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      人參皂苷酶Ⅲ型轉(zhuǎn)化人參皂苷Rc制備稀有皂苷C-Mc

      2017-08-07 07:15:01亨,瑩,權(quán),澤,
      關(guān)鍵詞:高活性物質(zhì)量純度

      李 冠 亨, 劉 春 瑩, 徐 龍 權(quán), 林 完 澤, 魚 紅 閃

      ( 1.大連工業(yè)大學(xué) 生物工程學(xué)院, 遼寧 大連 116034;2.韓京國立大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院, 京畿道 安城 456-749 )

      人參皂苷酶Ⅲ型轉(zhuǎn)化人參皂苷Rc制備稀有皂苷C-Mc

      李 冠 亨1, 劉 春 瑩1, 徐 龍 權(quán)1, 林 完 澤2, 魚 紅 閃1

      ( 1.大連工業(yè)大學(xué) 生物工程學(xué)院, 遼寧 大連 116034;2.韓京國立大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院, 京畿道 安城 456-749 )

      利用基因構(gòu)建克隆的E.coliC41菌產(chǎn)人參皂苷酶Ⅲ型,研究了酶轉(zhuǎn)化人參皂苷Rc制備高活性稀有皂苷C-Mc的方法。結(jié)果發(fā)現(xiàn),人參皂苷酶Ⅲ型先水解人參皂苷Rc的3-O-末端葡萄糖基生成C-Mc1,再水解C-Mc1的3-O-葡萄糖基生成C-Mc。人參皂苷酶Ⅲ型水解4.8 g的人參皂苷Rc,得到2.8 g 產(chǎn)物,經(jīng)HPLC檢測,其純度為90%。經(jīng)核磁共振檢測,產(chǎn)物結(jié)構(gòu)為20-O-α-L-阿拉伯呋喃糖基-(1→6)-β-D-葡萄糖基-20(S)-二醇苷元,即C-Mc。

      稀有人參皂苷;人參皂苷酶Ⅲ型;高效液相色譜;核磁共振

      0 引 言

      生曬參和西洋參中80%~90%的皂苷為Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re和Rg1,這些人參皂苷在人體內(nèi)吸收率低、活性低[1-3];而人參稀有皂苷C-K、Rh2、C-Mc等更容易被吸收,具有抗疲勞、抗癌等生理功能[4-6]。但是,生曬參中幾乎不含人參稀有皂苷。因此,將人參中含量高的皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re和Rg1生物轉(zhuǎn)化制備成高活性的C-K、Rh2、C-Mc等人參稀有皂苷,對人參產(chǎn)業(yè)、新藥開發(fā)、保健食品和化妝品等具有重大意義[7-8]。

      人參皂苷的轉(zhuǎn)化方法主要有化學(xué)法和酶法,這兩種方法都能使人參皂苷轉(zhuǎn)化成高活性的稀有皂苷。通過化學(xué)法轉(zhuǎn)化的人參皂苷具有目的性差、產(chǎn)物龐雜、污染嚴(yán)重、難于下游分離純化等劣勢。酶法水解人參皂苷具有很多的優(yōu)點(diǎn),反應(yīng)條件溫和,在常溫下即可反應(yīng),反應(yīng)過程容易控制;有很強(qiáng)的底物專一性,產(chǎn)物單一,對環(huán)境沒有污染。李永淳等[9]用硅膠柱層析法,對前期采用生物酶轉(zhuǎn)化法制備并經(jīng)脫糖脫色處理過的粗品人參皂苷進(jìn)行了分離純化,得到了純度為82.2%的C-Mc。

      為了酶轉(zhuǎn)化得到高活性人參稀有皂苷,本實(shí)驗(yàn)室相繼報(bào)道了4種特異的人參皂苷糖苷酶:人參皂苷糖苷酶Ⅰ型,能水解人參二醇類皂苷Rb1、Rb2、Rc和Rd的第3(C)-O-和20(C)-O-多種糖基[10];人參皂苷酶Ⅱ型,能水解原人參二醇類皂苷的20-O-多種糖基[11];人參皂苷酶Ⅲ型,能水解原人參三醇類皂苷3-O-多種糖基[12]。本實(shí)驗(yàn)室與韓國林完澤教授合作研究,將新發(fā)現(xiàn)的Terrabacterginsenosidimutansgsoil 3082T菌種中的人參糖苷酶基因(bgl-gyp17),克隆到E.coliC41(DE3)中表達(dá),得到人參皂苷酶Ⅲ型,該酶能水解人參二醇類皂苷Rb1、Rb2、Rc的3-O-多種糖基[13]。

