楊麗娜,遲乃玉,石群,王曉輝,張慶芳*
(1.大連大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,遼寧大連116622;2.遼寧省海洋微生物工程技術(shù)研究中心,遼寧大連116622)
海洋氨肽酶菌株的篩選鑒定及其酶學(xué)特性研究
楊麗娜1,2,遲乃玉1,2,石群1,2,王曉輝1,2,張慶芳1,2*
(1.大連大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,遼寧大連116622;2.遼寧省海洋微生物工程技術(shù)研究中心,遼寧大連116622)
從大連渤海海域海泥海水樣品中分離出一株高產(chǎn)海洋氨肽酶(aminopeptidase)菌株YZ1-2,對(duì)其進(jìn)行形態(tài)學(xué)、生理生化、分子生物學(xué)(16S rDNA)鑒定,確定該菌株為蠟樣芽孢桿菌(Bacillus cereus)。并對(duì)其產(chǎn)海洋氨肽酶進(jìn)行酶學(xué)特性研究,結(jié)果表明,最適作用溫度為30℃;最適作用pH值為8.5;Co2+、Zn2+等能較強(qiáng)地激活氨肽酶的活性,Ni2+、Ca2+等對(duì)酶的抑制性較強(qiáng);乙二胺四乙酸(EDTA)可以有效地抑制氨肽酶活性。
海洋氨肽酶;篩選鑒定;蠟樣芽孢桿菌;酶學(xué)特性
氨肽酶(aminopeptidase)EC 3.4.11.11作為一種外肽酶,可將多肽鏈水解為小肽和游離的氨基酸[1-3]。目前發(fā)現(xiàn)氨肽酶存在于多種生物中,如一些高等動(dòng)物的胰臟、腸液中,也廣泛分布于多種植物、微生物和原生動(dòng)物體內(nèi)[4]。蛋白質(zhì)水解生成的多肽、寡肽和少量氨基酸,其溶解性、營養(yǎng)特性及口感風(fēng)味較蛋白質(zhì)而言均可得到明顯改善[5],是食品加工的主要原材料,因而蛋白質(zhì)的水解已成為現(xiàn)代食品加工中的重要課題[6]。但其水解液往往呈現(xiàn)苦味,這種苦味是由末端的疏水性氨基酸的多肽所導(dǎo)致的,從而限制了蛋白質(zhì)水解物的應(yīng)用[7]。因此,減少、阻止和去除蛋白質(zhì)水解物的苦味,就顯得尤為重要。目前,氨肽酶在食品工業(yè)上可以與蛋白酶協(xié)同作用,生產(chǎn)醬油等調(diào)味品、制備生物多肽以及對(duì)蛋白水解液進(jìn)行脫苦[8-9]。既增加了游離氨基酸的量,又可以提高營養(yǎng)價(jià)值,改善食品風(fēng)味。另外,氨肽酶在醫(yī)學(xué)領(lǐng)域還可用作分子工具測定蛋白序列[10],以及在環(huán)境衛(wèi)生方面可以作為解毒劑或消毒劑等[11]。目前,國內(nèi)科研人員對(duì)氨肽酶的菌種來源大部分集中在陸地土壤、腐乳或購買于菌種保藏管理中心以及通過基因重組獲得等[12-13],而來源于海洋菌株生產(chǎn)氨肽酶的研究尚鮮見報(bào)道。
本實(shí)驗(yàn)利用L-亮氨酸-4-硝基苯胺(L-leucine-4-nitroanilide,LNA)法,擬從渤海海域的海泥海水中分離得到一株產(chǎn)海洋亮氨酸氨肽酶的蠟樣芽孢桿菌(Bacilluscereus)。本研究初步探索了海洋氨肽酶產(chǎn)生菌的篩選鑒定及酶學(xué)特性,為后期海洋低溫氨肽酶的規(guī)?;a(chǎn)提供理論依據(jù)。
1.1 材料與試劑
1.1.1 樣品
來源于中國遼寧大連渤海海域附近的海泥海水樣品(鹿島港,N:39°11′,S:121°35′;濱海路沿線,N:39°7′,S:121°41′;蕎麥山橋,N:39°13′,S:121°42′),現(xiàn)保存于實(shí)驗(yàn)室-80℃冰箱中備用。
蠟樣芽孢桿菌(Bacillus cereus)YZ1-2:大連大學(xué)遼寧省海洋微生物工程技術(shù)研究中心實(shí)驗(yàn)室分離、篩選及保藏。
1.1.2 試劑
