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      不同品種蝴蝶蘭2種病毒的ELISA檢測及其癥狀表現(xiàn)

      2017-05-02 21:07:05謝林娜蘇夢蕓朱明明貢宏濤
      江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2017年3期
      關(guān)鍵詞:蝴蝶蘭

      謝林娜++蘇夢蕓++朱明明++貢宏濤++朱麗梅++徐敏++張波

      摘要:采用酶聯(lián)免疫法對來源于國內(nèi)不同蝴蝶蘭種植場9個蝴蝶蘭品種的45個樣本攜帶建蘭花葉病毒和齒蘭環(huán)斑病毒的情況進行檢測調(diào)查。結(jié)果表明:(1)9個蝴蝶蘭品種的45株苗中共有9株感染建蘭花葉病毒,感染率為20%,強陽性概率為2.2%;9個品種中均有樣本檢測出齒蘭環(huán)斑病毒,45株苗中有32株感染齒蘭病毒病,感染率為711%,強陽性率為37.8%;另有8株苗發(fā)生復(fù)合感染,感染率為17.8%,蝴蝶蘭中齒蘭環(huán)斑病毒的發(fā)生情況要明顯重于建蘭花葉病毒。不同品種蝴蝶蘭植株感染病毒后,在葉片上的病毒病癥狀初期主要表現(xiàn)為葉片上有明顯的褪綠、黃化現(xiàn)象,但有的病株不僅表現(xiàn)出黃化、褪綠,還形成了明顯的黃色斑點、斑紋以及皰狀結(jié)構(gòu),尤其是感染齒蘭環(huán)斑病毒和復(fù)合感染2種病毒的病株均發(fā)現(xiàn)發(fā)病的葉片后期會出現(xiàn)黑色向內(nèi)凹陷的壞死斑,部分品種的花也出現(xiàn)了異常癥狀,如紅色花瓣黃化和花瓣出現(xiàn)壞死斑。

      關(guān)鍵詞:蝴蝶蘭;建蘭花葉病毒;齒蘭環(huán)斑病毒;ELISA檢測

      中圖分類號:S436.8+1文獻標志碼:A

      文章編號:1002-1302(2017)03-0080-03

      收稿日期:2015-12-28

      基金項目:江蘇省大學(xué)生創(chuàng)業(yè)創(chuàng)新計劃(編號:201513573029Y);江蘇省南京市江寧區(qū)科技發(fā)展計劃(編號:2015Ed01)。

      作者簡介:謝林娜(1993—),女,江蘇徐州人,主要從事蝴蝶蘭病毒檢測研究。E-mail:492205674@qq.con。

      通信作者:朱麗梅,博士,教授,主要從事園藝植物病蟲害及防治的教學(xué)與科研工作。E-mail:910703164@qq.com。

      蝴蝶蘭是蘭科蝴蝶蘭屬(Phalaenopsis)中重要的觀賞植物,蘭花病毒病一直是嚴重危害蝴蝶蘭品質(zhì)的一類重要病害,目前世界上已報道的蘭花病毒有25種,寄主范圍廣泛、易傳染、防治困難。其中發(fā)生最廣、危害最嚴重的是建蘭花葉病毒(Cymbidium mosaie potexvirus,CymMV)和齒蘭環(huán)斑病毒(Odontoglossum ringspot to-bamovirus,ORSV),且經(jīng)常發(fā)生復(fù)合感染的情況。這2種病毒能使蘭花葉片形成褪色斑、壞死斑、花葉斑等癥狀,致使蝴蝶蘭植株生長不良、葉片無光澤、花朵質(zhì)量下降,甚至植株死亡,降低了蝴蝶蘭的觀賞價值和經(jīng)濟價值,給蝴蝶蘭的生產(chǎn)企業(yè)帶來嚴重的經(jīng)濟損失[1-3]。目前國際上對蝴蝶蘭病毒病還未有防治的有效藥劑,因此對病毒病的早期發(fā)現(xiàn),早期隔離處理病株非常有必要,但蝴蝶蘭病株早期通常只有輕微的癥狀表現(xiàn),或根本不表現(xiàn)病癥,通過單純的癥狀觀察已經(jīng)無法確認,必須利用病毒檢測技術(shù)鑒定后才能確定是否染病并篩選無毒苗供進一步無性繁殖試管苗,所以病毒檢測技術(shù)也是進行植物脫除病毒工作的前提必備條件,通過病毒檢測技術(shù)鑒定出哪些植株攜帶有規(guī)定病毒,才能確定脫毒試驗的研究對象[4-5]。

      酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)是目前國內(nèi)外檢測蘭花病毒應(yīng)用范圍最廣的檢測技術(shù),與傳統(tǒng)方法相比具有檢測靈敏度強、特異性高以及檢測速度快的優(yōu)點,其中雙抗體夾心ELISA和三抗體夾心ELISA應(yīng)用最為廣泛。有研究表明,該方法對蘭科不同屬類的2種主要病毒CymMV和ORSV的檢測具有較高的精確度和穩(wěn)定性,目前是蘭花病毒檢測的常規(guī)手段[6-9]。基于上述緣由,本研究采用雙抗體夾心ELISA和三抗體夾心ELISA對國產(chǎn)蝴蝶蘭種苗主要來源地(廣東省、江蘇省等基地)生產(chǎn)的9個蝴蝶蘭品種試管苗攜帶2種主要病毒的情況進行檢測調(diào)查,以期了解國內(nèi)蝴蝶蘭生產(chǎn)用苗攜帶病毒的真實狀況,同時本研究還對不同花系感染2種病毒后的癥狀進行了比較和分析,以期為蝴蝶蘭的種植及蘭花病毒病害防治提供參考和依據(jù)。

      1材料與方法

      1.1試驗材料

      蝴蝶蘭檢測樣本為從廣東省、江蘇省等蝴蝶蘭種植基地購買的試管苗,一共3個色系9個品種,其中紅色花系包括巨寶、汕農(nóng)鳳凰、超群九號、香妃4個品種,樣品編號分別為247、359、257、363;粉色花系包括芝娃娃、五彩珍珠,樣品編號分別為207、732;黃色花系包括萬花筒、黃金男孩、幻想曲,樣品編號分別為369、890、743。

      樣品提取緩沖液、包被緩沖液、PBST緩沖液、ECI緩沖液、PNP緩沖液、包被用的抗體(CymMV和ORSV)、堿性磷酸酶標記物(CymMV和ORSV),還有96孔微孔板,陽性對照品等購自上海必優(yōu)生生物公司,其余藥品均為分析純,購自生工生物工程(上海)技術(shù)服務(wù)有限公司。

      1.2試驗方法

      本試驗對溫室中不同品種的蝴蝶蘭植株進行標記,每個品種5株成熟植株作為檢測樣本,采取樣本葉片作為檢測材料,運用ELISA血清法進行病毒檢測,統(tǒng)計陽性率。

      [JP+1]本試驗采用ELISA血清學(xué)檢測方法,分別對樣品建蘭花葉病毒(CymMV)和齒蘭環(huán)斑病毒(ORSV)2種蘭花病毒進行獨立互不干擾的病毒檢測工作,[JP+1]由于2種病毒的檢測操作方法基本相同,所以以下試驗步驟均適用于2種病毒的檢測。[JP]

      1.2.1DAS-ELISA方法檢測ORSV的步驟

      1.2.1.1包被酶標板和孵育

      每孔加抗體溶液100 μL,將酶標板置于4 ℃條件下過夜(但不要長于24 h)。孵育結(jié)束后,將反應(yīng)孔中的試劑倒出,再加入250 μL PBST緩沖液,之后快速倒出,2次以上。洗好后將微孔板倒扣在吸水紙上以弄干孔中殘留液體。

      1.2.1.2樣品的提取及點樣孵育

      [JP2]本試驗以蝴蝶蘭植株的葉片作ELISA試驗的檢測樣品,將葉片剪碎后,再用研缽將其研磨至綠色汁液全部浸出,在每份樣品提取后徹底清洗研缽,以免造成樣品間的相互污染。樣品研磨后,按1 ∶[KG-*3]10[樣品質(zhì)量(g) ∶[KG-*3]提取緩沖液體積(mL)]的比例在提取緩沖液中研磨樣品。[JP]

      根據(jù)試驗設(shè)計圖表,取100 μL樣品提取稀釋液于各樣品孔中,取100 μL樣品提取緩沖液于陰性對照孔中,取 100 μL 陽性質(zhì)控物溶液于陽性對照孔中。之后將微孔板放在恒濕箱中,置于冰箱4 ℃條件下過夜。

