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    利用FecB多胎基因?qū)肱嘤_克羊多羔類型的研究

    2017-05-02 07:51:46羅生金
    黑龍江動(dòng)物繁殖 2017年2期
    關(guān)鍵詞:產(chǎn)羔率小尾寒羊哈薩克

    羅生金

    利用FecB多胎基因?qū)肱嘤_克羊多羔類型的研究

    羅生金

    (新疆哈密地區(qū)畜牧工作站,新疆 哈密 839000)

    以小尾寒羊和湖羊及寒哈F1羊、湖哈F1羊、橫交F2羊共計(jì)296只,用FecB基因?yàn)楹蜻x基因,采用PCR-RFLP方法檢測(cè)湖(寒)哈雜交F1及橫交F2羊群中存在3種基因型:BB型、B+型、++型。雜交F1代166只含等位基因B頻率為0.58,含等位基因+頻率為0.42;橫交F2代檢測(cè)64只含等位基因B頻率為0.41,含等位基因+頻率為0.59。對(duì)FecB 基因在 4 個(gè)不同類型綿羊中分布差異的卡方獨(dú)立性檢驗(yàn),結(jié)果表明:小尾寒羊、湖羊與湖(寒)哈雜交F1及橫交F2兩個(gè)類型綿羊相互之間分布差異極顯著(P0.01),湖羊與小尾寒羊之間分布差異不顯著(P>0.05)。 湖(寒)哈雜交及橫交F2羊基因型頻率差異不顯著(P>0.05)。說(shuō)明含F(xiàn)ecB基因羊與哈薩克母羊雜交后,F(xiàn)ecB基因顯性效果好,遺傳性能較為穩(wěn)定。對(duì)F1羊跟蹤調(diào)查,41只母羊產(chǎn)羔率為159%(64/41),繁殖成活率為146%(60/41),其中BB基因型1只產(chǎn)羔2只,產(chǎn)羔率為200%;B+基因型29只產(chǎn)羔50只,產(chǎn)羔率為172%;++基因型11只產(chǎn)羔12只,產(chǎn)羔率為109%;B+基因型與野生型(++)相比較提高了63個(gè)百分點(diǎn),差異極顯著(P0.01)。進(jìn)一步說(shuō)明FecB基因是高繁殖率主效基因,可有效提高F1羊產(chǎn)羔數(shù)。

    綿羊;FecB基因;PCR- RFLP;產(chǎn)羔數(shù)

    在國(guó)外采用分子標(biāo)記育種技術(shù)開(kāi)展新品種(品系)培育已取得突破性進(jìn)展。1919年澳大利亞的B Seear從新南威爾士州毛用型美利奴羊群中選出一只高繁殖力母羊,到1959年B Seear的羊群已經(jīng)具有很高的繁殖力,平均產(chǎn)羔1.94只,育成了多胎的Booroola Merino高產(chǎn)群[1]。Wilion等[2]發(fā)現(xiàn)骨形態(tài)發(fā)生BMPR-IB基因編碼區(qū)發(fā)生一處突變(A746G),導(dǎo)致了該受體激酶結(jié)構(gòu)域的第249位氨基酸由谷氨酰胺突變?yōu)榫彼幔≦→R),揭示了Booroola Merino綿羊排卵數(shù)增加的原因。1989年該基因被綿、山羊遺傳命名委員會(huì)正式定名為FecB 基因。在我國(guó),王根林等[3]利用限制性酶切片段長(zhǎng)度多態(tài)性PCR 技術(shù)首次發(fā)現(xiàn)湖羊和小尾寒羊存在FecB 基因,與Booroola Merino綿羊的多胎主效基因FecB的表現(xiàn)型基本相同。兩者產(chǎn)羔率分別為228.92%和270.00%。柳淑芳等[4]利用FecB基因?qū)?guó)內(nèi)多胎品種進(jìn)行基因型與產(chǎn)羔數(shù)的關(guān)聯(lián)分析,進(jìn)一步確認(rèn)了我國(guó)的湖羊、小尾寒羊等少數(shù)品種攜帶有多胎性能主基因。

    自2012年實(shí)施的自治區(qū)高技術(shù)項(xiàng)目“新疆

    1 材料和方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    綿羊血樣、1.5 mL離心管、采用酚-氯仿法提取綿羊基因組DNA、超純水、PCR引物、限制性內(nèi)切酶AvaⅡ、瓊脂糖、高速離心機(jī)、恒溫?fù)u床、PCR儀、電泳槽、電泳儀、凝膠自動(dòng)成像儀、自動(dòng)滅菌鍋、電子天平、干熱滅菌箱、移液槍。