L-亮氨酸-4-硝基苯胺(LNA):大連凱美化工工程配套有限公司;三(羥甲基)氨基甲烷(Tris):天津市福晨化學(xué)試劑廠;核酸Marker:加拿大Fermentas MBI公司;引物(合成)、Ezup柱式細(xì)菌基因組DNA抽提試劑盒(SK8255):生工生物工程(上海)股份有限公司;其余試劑均為國產(chǎn)分析純。
Tris-HCl緩沖液(pH 8.0)的配制:121.1 g Tris,800 mL去離子水,加入約42 mL濃鹽酸調(diào)節(jié)pH至8.0。
26 mmol LNA乙醇溶液的配制:0.196 gL-亮氨酸-4-硝基苯胺,30 mL無水乙醇,混勻。
1.1.3 培養(yǎng)基
分離篩選培養(yǎng)基:蔗糖30g/L,牛肉膏5g/L,LNA0.5g/L,MgSO4·7H2O0.5g/L,KH2PO41.0g/L,瓊脂粉20g/L,pH7.0。
斜面培養(yǎng)基:酵母浸粉10 g/L,蛋白胨10 g/L,葡萄糖6 g/L,K2HPO42 g/L,瓊脂粉20 g/L,pH 7.0。
種子培養(yǎng)基:胰蛋白胨10g/L,牛肉膏5g/L,NaCl10g/L,pH 7.0。
發(fā)酵培養(yǎng)基:玉米粉30 g/L,豆渣粉20 g/L,KH2PO40.05 g/L,MgSO4·7H2O 0.3 g/L,NaCl 1 g/L,CoCl20.1 g/L,pH 8.0。
以上培養(yǎng)基均在0.1 MPa、121℃高壓蒸汽滅菌20 min。
1.2 儀器與設(shè)備
LDZX-40BI立式壓力蒸汽滅菌鍋:上海申安醫(yī)療器械廠;HZP-256全溫振蕩培養(yǎng)箱:上海智誠分析儀器制造有限公司;CX21FS3顯微鏡:日本奧林巴斯有限公司;PH-3G pH計(jì):陜西鼎盛儀器設(shè)備有限公司;UV-H232可見紫外分光光度計(jì):菲迪康樂(廣州)科學(xué)儀器有限公司;2720 thermal cycler PCR擴(kuò)增儀:美國Applied Biosystems公司;DYY-5穩(wěn)壓電泳儀:北京六一儀器廠;FR980凝膠成像儀:上海復(fù)日科技儀器有限公司。
1.3 方法
1.3.1 菌株篩選
菌株初篩:在以L-亮氨酸-4-硝基苯胺(LNA)為底物的分離培養(yǎng)基中挑選出帶有黃色水解圈的菌株,在氨肽酶作用下,可將無色的LNA分解生成黃色對(duì)硝基苯胺(p-nitroaniline,p-NA),根據(jù)生成的水解圈和菌落直徑比值的大小篩選出高活力的目的菌株[14],轉(zhuǎn)接至固體斜面再次純化培養(yǎng)。
菌株復(fù)篩:以測定菌株氨肽酶酶活高低作為復(fù)篩依據(jù),將初篩菌株進(jìn)行搖瓶發(fā)酵培養(yǎng),通過測定酶活,逐步篩選出目的高產(chǎn)菌株。
1.3.2 氨肽酶活測定方法
將接種劃線培養(yǎng)的單菌落轉(zhuǎn)接于裝液量為100mL/250mL的一級(jí)種子培養(yǎng)基中,于26℃、200 r/min條件下培養(yǎng)10~12h,連續(xù)轉(zhuǎn)接兩次種子;以5%的接種量轉(zhuǎn)接到50mL/250mL的發(fā)酵培養(yǎng)基中,于26℃、200 r/min條件下發(fā)酵培養(yǎng)48 h。
對(duì)發(fā)酵液離心,條件為4℃、8 000 r/min離心15 min,上清即為粗酶液。取0.4 mL粗酶液加入pH 8.0的Tris-HCl緩沖液6 mL,30℃水浴預(yù)熱5 min,加26 mmol/L LNA乙醇溶液0.4 mL,準(zhǔn)確反應(yīng)10 min,立即放冰浴中終止反應(yīng),將在沸水浴中滅活粗酶液作為對(duì)照,其余條件同上,5 min后于波長405 nm處比色。根據(jù)下列公式計(jì)算酶活[15]。
