F19攜帶9個(gè)生物被膜形成相關(guān)基因,F86和F107各攜帶7個(gè)生物被膜形成相關(guān)基因,F60和F101各攜帶6個(gè)生物被膜形成相關(guān)基因,F58,F64,F71各攜帶5個(gè)生物被膜形成相關(guān)基因。

2.2 茶多酚和Nisin對(duì)金黃色葡萄球菌的MIC測(cè)定結(jié)果

茶多酚和Nisin對(duì)金黃色葡萄球菌的MIC測(cè)定結(jié)果詳見(jiàn)表2。茶多酚和Nisin對(duì)16株菌株的MIC范圍分別為0.1～0.2 g/L和0.125～1 g/L。茶多酚對(duì)F44、F58、F101菌株的MIC為0.2 g/L,對(duì)其余13株菌株MIC均為0.1 g/L;Nisin對(duì)F7、F23、F40、F60、F64、F86,F101、F106和F109的MIC為0.5 g/L,對(duì)F46和F19的MIC分別為0.25和0.125 g/L,Nisin對(duì)F44、F58、F71、F99和F107菌株的MIC值為1 g/L。

表2 茶多酚和Nisin對(duì)金黃色葡萄球菌的MIC測(cè)定結(jié)果Table 2 The minimum inhibitory concentration(MIC)value of tea polyphenols and Nisin to S. aureus food isolates

2.3 金黃色葡萄球菌生物被膜形成能力測(cè)定

金黃色葡萄球菌生物被膜形成能力測(cè)定結(jié)果詳見(jiàn)圖1。16株測(cè)試菌株中,F23、F44、F58、F64、F71、F86、F107和F109等8株菌株為被膜強(qiáng)形成菌株,F7、F19、F40、F46、F60、F99、F101、F106等8株菌株為被膜弱形成菌株。

圖1 金黃色葡萄球菌生物被膜形成能力測(cè)定結(jié)果Fig.1 The biofilm formation ability of S. aureus food isolates

2.4 茶多酚和Nisin對(duì)金黃色葡萄球菌生物被膜形成能力的影響

茶多酚和Nisin在不同亞抑菌濃度下對(duì)金黃色葡萄球菌生物被膜形成能力的影響詳見(jiàn)圖2。茶多酚在1/2MIC、1/4MIC和1/8MIC濃度下對(duì)7株菌株的生物被膜形成抑制效果均顯著(p<0.05)。Nisin對(duì)金黃色葡萄球菌的生物被膜形成也有較好抑制作用(p<0.05),但Nisin在1/4MIC濃度下對(duì)F71菌株的生物被膜形成影響不明顯(p>0.05),在1/8MIC濃度下對(duì)F71和F109生物被膜形成有促進(jìn)作用(p<0.05)?？梢?jiàn),不同亞抑菌濃度下,相比于Nisin,茶多酚對(duì)金黃色葡萄球菌被膜形成抑制效果更明顯。

圖2 茶多酚和Nisin在不同亞抑菌濃度下對(duì)金黃色葡萄球菌生物被膜形成能力影響Fig.2 The effect of tea polyphenols and Nisin on S. aureus biofilm formation at different sub-inhibitory concentration注:A為茶多酚;B為Nisin。