    1.2 試驗(yàn)步驟

    綿羊多胎主效基因FecB基因,通過(guò)PCRRFLP法進(jìn)行檢測(cè)。分為3步:第1步,提取綿羊基因組DNA,通過(guò)酚-氯仿法從綿羊全血或者組織提取DNA;第2步,進(jìn)行PCR擴(kuò)增FecB基因特異片段,通過(guò)PCR方法擴(kuò)增包含突變位點(diǎn)的片段;第3步,PCR產(chǎn)物進(jìn)行酶切和結(jié)果判定。根據(jù)突變位點(diǎn)選擇特異性限制性內(nèi)切酶對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行酶切,酶切產(chǎn)物進(jìn)行電泳,根據(jù)電泳凝膠上DNA片段大小不同判定結(jié)果。檢測(cè)過(guò)程中,需要添加陰陽(yáng)性對(duì)照以保證檢測(cè)結(jié)果的準(zhǔn)確性。

    1.2.1 綿羊DNA提取

    將1ml抗凝血轉(zhuǎn)移至1.5 ml Eppendorf管;10 000 r/min離心10 min;棄去上清。加入1 ml紅細(xì)胞裂解液;充分混勻,棄去上清液;10 000 r/min離心10 min,重復(fù)上述步驟至上清液透明、沉淀呈淡白色。加入白細(xì)胞裂解液500 μl,加蛋白酶 κ至12μL(20 mg/ml)并混勻;RNase A 12μl(2mg/ ml)55 ℃過(guò)夜,顛倒混勻2次。將反應(yīng)液冷卻至室溫;加 Tris-飽和酚 600μL;溫和搖動(dòng)離心管10 min使其充分混勻; 10 000 r/min離心 10 min;將上清液轉(zhuǎn)入另一1.5 ml離心管中。加1∶1的Tris-飽和酚/氯仿 600μL;充分混勻 10 min;10 000 r/min 離心 10 min;將上清液轉(zhuǎn)入另一1.5 ml離心管中。加氯仿600μL ;充分混勻10 min;10 000 r/min離心10 min;將上清液轉(zhuǎn)入另一1.5 ml離心管中。加 2倍體積的冰冷的無(wú)水乙醇,混合轉(zhuǎn)動(dòng)離心管直至白色的絮狀沉淀析出;-20 ℃保存 20 min。13 000 r/min 離心10 min;棄去上清液,用70%的冰冷乙醇漂洗DNA沉淀1次。3 000 r/min離心2 min;棄去上清液,室溫下使乙醇揮發(fā)干凈。干燥后的DNA溶于50~100μL的水中;4℃保存直至DNA完全溶解, -20 ℃保存。

    1.2.2 FecB基因的PCR擴(kuò)增

    20μl反應(yīng)體系組成:TAQ DNA聚合酶(5 u/μl)0.12μl,10×PCR緩沖液2μl,MgCl2(25 mmol/L)2μl,DNTP(2.5mmoL/L)2μl,基因組DNA(稀釋后)1μl(50 ng左右),上游引物(10 pmol/ml)1.0μl,下游引物(10 pmol/ml)1.0μl,加水至 20μl。

    1.2.3 PCR產(chǎn)物的檢測(cè)

    用1×TAE電泳緩沖液配制2%的瓊脂糖凝膠(含0.5μg/ml EB)。取PCR產(chǎn)物4μl,混合1μl 5×Loading Buffer上樣,以50 bp PCR Maker進(jìn)行分子量對(duì)照。以1×TAE電泳緩沖液,電泳55 V(5V/cm)40 min。

    凝膠自動(dòng)成像儀或紫外透射儀下觀察結(jié)果,檢測(cè)目的條帶純度及亮度。

    1.2.4 酶切反應(yīng)體系

    AvaⅡ0.4μl,10×M Buffer 2μl,滅菌水10μl,PCR產(chǎn)物 8μl,總量 20μl,37℃水浴4 h。

    1.2.5 酶切產(chǎn)物的檢測(cè)

    用1×TAE電泳緩沖液配制3.3%的瓊脂糖凝膠(含0.5μg/ml EB)。取酶切產(chǎn)物10μl,混合1μl 5×Loading Buffer上樣,以50 bp PCR Maker進(jìn)行分子量對(duì)照。以1×TAE電泳緩沖液,電泳55 V(5V/cm)40 min。