式中:ΔOD405nm為反應(yīng)液測定前后吸光度變化值;6.8為反應(yīng)體系總體積,mL;D為樣品稀釋倍數(shù);K為標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率;10為反應(yīng)時(shí)間,min;0.4為樣品體積,mL。
氨肽酶酶活定義:在30℃、pH 8.0條件下,每分鐘水解生成1 μg對(duì)硝基苯胺(p-NA)所需的酶量定義為一個(gè)酶活單位(U)[16]。
1.3.3 菌株鑒定
(1)菌株形態(tài)學(xué)鑒定
24 h后,觀察斜面培養(yǎng)基中的菌落形態(tài)特征;挑取菌齡為24 h的單菌落,進(jìn)行革蘭氏染色,觀察結(jié)果。
(2)菌株生理生化特征鑒定
參照《常見細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)》[17]與《微生物實(shí)驗(yàn)技術(shù)》[18],對(duì)該菌株進(jìn)行淀粉水解、油脂水解、明膠液化、石蕊牛乳試驗(yàn)、糖發(fā)酵產(chǎn)酸試驗(yàn)、甲基紅(methyl red,MR)試驗(yàn)、伏-普(voges-prokauer,V-P)試驗(yàn)、檸檬酸鹽試驗(yàn)、硫化氫產(chǎn)生試驗(yàn)、尿素水解試驗(yàn)、過氧化氫酶試驗(yàn)、硝酸鹽還原試驗(yàn)。
(3)菌株分子生物學(xué)(16S rDNA)鑒定
利用Ezup柱式細(xì)菌基因組DNA抽提試劑盒SK8255(上海生工)提取菌株基因組DNA。以篩選得到的菌株YZ1-2 DNA為模板,進(jìn)行聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)和瓊脂糖凝膠電泳。將PCR擴(kuò)增產(chǎn)物送至上海生工進(jìn)行測序,測序結(jié)果與美國國家生物技術(shù)信息中心(national center of biotechnology information,NCBI)網(wǎng)站上的GenBank數(shù)據(jù)庫中的已知菌種16S rDNA進(jìn)行序列比對(duì)(https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi),確定菌株同源性,并利用MEGA5.05軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。
1.3.4 酶學(xué)性質(zhì)的初步研究
(1)氨肽酶最適作用溫度
根據(jù)氨肽酶酶活測定方法,將酶液分別置于不同溫度條件下(10℃、20℃、25℃、30℃、35℃、40℃、45℃、50℃、55℃、60℃、65℃、70℃)測定其酶活,相對(duì)酶活為樣品酶活與同組最高酶活之比,并繪制溫度-相對(duì)酶活折線圖。
(2)氨肽酶的熱穩(wěn)定性
根據(jù)氨肽酶酶活測定方法,將酶液分別置于不同溫度條件下(30℃、40℃、45℃、50℃、60℃、70℃)保溫10 min、20 min、30 min、40 min、50 min、60 min,測定其酶活,相對(duì)酶活為樣品酶活與同組最高酶活之比,并繪制時(shí)間-相對(duì)酶活折線圖。
(3)氨肽酶最適作用pH
根據(jù)氨肽酶酶活測定方法,將酶液分別置于不同pH值(5.0、6.0、7.0、8.0、8.5、9.0、10.0、10.5、11.0)的Tris-HCl緩沖液中,測定其酶活,相對(duì)酶活為樣品酶活與同組最高酶活之比,并繪制pH值-相對(duì)酶活折線圖。
(4)氨肽酶的pH穩(wěn)定性
根據(jù)氨肽酶酶活測定方法,將酶液分別置于不同pH值(5.0、6.0、7.0、8.0、8.5、9.0、10.0、10.5、11.0)的Tris-HCl緩沖液中保溫60 min,測定其酶活,相對(duì)酶活為樣品酶活與同組最高酶活之比,并繪制pH值-相對(duì)酶活折線圖。
(5)金屬離子對(duì)氨肽酶活的影響