      本實(shí)驗(yàn)利用已克隆表達(dá)的人參皂苷酶Ⅲ型,研究酶轉(zhuǎn)化人參皂苷Rc制備高活性稀有皂苷C-Mc的方法,對酶轉(zhuǎn)化產(chǎn)物進(jìn)行分離純化,并進(jìn)行核磁共振結(jié)構(gòu)鑒定。

      1 材料與方法

      1.1 材 料

      人參皂苷Rc,本實(shí)驗(yàn)室提供;產(chǎn)人參皂苷酶Ⅲ型的基因工程菌,本實(shí)驗(yàn)室人員與林完澤教授共同構(gòu)建;薄層層析板Silica gel 60-F254,德國Merck公司;大孔樹脂AB-8,南開大學(xué)化工廠。

      1.2 方 法

      1.2.1 酶轉(zhuǎn)化Rc制備高活性人參稀有皂苷C-Mc

      將4.8 g人參皂苷Rc溶解在200 mL的酶液中,在40 ℃搖床反應(yīng)2~24 h,用TLC檢測反應(yīng)程度,具體過程按參考文獻(xiàn)[14]進(jìn)行。

      1.2.2 薄層層析法(TLC)檢測轉(zhuǎn)化率

      展開劑配比為體積比為7∶3∶0.5的氯仿-甲醇-水溶液,10%硫酸加熱顯色。用BandScan軟件分析Rc轉(zhuǎn)化成C-Mc1和C-Mc的轉(zhuǎn)化率[15]。

      1.2.3 高效液相色譜法(HPLC)檢測純度

      色譜儀,Waters 2695高效液相色譜分析儀、Waters 2996二極管陣列檢測器及Empower色譜工作站進(jìn)行檢測。Knauer C18色譜柱(5 μm, 250 mm×3 mm);流動相:乙腈(A)-水(B),0~20 min,20%A等度;20~31 min,20%~32%A線性梯度;31~40 min,32%~43%A線性梯度;40~70 min,43%~100%A線性梯度。進(jìn)樣量10 μL,柱溫35 ℃,體積流量0.6 mL/min,檢測波長203 nm。

      1.2.4 核磁共振分析產(chǎn)物結(jié)構(gòu)

      使用瑞士Bruke AVANCE 600超導(dǎo)核磁共振波譜儀,對單體皂苷進(jìn)行核磁共振檢測,包括一維1H、13C、DEPT譜,二維HSQC、HMBC、COSY譜檢測。1H檢測頻率為600 MHz,13C檢測頻率為150 MHz,使用5 mm NMR探頭,實(shí)驗(yàn)溫度25 ℃,濕度40%,溶劑Pyridine-D5,氫譜和碳譜均以Pyridine-D5為內(nèi)標(biāo)。

      2 結(jié)果與討論

      2.1 人參皂苷Rc的酶轉(zhuǎn)化及酶反應(yīng)條件的優(yōu)化

      2.1.1 反應(yīng)pH

      以人參皂苷Rc為底物,分別在pH 2~10條件下反應(yīng)8 h,TLC檢測相對酶活力,結(jié)果如圖1所示。由圖1可知,人參皂苷酶Ⅲ型酶的最適pH為6。

      圖1 不同pH下的酶活力

      2.1.2 反應(yīng)溫度

      以人參皂苷Rc為底物,在pH=6條件下,分別在不同溫度下反應(yīng)8 h,TLC檢測相對酶活力,結(jié)果如圖2所示。由圖2可知,人參皂苷酶Ⅲ型酶的最適反應(yīng)溫度為40 ℃。

      圖2 不同溫度下的酶活力

      2.1.3 底物質(zhì)量分?jǐn)?shù)

      分別配制不同質(zhì)量分?jǐn)?shù)的人參皂苷Rc,在pH 6和40 ℃條件下反應(yīng)8 h,TLC檢測產(chǎn)物得率,結(jié)果如圖3所示。由圖3可知,底物質(zhì)量分?jǐn)?shù)為2%時(shí)產(chǎn)物得率最大。