    凝膠自動(dòng)成像儀或紫外透射儀下觀察結(jié)果,檢測(cè)目的條帶純度及亮度。

    1.3 分析

    1.3.1 PCR產(chǎn)物分析

    對(duì)綿羊基因組DNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增,得到長(zhǎng)140 bp 的特異性條帶。

    圖1 綿羊FecB基因PCR結(jié)果(1-21為PCR擴(kuò)增條帶,M為50 bp的DNA Marker)

    1.3.2 酶切產(chǎn)物分析

    用AvaⅡ內(nèi)切酶對(duì)BMPR突變引物所擴(kuò)增的PCR產(chǎn)物(140 bp)進(jìn)行酶切,用瓊脂糖凝膠電泳的方法對(duì)產(chǎn)物進(jìn)行檢測(cè)。電泳后顯色結(jié)果清晰,突變純合子只有110 bp帶,突變雜合子有兩條帶(140 bp、110 bp),野生型的只有140 bp的帶。

    圖2 綿羊FecB基因PCR-RFLP結(jié)果

    1.4 育種技術(shù)方案

    含F(xiàn)ecB純合子小尾寒羊(湖羊)種公羊10只與 哈薩克羊500只,進(jìn)行雜交選配。按一定比例對(duì)母羔采血進(jìn)行多胎基因測(cè)定,初步建立了F1代、F2代公、母后備羊群,做好數(shù)據(jù)整理。

    1.5 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

    數(shù)據(jù)采用SPSS19.0、Excel軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,用單因子方差分析進(jìn)行平均數(shù)與標(biāo)準(zhǔn)差計(jì)算,并進(jìn)行Duncan氏多重比較檢驗(yàn)。結(jié)果用平均值(X)±標(biāo)準(zhǔn)差(S)表示。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 FecB基因在雜交類群中分布統(tǒng)計(jì)分析

    在湖(寒)哈雜交F1及橫交F2羊群中存在3種基因型:BB型、B+型、++型。雜交F1代166只含等位基因B頻率為0.58,含等位基因+頻率為0.42;橫交F2代檢測(cè)64只含等位基因B頻率為0.41,含等位基因+頻率為0.59。對(duì)FecB基因在 4 個(gè)不同類型綿羊中分布差異的卡方獨(dú)立性檢驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)(表 2)。由表2可知,小尾寒羊、湖羊與湖(寒)哈雜交F1及橫交F2兩個(gè)類型綿羊相互之間分布差異極顯著(P0.01);湖羊與小尾寒羊之間分布差異不顯著(P>0.05);湖(寒)哈雜交及橫交F2羊基因型頻率差異不顯著(P>0.05)。說(shuō)明含F(xiàn)ecB基因羊與哈薩克母羊雜交后,F(xiàn)ecB基因顯性效果好,遺傳性能較為穩(wěn)定。

    表1 成羊及雜交羔羊FecB基因頻率和基因型頻率分布

    表2 不同綿羊群體之間基因型分布差異檢驗(yàn)

    2.2 橫交固定FecB基因?qū)Τ醍a(chǎn)母羊產(chǎn)羔數(shù)的影響

    應(yīng)用FecB基因標(biāo)記技術(shù)提高產(chǎn)羔率,選擇5只F1代理想型B+基因型公羊與無(wú)親緣關(guān)系的攜帶不同基因型母羊136只配種,對(duì)41只母羊產(chǎn)羔情況跟蹤觀察。由表3可知,41只母羊產(chǎn)羔64只,產(chǎn)羔率為156%,其中BB基因型1只產(chǎn)羔2只,產(chǎn)羔率為200%;B+基因型29只產(chǎn)羔50只,產(chǎn)羔率為172%;++基因型11只產(chǎn)羔12只,產(chǎn)羔率為109%;B+基因型與野生型(++)相比較提高了63個(gè)百分點(diǎn),差異極顯著(P0.01)。以上研究表明,多胎基因FecB分子標(biāo)記技術(shù),可有效提高綿羊產(chǎn)羔數(shù)。因此,在開(kāi)展橫交固定及選育過(guò)程中,應(yīng)優(yōu)先選擇攜帶多胎基因的公、母羊配種,以利于增加哈薩克羊新類型的多胎型。

    2.3 哈薩克羊新類型繁殖性能

    表3 橫交組合FecB基因型對(duì)初產(chǎn)母羊產(chǎn)羔率的影響

    表4 橫交組合F1代羔羊成活情況

    3 討論與小結(jié)