根據(jù)氨肽酶酶活測定方法,向酶液分別加入含有不同金屬離子(Co2+、Ca2+、K+、Fe2+、Mg2+、Zn2+、Mn2+、Ni2+、Cu2+)的鹽溶液,使反應(yīng)體系中金屬離子終濃度分別為1 mmol/L和10mmol/L,以不添加金屬離子的樣品為對(duì)照,測定其酶活,相對(duì)酶活為樣品酶活與同組最高酶活之比,考察金屬離子對(duì)氨肽酶活的影響。
(6)抑制劑對(duì)氨肽酶活的影響
根據(jù)氨肽酶酶活測定方法,向酶液分別加入抑制劑乙二胺四乙酸(ethylene diamine tetraacetic acid,EDTA)、十二烷基硫酸鈉(sodium dodecyl sulfate,SDS)、二硫蘇糖醇(dithiothreitol,DTT),使得各反應(yīng)體系的終濃度為1 mmol/L,以不添加抑制劑的樣品為對(duì)照,測定其酶活,相對(duì)酶活為樣品酶活與同組最高酶活之比,考察抑制劑對(duì)氨肽酶活的影響。
2.1 菌株的篩選
對(duì)大連周邊海泥海水樣品中分離的菌株進(jìn)行初篩,得到9株具有黃色水解圈的菌株,并通過復(fù)篩,得到一株性能穩(wěn)定、活力較高的海洋氨肽酶菌株,現(xiàn)將其命名為YZ1-2。利用種子培養(yǎng)基甘油保藏于-20℃冰箱中,用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
2.2 菌株YZ1-2形態(tài)學(xué)鑒定
圖1 菌株YZ1-2菌落形態(tài)及顯微形態(tài)Fig.1 Colonial morphology and microscopic morphology of strain YZ1-2
由圖1可知,菌株YZ1-2菌落較大,近似圓形,邊緣不整齊,呈毛玻璃狀,灰白色,不透明,用接種環(huán)易于挑取,中心有光澤,呈蠟燭樣顏色;革蘭氏染色結(jié)果陽性,呈桿狀,兩端生有芽孢。
2.3 生理生化鑒定
表1 菌株YZ1-2的生理生化特征Table 1 Physiological and biochemical characteristics of strain YZ1-2
由表1可知,菌株YZ1-2生理生化鑒定陽性反應(yīng)結(jié)果:淀粉水解試驗(yàn)、明膠水解試驗(yàn)、葡萄糖發(fā)酵產(chǎn)酸試驗(yàn)、伏-普(VP)試驗(yàn)、檸檬酸鹽試驗(yàn)、過氧化氫酶試驗(yàn)、硝酸鹽還原試驗(yàn);陰性反應(yīng)結(jié)果:油脂水解試驗(yàn)、石蕊牛乳試驗(yàn)、蔗糖發(fā)酵產(chǎn)酸試驗(yàn)、甲基紅(MR)試驗(yàn)、硫化氫產(chǎn)生試驗(yàn)、尿素水解試驗(yàn)。
2.4 分子生物學(xué)(16S rDNA)鑒定與系統(tǒng)發(fā)育樹的構(gòu)建
對(duì)海洋氨肽酶高產(chǎn)菌株YZ1-2進(jìn)行序列鑒定,結(jié)果見圖2。由圖2可知,PCR擴(kuò)增產(chǎn)物序列長度為1 496 bp。
圖2 菌株YZ1-2 16S rDNA PCR擴(kuò)增產(chǎn)物電泳圖Fig.2 PCR amplification products electrophoregram of 16S rDNA of strain YZ1-2
將菌株YZ1-2的16S rDNA基因序列與GenBank數(shù)據(jù)庫中的已知菌種的16SrDNA基因序列進(jìn)行比對(duì),以MEGA5.05軟件構(gòu)建菌株YZ1-2系統(tǒng)發(fā)育樹,結(jié)果如圖3所示。由圖3可知,菌株YZ1-2與蠟樣芽孢桿菌同源性最高為100%,因此可以鑒定菌株YZ1-2為蠟樣芽孢桿菌(Bacillus cereus)。
圖3 菌株YZ1-2 16S rDNA序列系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.3 Phylogenetic tree of strain YZ1-2 based on 16S rDNA sequence