      圖3 不同底物質(zhì)量分?jǐn)?shù)下的產(chǎn)物得率

      2.1.4 反應(yīng)時(shí)間

      在pH 6、反應(yīng)溫度為40 ℃,底物質(zhì)量分?jǐn)?shù)2%的條件下,每4 h取樣一次,TLC檢測,計(jì)算人參皂苷C-Mc的得率,結(jié)果如圖4所示。由圖4可知,反應(yīng)時(shí)間為24 h時(shí)C-Mc的得率最大。

      圖4 不同時(shí)間下的產(chǎn)物得率曲線

      2.2 人參皂苷Rc到C-Mc的酶轉(zhuǎn)化過程

      將25 mL酶液放入250 mL三角瓶中,再加入0.5 g人參皂苷Rc溶解,在最適反應(yīng)條件下,反應(yīng)2、3、10、20 h,各取樣0.2 mL,加入0.2 mL水飽和正丁醇終止反應(yīng),TLC結(jié)果如圖5所示。

      Rc,反應(yīng)底物;1、2、3、4,反應(yīng)2、3、10、20 h的產(chǎn)物;C-Mc、C-Mc1,混合的標(biāo)準(zhǔn)品

      圖5 人參皂苷Rc不同酶反應(yīng)時(shí)間的TLC結(jié)果

      Fig.5 TLC result of enzyme reaction of ginsenoside Rc at different time

      從圖5中可以看到,人參皂苷Rc酶反應(yīng)2 h時(shí),40%~45%的Rc轉(zhuǎn)化為C-Mc1;反應(yīng)3 h時(shí),80%以上的Rc轉(zhuǎn)化為C-Mc1,同時(shí)有少量C-Mc產(chǎn)生;酶反應(yīng)10 h時(shí),幾乎全部的Rc轉(zhuǎn)化為C-Mc1 和C-Mc,其比例約35∶65;酶反應(yīng)20 h時(shí),95%以上的產(chǎn)物為C-Mc,C-Mc1含量很低。

      由此可見,人參皂苷酶Ⅲ型,首先水解人參皂苷Rc的3-O-末端葡萄糖基生成C-Mc1,反應(yīng)速度較快;再水解C-Mc1的3-O-葡萄糖基生成C-Mc,反應(yīng)速度相對慢。由此可以得到酶轉(zhuǎn)化人參皂苷Rc的反應(yīng)方式,如圖6所示。

      2.3 人參皂苷Rc的酶轉(zhuǎn)化制備稀有皂苷C-Mc

      由圖5可知,酶反應(yīng)20 h時(shí),Rc的主要產(chǎn)物是C-Mc,因此反應(yīng)24 h,主要反應(yīng)產(chǎn)物是人參稀有皂苷C-Mc。按“1.2.2”的方法,4.8 g的人參皂苷Rc經(jīng)酶轉(zhuǎn)化,并經(jīng)AB-8大孔吸附樹脂純化處理得到2.8 g的C-Mc,產(chǎn)物得率達(dá)58%。

      圖6 人參皂苷酶Ⅲ型水解人參皂苷Rc的反應(yīng)式

      純化得到的C-Mc,采用HPLC進(jìn)行純度檢測。以人參皂苷Rc為標(biāo)準(zhǔn)品,采用“1.2.4”的方法,以峰面積為y軸,底物質(zhì)量分?jǐn)?shù)為x軸,得到標(biāo)準(zhǔn)方程為y=3×106x-16 915(R2=0.999 6)。采用相同的檢測條件,對純化得到的C-Mc進(jìn)行HPLC測定,結(jié)果如圖7所示。將峰面積帶入方程,計(jì)算得到產(chǎn)物C-Mc的純度為90%。

      2.4 酶轉(zhuǎn)化產(chǎn)物C-Mc的結(jié)構(gòu)鑒定

      取200 mg純度為90%的酶轉(zhuǎn)化產(chǎn)物,用MeOH-H2O體系結(jié)晶重結(jié)晶得到C-Mc單晶,然后作核磁共振分析。結(jié)果與參考文獻(xiàn)[12]比對,發(fā)現(xiàn)產(chǎn)物的化學(xué)位移與文獻(xiàn)中C-Mc的化學(xué)位移相似,因此可以確定其化學(xué)結(jié)構(gòu)。酶轉(zhuǎn)化產(chǎn)物C-Mc 核磁共振13C檢測結(jié)果如表1所示。