    3.1 據(jù)文獻(xiàn)記載,綿羊多胎基因(FecB)的位點(diǎn)被定位在第6號(hào)染色體上,F(xiàn)ecB基因是綿羊高繁殖力BMPR-IB基因突變的結(jié)果,具有提高排卵和產(chǎn)羔的生物學(xué)作用。本實(shí)驗(yàn)選用10只FecB中基因突變BB基因公羊與本地哈薩克母羊配種。檢測(cè)結(jié)果表明:含F(xiàn)ecB基因羊與哈薩克母羊雜交后,F(xiàn)ecB基因顯性效果好,遺傳性能較為穩(wěn)定,導(dǎo)入效果十分顯著。

    3.2 哈薩克多胎新類型創(chuàng)制項(xiàng)目采用小尾寒羊或湖羊種公羊與哈薩克羊雜交選育。研究數(shù)據(jù)表明:不同基因型羔羊初生重、6月齡體重、育成羊體尺差異不顯著(P>0.05)[9]。在體型外貌、生長(zhǎng)發(fā)育、繁殖性能等方面有了不同的提高。建立在較好的營(yíng)養(yǎng)條件下,精細(xì)管理才能充分發(fā)揮各個(gè)方面的性能,而在低營(yíng)養(yǎng)及粗放管理狀態(tài)常常表現(xiàn)為生長(zhǎng)速度緩慢、異食癖從而導(dǎo)致抗病力差等問(wèn)題,選育時(shí)值得注意。

    3.3 采用多胎基因FecB分子標(biāo)記技術(shù)與常規(guī)育種技術(shù),組建理想型育種群。通過(guò)選育選配、橫交固定,初步培育出了哈薩克羊多胎新類型。數(shù)據(jù)顯示該類型羊具有較高繁殖力,在今后的新類型培育中值得推廣。

    哈薩克羊?qū)偌竟?jié)性發(fā)情。對(duì)湖(寒)哈雜交羊F1母羊跟蹤調(diào)查,41只F1母羊在春季發(fā)情配種,秋季正常產(chǎn)羔,產(chǎn)羔率為159%(64/41),繁殖成活率為146%(60/41)。初產(chǎn)母羊配種年齡較小,存在奶水不足等問(wèn)題,導(dǎo)致羔羊死亡,繁殖成活率有所下降。

    [ 1 ]Souza C J, Macdougall C, Campbell B K, et al.The Booroola (FecB)phenotype is associated with a mutationin Bone morpho genetic receptor typeIB(BMPR1B)gene[ J] .En Docrinol, 2001, 169(2):1-6.

    [ 2 ]Wilson T,Wu J L,et al.Highly prolific Booroola sheep have a mutation in the intracellular kinasedomain of bone morphogenetic protein IB receptor(ALK-6)that is expressed in both oocyes and granuloss cells [J] Biology of Reproduction,2001,64:1225-1235.

    [ 3 ]王根林, 毛鑫智, Davis GH,等.DNA 分析發(fā)現(xiàn)我國(guó)湖羊和小尾寒羊存在Booroola(FecB)多胎基因[J] . 南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2003, 26(1):104-106.

    [ 4 ]柳淑芳,姜運(yùn)良,杜立新.BM PR-IB 和BM P15 基因作為小尾寒羊多胎性能候選基因的研究[ J] .遺傳學(xué)報(bào), 2003, 30(8):755-760.

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    [ 9 ]馬春江,羅生金.綿羊BMPR-IB基因標(biāo)記導(dǎo)入哈薩克羊生長(zhǎng)狀態(tài)研究[J].畜牧與獸醫(yī).2015,47(6):52-58.

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    S826.3

    A

    1005-2739(2017)02-0007-05地方綿羊品種多胎性類型創(chuàng)制”的子課題“哈薩克羊多胎新類型創(chuàng)制”,育種方法是用含F(xiàn)ecB基因純合子的湖(寒)羊公羊與本地哈薩克母羊雜交,采用PCR-RFLP方法對(duì)BMPR-BI基因進(jìn)行檢測(cè),選育哈薩克羊多胎新類型。本課題研究FecB基因?qū)Ξa(chǎn)羔數(shù)的影響,旨在尋找與產(chǎn)羔相關(guān)的遺傳標(biāo)記,為選育哈薩克羊多胎新類型提供理論依據(jù)。

    2016-11-03

    新疆維吾爾自治區(qū)科技廳高技術(shù)項(xiàng)目(新疆地方綿羊品種多胎類型創(chuàng)制,項(xiàng)目編號(hào):2013110101)

    羅生金(1973-),男,碩士,高級(jí)獸醫(yī)師,執(zhí)業(yè)獸醫(yī)師。

    E-mail:1491693158@qq.com

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