2.5 酶學(xué)性質(zhì)研究
2.5.1 酶最適作用溫度
由圖4可知,該海洋氨肽酶最適作用溫度為30℃,作用溫度>45℃以后,氨肽酶活迅速下降,在20~45℃的溫度條件下,相對(duì)酶活能保持在80%以上,在10℃仍保有60%以上的相對(duì)酶活力,在65℃和70℃條件下,相對(duì)酶活不足20%,說明該酶在低溫條件下,活力較高,這符合低溫酶的特性,同時(shí)也是低溫酶的應(yīng)用優(yōu)勢[19]。
圖4 氨肽酶最適作用溫度Fig.4 The optimal temperature of the aminopeptidase
2.5.2 酶的熱穩(wěn)定性
由圖5可知,該海洋氨肽酶熱穩(wěn)定性比較弱,隨著溫度的不斷升高,其相對(duì)酶活呈下降趨勢。經(jīng)45℃條件下處理30min后,相對(duì)酶活就已經(jīng)低于60%,且在50℃、60℃、70℃條件下分別處理10 min,相對(duì)酶活迅速下降,酶活經(jīng)60℃、70℃處理40 min,相對(duì)酶活均低于10%。分析其原因可能是低溫酶類具有較高的柔韌性,與底物結(jié)合可以消耗較低的能量,進(jìn)而使得酶的熱穩(wěn)定性降低[20-21]。
圖5 氨肽酶的熱穩(wěn)定性Fig.5 The thermostibility of the aminopeptidase
2.5.3 酶最適作用pH及穩(wěn)定性
由圖6可知,該氨肽酶的最適作用pH值為8.5,當(dāng)pH值≤7.0或pH值≥10.5時(shí),其相對(duì)酶活均不足60%;由該氨肽酶的pH穩(wěn)定性折線可知,在pH值為5.0~8.5時(shí),酶的穩(wěn)定性隨著pH的增加而升高;pH值為5.0時(shí),相對(duì)酶活<20%;pH值為7.0時(shí),相對(duì)酶活<60%;pH值為8.5時(shí),相對(duì)酶活最高;且當(dāng)pH值為8.0~10.0時(shí),該氨肽酶均有80%以上的酶活。但隨著pH越來越大,氨肽酶穩(wěn)定性也逐漸喪失。由此可以得出:在偏酸中性或過堿性環(huán)境下,均不利于氨肽酶發(fā)揮活性,而在弱堿性環(huán)境下,氨肽酶發(fā)揮活性較好,穩(wěn)定性最高,說明該氨肽酶有一定的耐弱堿性。
圖6 氨肽酶最適pH及其穩(wěn)定性Fig.6 The optimal pH and stability of the aminopeptidase
2.5.4 金屬離子對(duì)氨肽酶的影響
由表2可知,不同種類的金屬離子對(duì)該海洋氨肽酶的作用不同,同種金屬離子在不同終濃度條件下的酶活規(guī)律表現(xiàn)也不盡相同。其中,Co2+、Zn2+、Mg2+能較強(qiáng)的激活氨肽酶的活性;Ca2+、Fe2+、Ni2+、Cu2+對(duì)酶的抑制性較強(qiáng),K+、Mn2+對(duì)酶的作用不明顯,且Mn2+對(duì)酶有較弱的激活作用。由此可以推測出該酶的活性中心構(gòu)象的維持可能與金屬離子有關(guān)[22]。
表2 金屬離子對(duì)氨肽酶活性的影響Table 2 Effects of metal ions on aminopeptidase activity
2.5.5 抑制劑對(duì)氨肽酶活的影響
表3 常見抑制劑對(duì)氨肽酶活的影響Table 3 Effects of common inhibitors on aminopeptidase activity
由表3可知,金屬螯合劑EDTA、蛋白質(zhì)變性劑SDS與還原劑DTT均可以有效的抑制氨肽酶活性,其中EDTA可強(qiáng)烈的抑制氨肽酶活性。