3 結(jié)論與討論

本研究發(fā)現(xiàn)cna、ebpS、fib和icaAD基因在所有檢測(cè)菌株中都存在,檢測(cè)率為100%,其次是sasC(87.5%)、fnbA(68.75%)、sasG(68.75%)、clfB(68.75%)、eno(62.5%)和icaBC(56.25%),16株菌株均不攜帶bbp、bap、clfA和fnbB基因,這與Ghasemian[20]等對(duì)從醫(yī)院患者分離出的金黃色葡萄球菌生物被膜相關(guān)基因檢測(cè)結(jié)果不同,推測(cè)主要原因可能是菌株來(lái)源不同,其次是研究樣本數(shù)量的差異。現(xiàn)有的研究認(rèn)為金黃色葡萄球菌分泌的β-1,6-聚-N-乙酰葡萄糖胺(PNAG)或黏附多糖(PIA)被認(rèn)為是葡萄球菌生物被膜形成的關(guān)鍵因子,需要icaADBC基因編碼的產(chǎn)物才能夠合成,因此,icaADBC被認(rèn)為是細(xì)胞間粘附的重要因子[5,21]。本研究中16株菌株icaAD基因檢出率為100%,icaBC基因檢出率為56.25%,與其他研究中icaAD基因高檢出率的結(jié)果相似[22-24],進(jìn)一步證實(shí)icaAD基因高檢出率與生物被膜形成之間的關(guān)系。說(shuō)明PIA/PNAG在金黃色葡萄球菌食品分離株被膜形成中起主要作用。另外,生物被膜形成還可通過(guò)粘附基質(zhì)分子的共價(jià)結(jié)合而引起細(xì)胞相互聚集[9]。其中,彈性蛋白結(jié)合蛋白EbpS通過(guò)與宿主胞外基質(zhì)粘附引起宿主感染,在金黃色葡萄球菌感染宿主的過(guò)程中起著至關(guān)重要的作用[25]。fib編碼的胞外纖維蛋白原結(jié)合蛋白Fib有助于金黃色葡萄球菌在血管和內(nèi)皮細(xì)胞上定植[22]。16株菌株ebpS和fib基因檢出率均為100%。結(jié)合16株菌株生物被膜的形成情況,推測(cè)fib、icaAD和ebpS基因可能與實(shí)驗(yàn)菌株形成被膜能力聯(lián)系密切。表面蛋白SasG在生物被膜累積階段形成,是典型的細(xì)胞壁結(jié)合蛋白[26-27],SasG促使細(xì)胞聚集,在金黃色葡萄球菌感染中促進(jìn)細(xì)菌對(duì)宿主細(xì)胞粘附[28]。Schroeder等[29]表明SasC不僅可以促進(jìn)細(xì)胞間聚集,而且可提高細(xì)胞對(duì)高分子材料的粘附力。16株菌株sasC和sasG攜帶率分別為87.5%和68.75%,說(shuō)明sasC和sasG基因在金黃色葡萄球菌被膜形成中也起到了重要作用。FnbA和FnbB是金黃色葡萄球菌重要粘附蛋白,研究表明由fnb基因編碼的金黃色葡萄球菌更容易引發(fā)侵襲性疾病[30]。還有學(xué)者認(rèn)為FnbA和FnbB蛋白分子可促使耐甲氧西林金黃色葡萄球菌生物被膜形成和聚集[31]。凝集因子ClfB是金黃色葡萄球菌在鼻腔中定植的重要因子[32]。本研究中fnbA檢出率為68.75%,clfB檢出率為68.75%,fnbB未檢出,推測(cè)fnbA和clfB與食品分離菌株生物被膜形成存在一定相關(guān)性。在16株金黃色葡萄球菌中,8株菌株為被膜強(qiáng)形成能力菌株,所檢出的被膜相關(guān)基因數(shù)量為5～10不等。其中,F58、F64和F71產(chǎn)被膜能力最強(qiáng),但三株菌株均只檢出5個(gè)基因,并且三株菌均攜帶了cna、ebpS、fib和icaAD基因。推測(cè)在金黃色葡萄球菌食品分離菌株的被膜形成中,cna、ebpS、fib和icaAD可能起著主導(dǎo)作用。雖然F7、F40、F46、F99和F106均攜帶了10個(gè)基因,但這些菌株都是弱被膜形成菌株,可以看出,并不是攜帶被膜基因個(gè)數(shù)越多,被膜形成能力就越強(qiáng)。基因的表達(dá)還受環(huán)境條件等其他因素的影響[33]。