      圖7 產(chǎn)物人參稀有皂苷C-Mc的HPLC圖

      表1 人參稀有皂苷C-Mc的 13C NMR化學(xué)位移和結(jié)構(gòu)歸屬

      3 結(jié) 論

      利用本實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建的基因工程菌,對其產(chǎn)人參皂苷酶Ⅲ型,確定了最佳酶反應(yīng)條件:pH 6,反應(yīng)溫度40 ℃,最佳底物質(zhì)量分?jǐn)?shù)2%,最佳反應(yīng)時(shí)間24 h。對人參皂苷酶Ⅲ型的酶反應(yīng)過程研究表明,該酶的反應(yīng)產(chǎn)物C-Mc是分兩步催化反應(yīng)產(chǎn)生的,第一步催化水解人參皂苷Rc的3-O-末端葡萄糖基生成C-Mc1,第二步再水解C-Mc1的3-O-葡萄糖基生成C-Mc。4.8 g人參皂苷Rc通過人參皂苷酶Ⅲ型轉(zhuǎn)化,經(jīng)AB-8樹脂吸附處理得到C-Mc 2.8 g,產(chǎn)物得率達(dá)58%,HPLC純度達(dá)90%。產(chǎn)物經(jīng)核磁共振檢測,確定結(jié)構(gòu)為20-O-α-L- 阿拉伯呋喃糖基-(1→6)-β-D-葡萄糖基-20(S)-二醇苷元,即C-Mc。

      在酶轉(zhuǎn)化制備C-Mc的研究中,采用AB-8樹脂進(jìn)行純化處理,得到產(chǎn)物純度達(dá)90%,操作快捷簡單,無污染,適于工業(yè)化生產(chǎn)。

      [1] CHRISTENSE L P. Ginsenosides: chemistry, biosynthesis, analysis, and potential health effects[J]. Advances in Food and Nutrition Research, 2009, 55: 1-99.

      [2] 金鳳燮.天然產(chǎn)物生物轉(zhuǎn)化[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2009.

      [3] 劉春瑩,宋建國,李鵬飛,等.3種人參中的皂苷的組成[J].大連工業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2011,30(2):79-82.

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      Preparation of minor ginsenoside C-Mc from ginsenoside Rc using special ginsenosidase type-Ⅲ

      LI Guanheng1, LIU Chunying1, XU Longquan1, LIN Wanze2, YU Hongshan1

      ( 1.School of Biological Engineering, Dalian Polytechnic University, Dalian 116034, China;2.School of Life Science, Hankyong National University, Anseong 456-749, Korea )

      To study the enzymatic conversion from ginsenoside Rc to the rare ginsenoside C-Mc with high active, the ginsenosidase Ⅲ was expressed from recombinantEscherichiacoliC41 and its enzymatic transformation processes were explored. The 3-O-glucopyranoside end of ginsenoside Rc was hydrolyzed to C-Mc1 by ginsenosidase Ⅲ, then C-Mc1 was transformed to C-Mc. 4.8 g ginsenoside Rc was hydrolyzed to 2.8 g products by ginsenosidase Ⅲ, of which purity could reach to 90% determined by HPLC. The result of NMR showed that its structure was 20-O-[α-L-arabinofuranosyl-(1→6)-β-D-glucopyranosyl]-20(S)-protopanaxadiol, that was C-Mc.

      rare ginsenoside; ginsenosidase Ⅲ; HPLC; NMR

      2015-12-09.

      “重大新藥創(chuàng)制”科技重大專項(xiàng)(2012ZX09503001-003);國家高端外國專家項(xiàng)目(GDT20152100019).

      李冠亨(1992-),男,碩士研究生;通信作者:魚紅閃(1968-),男,教授.

      TS201.2;Q946.83

      A

      1674-1404(2017)04-0250-05

      李冠亨,劉春瑩,徐龍權(quán),林完澤,魚紅閃.人參皂苷酶Ⅲ型轉(zhuǎn)化人參皂苷Rc制備稀有皂苷C-Mc[J].大連工業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2017,36(4):250-254.

      LI Guanheng, LIU Chunying, XU Longquan, LIN Wanze, YU Hongshan. Preparation of minor ginsenoside C-Mc from ginsenoside Rc using special ginsenosidase type-Ⅲ[J]. Journal of Dalian Polytechnic University, 2017, 36(4): 250-254.

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