      1.2.1.3酶標記物的制備

      點樣孵育時間結(jié)束后即進行洗板,將反應(yīng)孔中的試劑倒出,再加入250 μL PBST緩沖液,之后快速倒出,重復(fù)7次。之后在各反應(yīng)孔中加入100 μL酶標記物稀釋液,在恒濕箱中室溫(25 ℃)下孵育2 h。

      1.2.1.4顯色與讀數(shù)

      酶標記物孵育結(jié)束后進行洗板,步驟同“1.2.1.3”節(jié),重復(fù)8次。之后在各反應(yīng)孔中加入100 μL PNP底物溶液,在恒濕箱中避光孵育60 min。出現(xiàn)顏色反應(yīng)后,以2 mol/L NaOH溶液終止反應(yīng),在酶標儀上以波長 405 nm 讀數(shù)。

      1.2.2TAS-ELISA方法檢測CyMV的步驟

      除加入的包被抗體和酶標抗體不一樣,操作步驟與“1.2.1”節(jié)所述相同?!?.2.1”節(jié)中的包被抗體是兔抗ORSV,酶標抗體是堿性磷酸酶標記兔抗ORSV,本法中的包被抗體是鼠抗CymMV和酶標抗體是堿性磷酸酶標記兔抗-鼠抗CymMV。

      1.2.3數(shù)據(jù)分析

      根據(jù)P/N值對所測樣品的帶毒情況進行評估,其中P/N<2視為陰性,P/N≥2視為陽性(染?。?,P/N>5視為強陽性。利用SPSS軟件對脫毒試驗中的數(shù)據(jù)進行顯著差異性分析,P/N=樣品孔D405 nm/陰性孔D405 nm。

      2結(jié)果與分析

      2.1不同品種蝴蝶蘭2種病毒的ELISA檢測結(jié)果

      由表1可知,9個蝴蝶蘭品種的45株苗中共有9株感染建蘭花葉病毒病,感染率為20%,強陽性概率為2.2%,其中247、369、890號這3個品種的樣本中均沒檢測出建蘭花葉病毒,743號品種樣本的感染率最高,為60%,其次為363號品種,感染率為40%。所檢測的9個品種均有樣本檢測出齒蘭環(huán)斑病毒,被檢測的45個樣本中,32株感染齒蘭病毒病,總計感染率為71.1%,強陽性率為37.8%。另有8株苗發(fā)生復(fù)合感染,感染率為17.8%,其中743、359、207號的感染率最高,達到100%,3個品種的強陽性率也分別達到40%、80%、20%,其次為890,5個樣本中有4個陽性,369品種病毒的感染率最低,為20.0%,這45個樣本2種病毒檢測結(jié)果說明蝴蝶蘭齒蘭環(huán)斑病毒的感染情況要明顯重于建蘭花葉病毒。

      2.2不同品種蝴蝶蘭病毒病的癥狀觀察

      所檢測的9個蝴蝶蘭品種,無論是感染建蘭花葉病毒還是感染齒蘭環(huán)斑病毒或者復(fù)合感染,病株營養(yǎng)生長初期在葉片上表現(xiàn)出明顯的褪綠、黃化(圖1-2、圖2-1、圖2-2、圖3-2、圖4-1、圖5-1、圖6-1、圖7-1),有的病株在初期不僅表現(xiàn)出黃化,還形成了明顯的黃色斑點、斑紋等花葉癥狀(圖1-1、圖3-1、圖6-2、圖6-3、圖7-1、圖7-2、圖8-1、圖8-2、圖9-1、圖9-2、圖9-3),感染齒蘭環(huán)斑病毒和復(fù)合感染的病株發(fā)病葉片上出現(xiàn)明顯的壞死斑,也有的病株樣本葉片出現(xiàn)大量、小的壞死凹陷斑,如890號復(fù)合感染的病葉(圖6-3),207號單獨感染齒蘭環(huán)斑病毒的病葉(圖3-3、圖3-5),其余病株樣本則出現(xiàn)較大的、黑色凹陷病斑(圖3-6、圖4-3、圖5-2、圖7-2、圖9-4),部分品種的花也出現(xiàn)了癥狀,如開紅花的247、257號花瓣明顯黃化(圖1-3、圖7-3),207、743號花瓣出現(xiàn)壞死斑(圖3-4、圖3-5、圖9-5)。