本實(shí)驗(yàn)從渤海海域的海泥海水樣品中,初篩得到9株產(chǎn)海洋氨肽酶菌株,以發(fā)酵產(chǎn)酶能力作為復(fù)篩的依據(jù),逐步篩選出一株高產(chǎn)菌株YZ1-2,并對(duì)其進(jìn)行形態(tài)學(xué)鑒定、生理生化鑒定以及分子生物學(xué)(16S rDNA)鑒定,鑒定菌株YZ1-2為蠟樣芽孢桿菌(Bacillus cereus)。對(duì)其所產(chǎn)的海洋氨肽酶粗酶酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行初步研究,結(jié)果表明,最適作用溫度為30℃,酶的熱穩(wěn)定性較差,屬于低溫酶類;酶的最適作用pH值為8.5,且該酶的pH穩(wěn)定性大約在8.0~10.0,有一定的耐堿性;Co2+、Zn2+、Mg2+能較強(qiáng)的激活氨肽酶的活性,Ca2+、Fe2+、Ni2+、Cu2+對(duì)酶的抑制性較強(qiáng),K+、Mn2+對(duì)酶的作用不明顯,且Mn2+對(duì)酶有較弱的激活作用;金屬螯合劑EDTA、蛋白質(zhì)變性劑SDS與還原劑DTT均可以有效的抑制氨肽酶活性,其中,EDTA的抑制作用最為明顯。
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Isolation and identification of a aminopeptidase-producing strain from marine and its enzymatic properties
YANG Lina1,2,CHI Naiyu1,2,SHI Qun1,2,WANG Xiaohui1,2,ZHANG Qingfang1,2*
(1.College of Life Science and Technology,Dalian University,Dalian 116622,China; 2.Liaoning Marine Microbial Engineering and Technology Center,Dalian 116622,China)
Ahigh marine aminopeptidase-producingstrain YZ1-2 wasisolated from sea water sample from the Dalian Bohai Sea area,and was identified asBacillus cereusby morphology,physiological and biochemical experiments,molecular biology(16S rDNA)identification.The enzymatic properties of aminopeptidase produced by strain YZ1-2 were researched.The results showed that the optimum temperature of enzymes was 30℃;the optimum pH was 8.5;the aminopeptidase activity could be strongly activated by Co2+,Zn2+,etc,and inhibited by Ni2+and Ca2+,etc.EDTA could effective inhibition on aminopeptidase activity.
marine aminopeptidase;isolation and identification;Bacillus cereus;enzymatic properties
Q93
0254-5071(2017)03-0066-05
10.11882/j.issn.0254-5071.2017.03.014
2016-12-15
國家高技術(shù)研究發(fā)展計(jì)劃“863計(jì)劃”(2007AA021306)
楊麗娜(1991-),女,碩士研究生,研究方向?yàn)槲⑸锩钢苿╅_發(fā)與利用。
*通訊作者:張慶芳(1965-),女,教授,博士,研究方向?yàn)槲⑸锩钢苿╅_發(fā)與利用。