兒茶素作為茶多酚的有效成分,可以結(jié)合細(xì)菌的膜脂質(zhì)雙分子層破壞細(xì)胞膜[34]。有學(xué)者發(fā)現(xiàn)兒茶素也可通過(guò)抑制特定還原酶抑制細(xì)菌脂質(zhì)分子的形成[35]。另外,還發(fā)現(xiàn)兒茶素可以干擾DNA的復(fù)制能力,從而抑制DNA促旋酶的功能[36]。Reygaert等[38]的研究表明茶多酚可以抑制耐甲氧西林金黃色葡萄球菌青霉素結(jié)合蛋白2a(PBP2a)的合成。本研究也證實(shí)茶多酚對(duì)金黃色葡萄球菌具有好的抑制效果。茶多酚在亞抑菌濃度下的抑菌效果強(qiáng)于Nisin。16株金黃色葡萄球菌中,茶多酚的MIC除了F44、F58和F101為0.2 g/L外,其余均為0.1 g/L,而Nisin的MIC范圍從1～0.125 g/L不等。茶多酚和Nisin在1/2MIC濃度下對(duì)各菌株被膜形成具有較好抑制作用,并有劑量依賴(lài)性。Okuda等[14]的研究中也有類(lèi)似發(fā)現(xiàn)。但是Nisin在1/8MIC濃度時(shí)出現(xiàn)對(duì)F71和F109被膜形成的促進(jìn)作用,具體原因還未知,在以后的研究中我們將進(jìn)一步關(guān)注此現(xiàn)象。針對(duì)金黃色葡萄球菌被膜形成相關(guān)基因在被膜形成中的作用以及食品添加劑對(duì)被膜形成抑制機(jī)理還有待進(jìn)一步深入研究。

綜上,通過(guò)本文研究發(fā)現(xiàn),金黃色葡萄球菌食品分離菌株攜帶被膜基因數(shù)量多少與被膜形成能力強(qiáng)弱之間聯(lián)系不緊密,cna、ebpS、fib和icaAD基因可能起著主導(dǎo)作用。茶多酚和Nisin在亞抑菌濃度下對(duì)金黃色葡萄球菌的生長(zhǎng)和被膜形成均具有抑制作用。本結(jié)果為食品中產(chǎn)被膜金黃色葡萄球菌的預(yù)防和控制提供參考。

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Analysis of biofilm formation related genes and its influence factors forStaphylococcusauresfood isolates

MA Yisalan,ZHANG Rong,WANG Hong-zhi,ZHAO Yan-ying,CHEN Juan,LIU Ji,TANG Jun-ni*

(College of Life Science and Technology,Southwest University for Nationalities,Chengdu 610041,China)

The present study investigated 14 biofilm formation related genes involved inStaphylococcusaureusfood isolates and further evaluated the effect of tea polyphenols and Nisin on the growth and biofilm formation of these strains. All the 16S.aureusstrains were collected from food source. 14 adhesin genes were detected by polymerase chain reaction(PCR)using specific primer. The antibacterial activity and minimal inhibitory concentration(MIC)of tea polyphenols and Nisin were tested using the microtiter-plate method. The effects of tea polyphenols and Nisin on the biofilm formation were also executed using microtiter-plate method. The results showed that 10/14 adhesin genes were detected. The detection rates ofcna,ebpS,fibandicaADgenes were 100%,followed bysasC(87.5%),fnbA(68.75%),sasG(68.75%),clfB(68.75%),eno(62.5%)andicaBC(56.25%),respectively. However,thebbp,bap,clfAandfnbBgenes were not present in any strains detected. All the tested strains were found to have the ability to form and accumulate biofilm. F23、F44、F58、F64、F71、F86、F107 and F109 were strong biofilm producers,and F7、F19、F40、F46、F60、F99、F101、F106 were weak biofilm producers. The MIC values of tea polyphenols and Nisin to 16 strains ranged from 0.1 to 0.2 g/L and 0.125 to 1 g/L,respectively. 1/2 MIC and 1/4MIC of tea polyphenols and Nisin had very significant inhibitory effect on the biofilm formation to the tested strains(p<0.05),and tea polyphenols had better antibacterial activity toS.aureusstrains than Nisin. The results of this study would play a valued role to theS.aureusfood isolates biofilm formation and control strategy.

Staphylococcusaureus;biofilm formation related genes;minimal inhibitory concentration;tea polyphenol;Nisin

2017-02-21

馬伊薩蘭(1991-)，女，碩士研究生，研究方向：畜產(chǎn)品加工與安全，E-mail:403884179@qq.com。

*通訊作者:唐俊妮(1971-)，女，博士，教授，研究方向：食品安全與食品微生物,E-mail：junneytang@aliyun.com。

國(guó)家自然科學(xué)基金(31371781)；四川省應(yīng)用基礎(chǔ)項(xiàng)目(2014JY0253)。

TS201.3

A

1002-0306(2017)15-0129-06

10.13386/j.issn1002-0306.2017.15.025