      3結(jié)論與討論

      本試驗利用ELISA法對國內(nèi)一些較大型蝴蝶蘭生產(chǎn)基地常規(guī)品種的試管苗進行2種主要蘭花病毒的檢測和調(diào)查。數(shù)據(jù)顯示,9個蝴蝶蘭品種的45株苗中共有9株感染建蘭花葉病毒病,感染率為20.0%,強陽性概率為2.2%,32株感染齒蘭病毒病,感染率為71.1%,另有8株苗發(fā)生復(fù)合感染,感染率為17.8%。其中743、359、207號的感染率最高,達到100.0%,3個品種的強陽性率也分別達到40.0%、800%、20.0%,說明我國生產(chǎn)蝴蝶蘭種苗品質(zhì)不容樂觀,各蘭花基地種苗生產(chǎn)所面臨的品種由于嚴重帶毒而導(dǎo)致品質(zhì)退化。

      據(jù)報道,蘭花病毒病的癥狀極其復(fù)雜,不同病毒病在不同時期侵染相同品種的蘭花,其癥狀各異;同種病毒侵染相同品種的蘭花,其癥狀也不盡相同。在栽培過程中,品種、栽培環(huán)境、季節(jié)、本身營養(yǎng)條件等都會影響癥狀的表現(xiàn)。本研究發(fā)現(xiàn),無論是紅花品種還是黃花品種,不同品種蝴蝶蘭植株感染病毒后,在葉片上都會形成明顯的病毒病癥狀,所檢測的9個品種無論是感染建蘭花葉病毒還是齒蘭環(huán)斑病毒或者復(fù)合感染,在營養(yǎng)生長初期病株的葉片上表現(xiàn)出明顯的褪綠、黃化癥狀, 感染齒蘭環(huán)斑病毒和復(fù)合感染的病株發(fā)病時葉片上出現(xiàn)[FL)]

      [FK(W9][TPXLN9.tif;S+5mm][FK)][LM]

      [KH*4D]

      明顯的壞死斑。因此,蘭花植株是否有病毒病,是感染了建蘭花葉病毒還是齒蘭環(huán)斑病毒,或是其他病害,僅僅從癥狀上判斷是很不準確的,仍然須要通過ELISA等方法測定才能確診,因此蝴蝶蘭的早期檢測以及脫毒研究引入生產(chǎn)環(huán)節(jié)勢在必行。

      參考文獻:

      [1]Khentry Y,Paradornuwat A,Tantiwiwat S,et al. Incidence of Cymbidium mosaic virus and Odontoglossum ringspot virus in Dendrobium spp. in Thailand[J]. Crop Protection,2006,25(9):926-932.

      [2]Hu J S,F(xiàn)erreira S. Detection of Cymbidium mosaic virus,Odonto-glossum ringspot virus,tomato spotted wilt virus,and potyvirues infecting orchids in Hawaii[J]. Plant Disease,1993,77(5):464-467.

      [3]沛然. CymMV及ORSV在蝴蝶蘭上的癥狀表現(xiàn)及高溫對其影響[D]. 北京:北京林業(yè)大學(xué),2009.

      [4]靖晶. 蝴蝶蘭組織培養(yǎng)與脫除病毒技術(shù)研究[D]. 北京:北京林業(yè)大學(xué),2011.

      [5]柳愛春,劉超,趙蕓,等. 利用ELISA檢測兩種蘭花病毒的研究[J]. 浙江農(nóng)業(yè)學(xué)報,2009,21(2):91-95.

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      [7]高煥利. 齊茄黑環(huán)病毒和建蘭花葉病毒檢測方法的研究[D]. 楊凌:西北農(nóng)林科技大學(xué),2007.

      [8]潘俊松,劉志昕. 建蘭花葉病毒的分離、鑒定及檢測研究[J]. 熱帶作物學(xué)報,1997,18(1):63-70.

      [9][JP2]明艷林,李梅,鄭國華. RT-PCR檢測齒蘭環(huán)斑病毒技術(shù)的建立[J]. 福建農(nóng)林大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版),2003,32(3):345-347.

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